|
Boken er utgitt med støtte fra norsk faglitterær forfatter- og oversetterforening. |
Interaktive læreverk og databaser, molekylær genetikk
Oppslagsverk, dictionaries o.l.
Aktuelt stoff - samfunn og genetikk
Offentlige lover og utredninger
Pekere innen: - cellebiologi - biologi - biokjemi - kjemi
Firmaer innen bio- og genteknologi
|
I dette dokumentet finner du stort sett hele teksten til lærboken, men ikke figurer og tabeller. Tekstene kan ha fått små “skjønnhetsfeil”. Hensikten med å legge ut teksten er at bokens brukere lettere kan supplere innholdet i boken med aktuelle nettsteder. Man kan også lett søke i teksten etter for å finne omtale av bestemte fenomener eller begreper. Bokens innhold starter med kapitteloversikten. |
Interaktive læreverk og databaser, molekylær genetikk
|
|
|
|
|
||
Oppslagsverk, dictionaries o.l.
Fysiostart (alt om kropp, anatomi, fysioterapi) |
|
|
|
Metabolic Pathways of Biochemistry
|
Access exellence - Graphis libraray - gentikk, biokjemi |
|
Aktuelt stoff - samfunn og genetikk
Se også: [kap 21 (Gentester, genterapi)] og [22 (Gen- og bioteknologi]
Tidsskrift fra Bioteknologinemnda |
|
Aktuelt stoff om genteknologi mm. Norsk. Meget innholdsrik |
|
Atuelt stoff fra viteskap og teknikk. Søkbar |
|
Oversikt fra NCBE |
|
CNN: Blueprint of the Body |
|
|
Offentlige lover og utredninger:
Bioteknologinemnda har en oppdatert oversikt (gå til "LENKER")
Norske lover:
LOV 1993-04-02 nr 38: Lov om framstilling og bruk av genmodifiserte organismer (genteknologiloven). |
|
LOV 1994-08-05 nr. 56: Lov om medisinsk bruk av bioteknologi. |
|
|
|
|
Helsemessige konsekvenser ved bruk av genmodifiserte næringsmidler og næringsmiddelingredienser |
|
NOU 1999: 20 Å vite eller ikke vite |
Gentester ved arvelig kreft |
Om lov om endring i lov om medisinsk bruk av bioteknologi (forbud mot framstilling av arvemessig like individer) |
|
Om lov om endring i lov om medisinsk bruk av bioteknologi (forbud mot framstilling av arvemessig like individer) |
Firmaer innen bio- og genteknologi
Bioteknologinemnda - oversikt over norske firma (--> lenker) |
|||||
|
Tidsskriftet (for Den norske lægeforening) |
||
|
|
BOKEN: Molekylær genetikk - Gå til ett av bokens kapitler:
|
|
|||||
|
|
|||||
1. GENETIKK
1.1 GENETIKK - HISTORIE
Vinnere i Fysiologi/medisin Kjemi: Fysikk |
||
|
1860 Genetikk som vitenskap startet i forrige århundre med munken Gregor Mendel ( Mendelweb)
(1822-1884) og hans klassiske krysningsforsøk med erteplanter. Mendels arvelover ble etablert. Disse beskriver det lovmessige nedarvingsmønsteret man finner ved ulike typer krysninger, og ble publisert i 1866. Men først omkring 1900 ble Mendels arbeider oppdaget av verden for øvrig.
1910 Populasjonsgenetikk er en gren av genetikken som ble utviklet av Hardy og Weinberg.
Her blir ikke resultatet av den enkelte krysning studert, men hyppigheten av ulike gener og egenskaper innen en hel populasjon av individer.
1920
Bananfluen (Drosophila) overtok etter hvert erteplantenes plass som studieobjekt nr.1. Kjønnsbundet arv blir beskrevet av Thomas Hunt Morgan omkring 1910. Han laget også kart over genenes avstand ved hjelp av krysninger og rekombinasjon av koblede gener (Nobelprisen 1933).
1928 Det oppdages at arveegenskaper kan overføres fra drepte bakterier til levende bakterier ved såkalt transformasjon ( Griffith ). Arv ble derved knyttet til et kjemisk stoff, som kunne eksistere uavhengig av celler, et arvestoff.
1944 Først i 1944 ble det funnet at dette transformerende arvestoffet var en nukleinsyre: DNA ( Avery m.fl.).
1952 Hershey og Chase påviste at DNA også er arvematerialet i bakteriofag T2 (Nobelprisen 1969).Derved var DNA-epoken innen genetikk, eller den molekylære genetikk innledet. I perioden som fulgte kom oppdagelsene i rekke og rad:
1953 Watson og Crick avdekker den tredimensjonale oppbygningen av DNA , DNA-dobbelspiralen (Nobelprisen 1962).
1955 Benzer gjennomfører detaljkartlegging av T4 rII-locus ved rekombinasjonsanalyse.
1958 Meselson og Stahl o http://en.wikipedia.org/wiki/Meselson-Stahl%27s_Experiment : semikonservativ DNA-.
1958 Kornberg isolerer DNA polymerase fra E. coli (Nobelprisen 1959).
1961 Jacob og Monod lanserer operonmodellen for genregulering (Nobelprisen 1965).
1966 Nirenberg og Khorana etablerer den genetiske kode (Nobelprisen 1968).
1970 Fra 1970 ble restriksjonsenzymer isolert og tatt i bruk. Dette ble innledningen til en ny epoke innen molekylær genetikk, der rekombinant genteknologi er stikkord. I 1972 ble historiens første genkloning gjennomført i laboratoriet. ( Boyer , Cohen , Berg ; Nobelprisen 1980).
1977 To metoder for DNA-sekvensering ble publisert, den ene av Sanger og den andre av Maxam og Gilbert (Nobelprisen 1980). I 1982 var baserekkefølgen til hele genomet til bakteriofag funnet ( 48 502 basepar langt).
1985 PCR ble tatt i bruk, en teknikk som har gjort DNA-analyser utrolig raske. Denne teknikken ble for øvrig beskrevet først av nordmannen Kjell Kleppe i 1970-årene . Kary Mullis får Nobelprisen for denne oppfinnelsen i 1993. SciPeeps
1988 James Watson blir leder for det humane genomprosjektet (HGP- HUGO) [ Wiki , HGPs infosider
med mål bl.a. å kartlegge hele baserekkefølgen til det menneskelige DNA innen år 2005. Dette målet ble nådd i 2000.
1990 For første gang blir genterapi gjennomført på et menneske, i det en fire år gammel jente med defekt i genet for ADA (adenosin deaminase) får tilført egne celler med et friskt, intakt, ADA-gen.
History og Gene Therapy Genterapi - historie, fra NIH
1997 DNA-brikker, kombinert med bioinformatikk tas i bruk. Dette gjør at DNA-analyser kan utføres i større skala og mye raskere enn før.
2001 HGP og Celera Genomics (WIKI ) ( Celera ) kunngjør i fellesskap at det humane genom er ferdig sekvensert.
2002 Genteknologi er i ferd med å bli en del av vår hverdag på mange områder: Industriproduksjon av verdifulle proteiner, nye transgene plantesorter innen matproduksjon, DNA-tester innen klinisk medisin og innen rettsmedisin, osv. Genteknologi er blitt et samfunnsanliggende, der ikke bare fagfolk, men politikere og folk flest skal mene noe, og helst vite noe.
1.2.1 Prokaryote/eukaryote celler
(hovedsakelig bakterier) mangler cellekjerne. Vi finner likevel arvestoffet, DNA, samlet i et kjernelignende område i cellens cytoplasma, men uten en egen kjernemembran rundt. Tarmbakterien E. coli er brukt som studieobjekt nr. 1 av prokaryote celler. Mye av vår kunnskap om molekylær genetikk har framkommet ved studier av E. coli.
har cellekjerne med kjernemembran. Arvestoffet DNA ligger her, adskilt fra resten av cellen. Alle dyr og planter tilhører denne gruppen, likedan sopp (f.eks. gjærsopp). Eukaryote celler er myestørre en prokaryote, og de har mange spesialiserte celleorganeller, som mitokondrier og endoplasmatisk nettverk. I kap 8.1 er det en nærmere omtale av eukaryote celler.
1.2.2 Haploid/diploid (WIKI)
Kromosomtall hos alle arter (WIKI)
celler har bare ett sett arveanlegg, gener. Siden genene sitter på kromosomer, kan vi knytte begrepet haploid til ett sett av
kromosomer (WIKI) [ NHGRI ].
Bakterier er haploide. Kjønnscellene hos høyere dyr og planter er haploide. Hos moser og alger finner vi planter som i sin helhet er bygget opp av haploide celler.
celler har dobbelt sett av kromosomer/gener. En enkel arveegenskap, som evnen til å lage et bestemt enzym, blir da bestemt av to gener, et genpar. Genene foreligger parvis, to og to. Vanlige kroppsceller hos alle høyere organismer er diploide. Det finnes unntak fra dette, f.eks. muskelceller som har mange kjerner, og derved mange kromosomsett.
Genene sitter på store DNA-molekyler som utgjør kromosomene, og haploide celler har ett sett med kromosomer, diploide celler har to sett.
Det haploide kromosomtallet angis som n (WIKI)
Hos mennesket er n = 23, hos bananflue er n = 4, hos gjærceller er n = 16 (se tabell 1.1). I diploide celler er det dobbelt sett av kromosomene. Hos mennesket har vi da 2n = 46.
Det finnes også organismer og celler som har flere enn to kromosomsett, de er
Potet er f.eks. tetraploid (4n = 48), jordbær et oktaploid (8n = 56)
1.2.3 Kromosomer
er de DNA-holdige strukturer som bærer genene (arveanleggene). E. coli har normalt bare ett kromosom. En diploid menneskecelle har 46 kromosomer i cellekjernen (23 par). Hvert kromosom i eukaryote celler inneholder et kjempestort DNA-molekyl, som er pakket sammen med proteiner (se kap. 8.2 ).
De to kromosomene som utgjør et par sies å være
De er like store og inneholder det samme sett av gener. På to homologe kromosomer finner vi da to sett av de samme genene. 22 av de 23 kromosomparene hos mennesket består av to like store homologe kromosomer, og disse kromosomene kalles
autosomer (WIKI).
De nummereres fra 1 til 22, der nr. 1 er størst (se fig. 8.2). To homologe kromosomer (autosomer) er ikke bare like store, men de har også nesten identisk rekkefølge av baser i sitt DNA.
X og Y
Det siste kromosomparet er kjønnskromosomene. Av disse er det to slag,
hvorav Y er mye mindre enn X. Menn har XY og kvinner XX. Derved vil sædcellene ha enten X eller Y, og dette bestemmer kjønnet ved befruktningen. Noe liknende finner vi hos
Hos mange insekter har hunnen XX og hannen bare X (XO), Y-kromosomet finnes ikke. Hos fugler er det hunnen som har ulike kjønnskromosomer (ZW), mens hannen har to like (ZZ).
betyr det samlede sett av DNA. Genomet til bakteriofag λ (WIKI) er ett DNA-molekyl på 48 502 basepar. E. colihar et kromosom som består av et DNA-molekyl på ca. 4000000 basepar. I tillegg kan E. coli inneholde DNA (gener) i plasmider (WIKI).
Det vil da være utenom kromosomet (ekstrakromosomalt), men det tilhører cellens totale genom.
Diploide eukaryote celler har to sett kromosomer. De to homologe kromosomene i ett kromosompar har som nevnt nesten identisk DNA-sekvens. Genomet til en slik organisme er da DNA-innholdet i ett sett kromosomer, altså i det haploide kromosomtall. Det humane genom er derved alt DNA som finnes i ett haploid sett på 22 autosomer + X og Y. Men også mitokodriene inneholder DNA og gener, og også dette vil være en del av vårt totale genom. Vi kan snakke om et kromosomalt (nukleært) genom og et ekstra- (utenfor-) kromosomalt (mitokondrielt) genom.
Kromatider (WIKI) (se fig. 1.1)
Før og under celledelingen vil et kromosom se ut som to tråder som henger sammen på ett punkt. Hver av disse trådene er et fullstendig DNA-molekyl, ett kromosom, med alle dets gener m.m. De to trådene er to identiske kopier, og kopieringen av DNA (replikasjonen) har foregått på forhånd. En enkelt tråd kalles enkromatide. De to identiske kromatidene kalles søsterkromatider, og de henger sammen i ett område som kalles
Betegnelsen kromatide er bare aktuelt å bruke i forbindelse med DNA-replikasjon og mitose/meisose.
1.2.4 Mitose
er vanlig celledeling. Resultatet etter en mitose er at de nye cellene (dattercellene) vil inneholde nøyaktig de samme gener / kromosomer som den opprinnelige cellen (morcellen). Forut for mitosen må alt DNA i morcellen ha blitt replikert (kopiert). I mitosen blir disse kopiene fordelt likt på de to dattercellene.
Når en flercellet organisme vokser, skjer det ved at cellene gjennomgår mitoser. Hvis en celle (eller celler) fra ett individ kan gi opphav til nye individer gjennom mitoser, er det ukjønnet formering. Individene blir da arvemessig like. Hos planter er dette vanlig, men ikke hos høyerestående dyr. Når forskere klarer å få en sau til å formere seg ukjønnet
(Dolly (WIKI) ), er det kloning (WIKI)
Denne muligheten vakte betydelig interesse og debatt da det ble offentlig kjent i 1997 (se kap. 22 ).
5 faser (se fig. 1.2)
Det er vanlig å dele mitosen i
fem stadier eller faser (WIKI):
profase, prometafase, metafase, anafase og telofase. I tillegg nevner vi gjerne interfasen, perioden før mitosen (eller mellom to mitoser) og cytokinesen, selve adskillelsen til to celler. Ofte slår man sammen prometafasen og metafasen, slik at det bare blir fire faser.
Interfasen (WIKI) (mellomfasen)
regnes ikke som en del av mitosen. Her foregår DNA-replikasjonen. Hvert kromosom vil starte som én DNA-dobbelttråd, og ende opp som to identiske DNA-dobbelttråder, som kalles søsterkromatider (fig. 1.1). Interfasen er også delt opp i ulike faser (fig. 1.3), der replikasjonen forgår i S-fasen (S = syntese).
1 Profasen (WIKI) . Kromosomene kondenserer.
Kromosomene blir kortere og tykkere (mer om dette i kap. 8.2). De blir da synlige i mikroskop. Utenfor cellekjernen har sentrosomen delt seg i to, og fra disse dannes det proteintråder (spindel). Hvert sentrosom inneholder et par sentrioler, og det er ofte disse som blir omtalt i forbindelse med spindeldannelse. Sentrosomene beveger seg mot hver sin side (pol) av cellekjernen, de kalles derfor også for pollegemer.
2 Prometafase (WIKI). Spindel fester seg.
Cellekjernen, dvs. kjernemembranen, går i oppløsning. Spindelet fester seg mellom sentromeren i hvert kromosom og sentrosomen ved hver pol. Sentromeren er et bestemt område av kromosomets DNA. På dette området dannes det et spindelfeste av protein
( kinetochore (WIKI) ),
som spindeltrådene egentlig fester seg til.
3 Metafase (WIKI). Samling i ekvatorialplan.
I metafasen (mellomfasen) samler alle kromosomene (hos mennesket 46) seg i et plan midt i cellen, etekvatorialplan eller metafaseplate. Vi vil da ha spindel mellom sentromeren i hvert kromosom og de to sentrosomene, altså fra ekvator til begge polene.
4 Anafase (WIKI) . Splitting av kromosomene.
I anafasen (splittingsfasen) forkortes spindeltrådene, slik at de to identiske kromatidene i hvert kromosom dras fra hverandre, en til hver pol. Resultatet blir identiske og fullstendige sett kromosomer til hver side.
5 Telofase (WIKI) . Kromosomene samles.
Til slutt, i telofasen (sluttfasen), samles de to separerte kromosomsettene ved hver sin pol, og det dannes to nye kjernemembraner rundt dem.
Cytokinese (WIKI) . Adskillelse av to celler.
Telofasen representerer slutten på selve mitosen. Den fysiske separasjonen av de to cellene kalles cytokinese. De to nye cellene "snøres" av fra hverandre ved at et dannes en ny cellemembran rundt begge.
Før neste celledeling må kromosomene (DNA) igjen bli replikert (interfase). Hvis vi tenker oss at en cellesyklus tar 24 timer, vil interfasen utgjøre ca. 23 timer, og selve delingen bare en time. En cellesyklus deles i flere stadier (se fig. 1.3).
(10 timer) blir replikasjonen forberedt (G = gap, mellomrom).
(9 timer) foregår selve replikasjonen av DNA (S = syntese).
(4 timer) er replikasjonen ferdig, og kromosomene foreligger doble (to søsterkromatider). Til slutt kommer selve mitosen (M-fasen), som bare tar ca. 1 time. Hvis en celle ikke skal dele seg videre, vil den gå inn i G0-fase.
Kontroll
For at ikke cellene skal dele seg uhemmet, er det en kontroll av cellesyklus, som eventuelt kan stoppe den videre prosess. Det er tre viktige kontrollpunkter (checkpoints), nemlig ved G1 (før replikasjon i S) og ved G2 (før selve mitosen) og før splittingen i anafasen (se kap. 8.10.2). Manglende kontroll her kan gi uhemmet cellvekst og deling, som kan føre til kreft.
1.2.5 Meiose (WIKI) og kjønnet formering (WIKI)
MAX animasjo MAX animasjon (mit/mei-ose) MAX animasjon (uavhengig fordeling)
Meiose er reduksjonsdeling. Én diploid celle gir da opphav til fire haploide datterceller, en tetrade. Hos høyerestående dyr og planter betyr dette dannelse av kjønnsceller, som foregår i kjønnsorganene. Meiosen er egentlig to delinger, første og andre meiotiske deling. Også før meiosen foreligger alle kromosomene ferdig replikert, i form av to søsterkromatider.
Første meiotiske deling (WIKI)
Vi kan dele denne prosessen i de samme fem trinnene som mitosen. Under profasen (profase I), når kromosomene kondenserer, vil homologe kromosomer (kromosompar) legge seg ved siden av hverandre i en tett forbindelse
(synapse (WIKI) ),
de vil danne en "bivalent". En slik bivalent vil da bestå av fire kromatider (tetrade). Av disse er to fra mor og to fra far. Det er på dette stadiet at
foregår. Dette er ikke vist i fig. 1.4, men i fig. 1.7. I kap. 12.6 omtales mekanismen ved overkrysning.
der overkrysningen skjer, blir delt i fem understadier: leptotén, zygotén, pachytén, diplotén og diakinese.
Under metafase I, når kromosomene samles i midten, vil de fremdeles foreligge i par, f.eks. 23 par hos mennesket. Overkrysning har da funnet sted. I anafasen blir så de to homologe kromosomene skilt til hver sin kant. Hos mennesket vil da 23 kromosomer gå til hver sin kant, nemlig ett fra hvert par. Hvert kromosom består da fremdeles av to kromatider. På grunn av overkrysning er ikke disse lenger identiske.
Etter første deling har vi ett sett av kromosomer i hver av de to dattercellene (haploid), men kromosomene har to kromatider. Det skjer da en deling som tilsvarer mitosen. Alle kromosomene samles i ekvatorialplanet i metafasen (metafase II), og hvert kromosom splittes i sine to kromatider. Resultatet blir fire haploide celler, og hvert kromosom er bare én kromatide.
Kjønnsceller hos mennesker
Menn produserer sine sædceller (spermier) i testiklene (testes) ved spermatogenesen , kvinner sine eggceller i eggstokkene (ovariene) ved oogenesen . (WIKI)
Kvinner har et gitt antall anlegg for eggceller (noen millioner). Disse er dannet før fødselen, og det kreves ca. 30 mitoser for å danne disse anleggene. I kjønnsmoden alder modnes en og en eggcelle i hver menstruasjonssyklus i en follikel, og slippes ut i egglederen (uterus). Selve meiosen fullføres ikke før eggcellen evt. blir befruktet av en sædcelle.
Menn produserer nye sædceller hele livet, og nye anlegg dannes hele tiden ved mitoser. Bak en sædcelle ligger det derfor mange flere mitoser, og flere jo eldre mannen er. Dette er en viktig årsak til at det finnes flere feil (mutasjoner) i en sædcelle enn i en eggcelle (!). I hver sædutløsning finnes det ca. 200 mill. sædceller, men bare en kan trenge inn i eggcellen og befrukte denne.
Befruktning (WIKI) (se fig. 1.5)
Når to haploide celler (eller kjerner) smelter sammen, har vi en befruktning. Den diploide cellen som oppstår kalles en
Dette foregår ved
oppstår nye individer bare ved mitose, vanlig celledeling.
Biologisk variasjon
Ved ukjønnet formering blir avkommet genetisk lik opphavet. Det blir ingen biologisk variasjon fra generasjon til generasjon. Ved kjønnet formering blandes genene fra to ulike celler på en ny måte ved befruktningen. Nye kombinasjoner av gener oppstår, og den nye generasjonen blir genetisk ulik opphavet.
Grunnlaget for den store variasjonen ligger i meiosen. Hos mennesker vil hver kjønnscelle ha ett kromosom fra hvert av de 23 parene. Vi kan kalle de 23 kromosomparene her for 1A/1B, 2A/2B, 3A/3B, ... 22A/22B og X/Y. De to kromosomene fra hvert kromosompar fordeles uavhengig av hverandre (se fig. 1.6). Vi kan tenke oss at vi først trekker 1A eller 1B. Deretter trekker vi 2A eller 2B osv. Til slutt trekker vi Xeller Y. Dette kan gjøres på 223 ulike måter, dvs. ca. 8×106 (8 mill) måter. Så mange ulike sædceller/eggceller kan vi få ut fra dette.
Ved befruktning trekkes én av sædcellene fra far og én av eggcellene fra mor ut. Dette gir (8×106) ×(8×106) = 6,4×1013 kombinasjoner. Så mange kombinasjonsmuligheter er det da når et menneskebarn skal skapes, ut fra dette resonnementet, men:
Imidlertid er variasjonsmuligheten enda mye større. Under profasen i meiosen vil homologe kromosomer i morcellen ligge fysisk inntil hverandre. Dette er i alt fire kromatider, dvs. fire lange DNA-molekyler. To og to av disse er identiske (søsterkromatidene), mens DNA fra to homologe kromosomer er nesten helt like, kanskje 99,9 %.
Det vil da kunne skje brudd på to kromatider på samme plass, og de kobles sammen igjen på kryss (se fig. 1.7). Dette kalles overkrysning og (homolog)
Vi kan si at kromatidene bytter biter med hverandre. Selve overkrysningen foregår på tilfeldige steder, og ulikt fra gang til gang, og gjerne flere steder langs ett kromosom ved samme meiose. I gjennomsnitt foregår det ca. 50 overkrysninger i løpet av en meiose hos mennesket. I fig. 1.7 ser vi at genene A og b, som opprinnelig sitter på hvert sitt kromosom, etter overkrysningen har kommet på samme kromosom. Vi har fått en ny kombinasjon av gener.
Resultatet etter overkrysningen blir at hvert kromosom som en kjønnscelle mottar, vil være en blanding av de to opprinnelige kromosomer i morcellen. Dette gir ubegrenset genetisk variasjon blant kjønnscellene, og enda mer i det nye individet etter befruktning.
Hvert kromosom som vi arver fra vår mor, er derved høyst sannsynlig en blanding av de to kromosomene som hun hadde av dette paret. Det samme gjelder fra vår far.
"Rekombinant DNA" er altså ikke noe som menneskene har funnet på. Sammen med mutasjoner er dette naturens måte å sørge for variasjon i det genetiske materiale fra generasjon til generasjon, og således en av forutsetningene for biologisk variasjon og utvikling. I tillegg til genetisk variasjon er
seleksjon (naturlig utvalg) (WIKI)
grunnlaget for denne biologiske utviklingen. Se kap. 13.5.
er det samme som arveanlegg. Men begrepet gen er ikke helt klart definert, og det har endret innhold i løpet av genetikkens historie. "Ett gen - ett polypeptid" var lenge en slags molekylærbiologisk grunntanke, dvs. at et gen er en DNA-sekvens som koder for ett protein . Men DNA som koder for rRNA eller tRNA kalles også gener, selv om det ikke blir laget noe polypeptidprodukt. Og gener hos eukaryote celler har lange ikkekodende sekvenser (introner) mellom de kodende. Et gen kan derved defineres slik, hvis man skal være meget kort:
Et gen er en avgrenset del av et kromosom, som kreves for produksjon av et funksjonelt produkt. De aller fleste gener koder for et protein.
av en organisme er de egenskaper den har. Egenskapene kan være synlige eller ikke. Ofte dreier det seg om egenskaper på biokjemisk nivå, evnen til å bryte ned laktose, evnen til å produsere leucin osv.
Vi skal bruke ABO-blodtypesystemet ( OMIM ) som eksempel for å innføre noen grunnbegreper fra genetikken. Vi sier vanligvis AB-null, og skriver ABO (ikke AB0), men noen ønsker også å uttale dette A-B-O. Her finner vi fire fenotyper: Blodtype A, B, AB eller O (se tabell 1.2). Disse hovedtypene kan også deles inn ytterligere i undergrupper, spesielt A som deles i A1 og A2. Mer om disse blodtypene finner du i kap. 13.6.
Ett bestemt gen kan foreligge i flere mulige varianter. Slike ulike varianter kalles alleler. Innen ABO-systemet har vi tre vanlige alleler, altså tre mulige varianter av dette genet . Disse er A, B eller O (gener skrives i kursiv). Noen bruker skrivemåten I A, I B og IO, men vi skal holde oss til A, B, O. Når det forekommer flere varianter av DNA i ett locus, brukes ofte begrepet polymorfisme. Ulike alleler er eksempel på polymorfisme. Vi finner DNA polymorfisme også utenom de kodende genene, altså i andre deler av kromosomene (se kap. 13.4).
til en organisme/celle er hvilke gener (eller varianter av gener) den inneholder. Hos haploide celler er det bare ett gen av hvert slag (som bestemmer en enkeltegenskap), mens diploide celler har to gener av hvert slag. Hvis det finnes to alleler (A og a), har vi tre mulige genotyper, AA, Aa og aa. For ABO-systemet, der vi har tre ulike alleler (A, B og O), kan vi ha seks mulige genotyper: AA, AO, BB, BO, OO og AB (se tabell 1.2).
Hvert gen har sin bestemte plassering i kromosomet. Dette kalles en locus, eller genlocus (WIKI) (flere loci). Genet som bestemmer blodtypen (ABO) har én locus. Dette er en bestemt posisjon i kromosom 9 (9q34). ABO-genet (OMIM) har da denne posisjonen (locus) hos alle mennesker.
Homozygot (WIKI) , heterozygot (WIKI) ( NHGRI )
Hos diploide organismer bestemmes enkle arvelige egenskaper av to gener, ett genpar. Hvis de to allelene i ett genpar i en celle er like, sier vi at cellen er homozygot. Hvis de to allelene er ulike, er cellen heterozygot. En person med genotype AA er homozygot, og en person med genotype AO er heterozygot. Se tabell 1.2.
Dominant (WIKI), recessiv (WIKI) (NHGRI )
Når et individ har en genotype som er heterozygot, vil ofte det ene allelet være bestemmende for fenotypen. Personer som har genotype AO vil få fenotype blodtype A. Allelet A er da dominant over O, mens allelet Oer recessivt (vikende). Personer som er heterozygote AB, vil få en egen blodtype, AB. Begge allelene bestemmer, eller slår gjennom, vi sier at de er kodominante (WIKI) . Et litt annet fenomen er ufullstendig dominans (WIKI) .Et eksempel på dette kan være fargen på erteblomster. Rød farge skyldes allelet R, hvit farge allelet r. En heterozygot plante Rr får rosa farge. Genet for rød farge er ufullstendig dominant over genet for hvit. Dette fenomenet er også blitt kalt intermediær arv .
Rhesus (WIKI) ( OMIM ) og MN ( OMIM ) er to andre blodtypesystemer, som litt forenklet kan beskrives slik: Rhesus (D)-systemet har to alleler: D som gir Rh(D)+pos (Rh-pluss) og d som gir Rh(D)-neg (Rh-minus). Der dominant over d, slik at en heterozygot Dd får blodtype Rh(D)+pos
(Blodgrupper, fra UiO ).
Rhesussystemet består egentlig av flere deler enn bare Rh(D), se kap. 13.6.
I MN-systemet har vi også to alleler, M og N, som gir hver sin blodtype M eller N. Men disse allelene er kodominante, slik at heterozygote MN får en egen fenotype, blodtype MN.
Sykdom
Når det gjelder arvelige sykdommer, så er genene som gir disse sykdommene ofte recessive, noe som kan forklares. Mange av disse sykdommene er stoffskiftesykdommer. Det normale allelet P koder for et enzym. Sykdomsallelet p har en feil i koden, og det gir ikke noe funksjonelt enzym. En heterozygot Pp vil ha ett normalt allel som gir rett enzym. Dette er tilstrekkelig, og vedkommende er ikke syk. Sykdomsallelet p er da recessivt. For å bli syk, må man mangle det friske genet P, man må være homozygot for sykdomsgenet, pp.Da må man ha arvet et sykdomsgen p fra både far og mor. En person som er heterozygot Pp vil være frisk, men vil være bærer av et sykdomsgen. Ordet sykdomsgen er noe misvisende. Et gen gir egentlig ikke noen sykdom, men det kan gi et proteinprodukt (eller mangel på et) som medfører sykdom. Kap. 20 tar spesielt opp arv og sykdom, med en rekke konkrete eksempler på arvelige sykdommer.
For haploide organismer vil én bestemt genotype helt sikkert gi vedkommende fenotype. Organismen har jo bare dette ene genet som bestemmer fenotypen. Cellene har bare P eller bare p.
Multiple alleler
Vi har nå møtt eksempler på at det forekommer to alleler (Dd) eller tre alleler (ABO) av et gen. Det er mange eksempler på at ett bestemt gen kan forekomme i mange flere utgaver enn dette. Ett kjent eksempel er øyenfargen hos bananfluer. Det normale allelet ("villtype") gir rød farge, og det er funnet en lang rekke ulike mutanter av dette genet som gir ulike variasjoner av lysere øyefarger.
Skrivemåte for gener
Når man skriver genotype og fenotype, er det visse regler for hvordan dette skal gjøres.
Bakteriers
gener skrives med tre små bokstaver (WIKI) i kursiv, f.eks. leu. ( Fra Sigma ) Man bruker hevet + for å angi om allelet er normalt, f.eks. leu+. Hvis genet er defekt (har en feil) bruker vi en hevet - (leu). Betegnelsenvilltype brukes gjerne om det normale (+), mens (-) er en eller annen mutant. Et mutantgen er ofte defekt, det gir ikke noe funksjonelt produkt.
Hvis det er flere gener som innvirker på én egenskap kan det brukes store bokstaver bak (trpA, trpB osv). I tillegg brukes det tall hvis det finnes flere ulike mutanter i samme gen (leuA58).
Fenotype skrives med vanlige bokstaver, og stor forbokstav, samt + eller -. En celle som har normal evne til å lage leucin skrives Leu +, mens en mutant som ikke kan lage leucin skrives Leu.
Eukaryote
Hos gjærceller (URMC) er det også vanlig å angi gener med tre bokstaver og kursiv. Men istedenfor + og - bruker man store bokstaver for villtype (LEU) og små bokstaver for mutanter (leu).
For humane gener finne det retningslinjer (HGNC Guidelines) for hvordan genene bør navnsettes. Det brukes både bokstaver og tall, og disse er gjerne en forkortelse for det protein som genet koder for, eller for en sykdom som er assosiert med genet. Noen eksempler illustrere dette. Genet GAPDH (HGNC) koder for enzymet glyceraldehyd-3-fosfat dehydrogenase. Genet BRCA1 er et gen som gir tidlig brystkreft (Breast Cancer). Genet APOE koder for Apolipoprotein E. EYCL3 er med på å bestemme øyenfarge. Genet ABO bestemmer blodtypen i ABO-systemet.
Se også tabell 20.1.
Gregor Mendel (WIKI) krysset planter med ulike arvelige egenskaper, som ertenes form og farge, blomstenes farge m.m. Han dyrket opp frøene fra én krysning, og telte antall planter i den nye generasjonen som hadde en bestemt egenskap (fenotype). Ut fra dette fant han enkle lovmessigheter, som er blitt kalt Mendels lover. Mendel kjente ikke til at det var noe arvestoff, DNA, som ble replikert og fordelt ved meiosen. Men hans resultater kan nå ses i lys av vår nye kunnskap om dette. En enkel gjennomgang av hans resultater er stadig lærerikt og illustrerende
( og Forskningens mørke sider )
1.4.1 Monohybrid krysning (WIKI)
Vi studerer først krysninger der vi bare betrakter én egenskap (fenotype)
bl.a. på blomstenesfarge (rød/hvit) eller ertenes form (rund/rynket) og
farge (grønn/gul) (ACCESS)
Vi holder oss til ertene. I sine forsøk startet Mendel med planter som utgjorde rene linjer. Hvis planter innen en ren linje blir krysset med hverandre innbyrdes, vil avkommet hele tiden få samme fenotype som foreldrene. Dette skyldes at disse plantene er homozygote.
P-F1-F2
Den første generasjonen (den rene linje) blir kalt P-generasjonen (P = parents, foreldre), den neste F1-generasjonen. Hvis individer fra F1 blir krysset innbyrdes, får vi F2-generasjonen.
Vi starter med en P-generasjon der den ene av foreldrene (f.eks. mor) har gule erter og den andre (far) har grønne erter (husk at også planter har han- og hunkjønn). Begge disse var rene linjer. Alle de nye ertene i F1-generasjonen ble like, nemlig gule. Disse ble så dyrket opp og krysset innbyrdes. Resultatet av denne krysningen (F2) kunne f.eks. være 351 gule erter og 118 grønne erter, dvs. gule/grønne i forholdet 3:1. Dette forholdet ble bekreftet gjennom mange forsøk.
Forklaringen på dette resultatet er vist i fig. 1.8. Genet (allelet) for gul farge (G) er dominant over allelet for grønn farge (g), som da er recessivt. Den ene av P-generasjonen, med fenotype gule erter (mor), hadde genotype GG. Den andre, med grønne erter (far) hadde genotype gg. Etter meiosen vil kjønnscellene til mor helt sikkert inneholde allelet (G), og kjønnscellene til far (g). Ved befruktning vil vi da få F1-planter som alle har genotype Gg, altså heterozygote. Siden G er dominant over g, vil alle F1-plantene få fenotype gule erter. Ved meiose vil disse plantene danne kjønnsceller der halvparten har allelet (G) og halvparten (g). Disse allelene sitter i samme locus på de to homologe kromosomene. Allelene (G) og (g) blir atskilt ved meiosen.
Befruktningen er som et lotteri: Det "trekkes" én tilfeldig kjønnscelle fra far og én fra mor. Det betyr at vi får (G) eller (g) fra far og (G) eller (g) fra mor. Dette gir fire kombinasjonsmuligheter, som kan vises i et 2× 2 krysningsskjema (fig. 1.8). Et slikt kvadratisk krysningsskjema kalles gjerne "Punnett square" -Punnettkvadrat. Av fenotype skal vi da få 3/4 gule erter og 1/4 grønne erter. Det var dette Mendel fant.
Mendels første lov
Hvert gen foreligger som et par alleler, og disse skiller lag tilfeldig, slik at de har samme sjanse for å bli ført videre.
1.4.2 Dihybrid krysning (WIKI) (Enkel interaktiv)
Vi studerer nå to egenskaper samtidig, f.eks. ertenes farge (gul eller grønn) og ertenes form (rund eller rynkete). Genene bak disse egenskapene kaller vi:
Farge G = gul og g = grønn
Form R = rund og r = rynkete.
P-generasjonen (homozygot, rene linjer):
GUL og RUND (GG RR)
´ grønn og rynkete (gg rr)
Kjønnscellene fra P må bli henholdsvis (G R) og (g r), og derved vil alle i F1-generasjonen bli like, nemlig (Gg Rr), GUL og RUND.
Kjønnscellene fra F1 blir av fire typer: (G R), (G r), (g R) og (g r). Hvis genparene Gg og Rr skilles fra hverandre uavhengig, får vi like mye (1/4) av hver type. Når begge foreldre er fra F1 vil vi trenge et krysningsskjema (Punnettkvadrat) på 4 × 4 ruter, fordi vi har fire mulige kjønnscelletyper fra hver av foreldrene (se fig. 1.9).
Krysningsskjemaet viser både genotype (f.eks. Gg rr) og fenotype (gul, rynket). Vi ser at bare 1 av de 16 rutene gir grønne og rynkete erter. 9 får gule og runde, 3 får gule og rynkete, 3 får grønne og runde. Vi får det typiske dihybride spaltningsforholdet 9:3:3:1. Det var nettopp dette Mendel observerte da han telte ertene etter en slik krysning. Han kunne derved trekke sin andre hovedkonklusjon:
Mendels andre lov(WIKI)
Ulike allelepar fordeles til neste generasjon uavhengig av hverandre.
Denne lovmessigheten gjelder bare når genene sitter på ulike kromosomer, dvs. at de ikke er koblet. Gener på samme kromosom vil ha en tendens til å følge hverandre og nedarves sammen. Mer om dette senere (1.5).
Statistisk analyse
I Mendels forsøk og andre krysninger får vi ikke nøyaktig tallforholdene 3:1 eller 9:3:3:1 osv. Tilfeldighetene vil gjøre at vi bare får i nærheten av dette forholdet. Vi kan f.eks. få 76:22. Kan vi si at dette3:1? For å teste dette kan vi bruke en statistisk metode som kalles c2-testen (kji-kvadrat)(WIKI) . Den blir gjennomgått i 1.7.
Tilfeldigheter
Vi kan også tenke oss et foreldrepar der mor har genotype AO (blodtype A) og far AB. Hvilke blodtyper vil deres barn få? Fig. 1.10 viser et krysninsgsskjema for dette paret, forenklet satt opp. Vi leser av dette at sannsynligheten for blodtype A er 2/4 = 0,5 (50 %). Men det betyr selvfølgelig ikke at annethvert barn vil få blodtype A. De kan godt få tre barn uten at noen av dem får blodtype A, som et resultat av tilfeldigheter.
1.4.3 Litt sannsynlighetsregning
http://staff.jccc.net/pdecell/transgenetics/probability.html
Multiplikasjon
La oss først se på krysningen med erteplanter der begge foreldrene er (Gg), slik som i fig. 1.8. Ved meiosen dannes det like mange kjønnsceller med G som g. Ved én befruktning er da sannsynligheten 50 % for å "trekke" G og 50 % for å trekke g, til sammen 100 %. I stedet for å bruke % oppgir vi gjerne sannsynligheter som desimaltall (0,5), evt. som brøk (½). Sannsynligheten for å trekke g fra far er 0,5 og det samme er det fra mor. Sannsynligheten for å trekke gg er da 0,5 × 0,5 = 0,25. Vi må altså gange sammen sannsynlighetene ved såkalt samtidige hendelser.
Addisjon
Sannsynligheten for GG er også 0,5 × 0,5 = 0,25. En heterozygot Gg kan vi oppnå på to måter, G fra far ogg fra mor (Gg) eller omvendt (gG). Sannsynligheten for hver av disse er 0,5 × 0,5 = 0,25, til sammen 0,5. Vi må altså legge sammen sannsynlighetene for såkalt påfølgende (uavhengige) hendelser. Dette kan vi også lese ut fra Punnetkvadratet, der vi har fire ruter, hver med sannsynlighet 0,25 (¼). Fenotypisk får vi da: Sannsynligheten for grønn (gg) er 0,25 og for gul (GG eller Gg) er 0,25 + 0,5 = 0,75.
Flere utfall
La oss se på et litt mer komplisert eksempel. Vi antar at sannsynligheten for å få gutt (G) og jente (J) er like stor (0,5) for hver fødsel. For et par som har fire barn, hva er da sannsynligheten for 3 jenter og 1 gutt? Sannsynligheten for ett bestemt utfall med 1 gutt (f.eks. GJJJ) er da (0,5) × (0,5)3 = 0,0625 (= 1/16). Men det er fire ulike utfall som gir en gutt, nemlig GJJJ. JGJJ, JJGJ og JJJG. Vi må derfor gange resultatet over (0,0625) med 4, og får da 0,25 (25 %).
Antall utfall
La oss se på alle tenkelige utfall med fire barn:
•4 jenter. Dette kan bare skje på en måte (JJJJ), n = 1. Sannsynligheten er da P = 1 × (1/16) = 1/16.
•3 jenter + 1gutt. Dette kan skje på 4 ulike måter, n = 4 (GJJJ, JGJJ, JJGJ, JJJG). P= 4 × (1/16) = 1/4.
•2 jenter + 2 gutter. n = 6 (JJGG, JGJG, JGGJ, GJJG, GJGJ, GGJJ). P= 6 × (1/16) = 3/8.
•1 jente + 3 gutter = 3 gutter + 1 jente (1/4)
•4 gutter = 4 jenter = 1/16.
•Summen av alle er (1 + 4 + 6 + 4 + 1)/16 = 1
(a+b)n
For å finne antall utfall og sannsynligheter kan vi bruke uttrykket (a+b)n. Her er a og b sannsynlighetene for hver enkelt hendelse (0,5 og 0,5 for gutt/jente), n er antall barn. Med fire barn gir dette:
(a+b)4 = a4 + 4a3b + 6a2b2 + 4ab3 + b4
Her vil a4 representere fire gutter, a3b tre gutter og en jente osv. Legg merke til at koeffisientene (1-4-6-4-1) er de samme som antall "måter" i regnestykket over. Sannsynlighetene blir:
a4 = (½)4 = 1/16
4a3b = 4 × (½)3 × (½) = 1/4 osv.
Vi får samme resultat som før.
Ulik sannsynlighet
Vi kan også bruke formelen (a+b)n når sannsynlighetene a og b er ulike. Vi tenker oss to foreldre som begge er heterozygote (Cc) for en recessivt arvelig tilstand, f.eks. cystisk fibrose (CF). Sannsynligheten for å få et barn med CF er ¼, og for et barn som ikke har CF ¾ , altså a = ¼ og b = ¾. De skal ha tre barn. Hva er sannsynligheten for at de får henholdsvis ingen, ett, to eller tre barn med CF?
Vi har generelt:
(a+ b)3 = a3 + 3a2b + 3ab2 + b3
Ingen barn med CF: b3 = 1 ´(¾)3 = 0,422 42 %
Ett barn med CF: 3ab2 = 3 ´(¼)(¾)2 = 0,422 42 %
To barn med CF: 3a2b =3 ´(¼)2(¾) = 0,141 14 %
Tre barn med CF:a3 = 1 ´(¼)3 = 0,016 1,6 %
Binomialformelen
For større antall enn over kan vi regne ut antall utfall med "binomialformelen". Totalt antall barn = N, og vi betrakter et antall på n. Disse n kan da trekkes på ("N over n") måter. Hvis vi har N = 6 (barn) totalt, og vi skal se på ("trekke") n = 2 gutter, vil dette gi:
... = 15 utfall. Med seks barn er sannsynligheten for hvert utfall med to gutter og fire jenter: (0,5)2× (0,5)4 = 0,015625. Dette må ganges med antall utfall (15) og vi får sannsynligheten for to gutter P = 0,23 (23 %).
Med store tall kan det være nyttig å kunne omforme binomialformelen, her vist med 4 av 10.
Hva er da sannsynligheten for at to av seks barn får CF hos et par der begge foreldre er heterozygote (bærere)? Vi får da:
P = (¼)2´(¾)4´...= 0,0198 ´15 = 0,297 (29,7 %)
Samme regnestykke vil gi følgende sannsynligheter for null, ett, to barn med CF av seks:
0 (0,178), 1 (0,356), 2 (0,297), 3 (0,132), 4 (0,033), 5 (0,004) og 6 (0,0002).
1.4 Kjønnsbundet arv (WIKI)
Som nevnt tidligere er Y-kromosomet betydelig mindre enn X. Menn er XY, mens kvinner er XX. Det sitter en mengde gener på X-kromosomet, og disse genene vil derved menn bare ha ett av, kvinner vil ha to. Dette gjør at arvemønsteret er ulikt hos kvinner og menn. Arv som er knyttet til gener på X-kromosomet kalles kjønnsbundet (X-linked) (WIKI). Vi bruker betegnelsen hemizygot(WIKI) når det bare er ett gen til stede. Kjønnsbundet arv er også omtalt i kap. 20.4.
Vi kjenner mest til recessiv kjønnsbundet arv. Blødersyke og fargeblindhet er kjente eksempler fra mennesker. Hos bananflue er det også kjent en rekke slike arveegenskaper, f.eks. øyenfarge (rød/hvit). Når vi lager et krysningsskjema for kjønnsbundet arv, må vi vise om det er X- eller Y-kromosomet, og vise genotypen på X. I resultatet må vi spesifisere fenotypeforholdet hos hvert av kjønnene (fig. 1.11).
Vi kan merke oss følgende generelle forhold ved recessiv kjønnsbundet arv: Det er typisk at mødre kan gi egenskapen til sine sønner. Moren er da bærer, og gir det aktuelle genet på X til sin sønn. Egenskapene er mye mer hyppig hos menn enn kvinner, fordi menn ikke kan ha genet "skjult". For at en kvinne skal få en slik egenskap må hun ha genet på begge sine X. Da må moren være bærer og faren ha egenskapen selv.
1.4.5 Andre nedarvingsmønstre
to genpar (Aa og Bb) virker inn på én egenskap . (NDSU)
Dette kan skje på flere mulige måter. Vi tenker oss en dihybrid krysning av to heterozygote foreldre, der vi får genotypene som vist i tabell 1.3.
Samvirkende gener
vil si at flere gener virker inn på én egenskap. Dette fenomenet kalles epistase (WIKI). Vi kan f.eks. tenke oss at de dominante allelene A og B koder for enzymer A og B som begge er nødvendig for å lage ett produkt P fra et forstadium F, via et mellomprodukt M (se minifigur). Cellen må da ha både A og B for å få egenskapen. Vi får spaltningsforholdet 9:7. Dette kan leses av krysningsskjemaet over (de 9 er blå i tabell 1.3).
Ensvirkende gener
vil si at flere gener har samme virkning. Det er da nok at ett av genene "virker", at vi har A eller B. Vi kan tenke oss at allelene A og B koder for enzymene A og B som gir alternative måter å lage et produkt P på (se minifigur). Det er da tilstrekkelig å ha enten stor A eller stor B. Vi får spaltningsforholdet 15:1, bare aa bbvil mangle denne egenskapen (rød i tabell 1.3).
Pleiotropi (WIKI) og letale gener
Mus har normalt brun farge, allelet som styrer dette kan kalles g. Det finnes et dominant allel (G) som gir gul farge. En heterozygot mus (Gg) vil ha gul farge. Hvis vi krysser to heterozygote gule mus, skulle vi forvente et normalt monohybrid spaltningstall 3:1 (GG, Gg og Gg blir gule, bare gg blir brun). Vi får imidlertid forholdet 2:1. Dette skyldes at allelet G i dobbel dose (GG) er dødelig, letalt. Slike mus vil ikke vokse opp. Derved vil vi få forholdet 2:1. Når ett genpar påvirker to ulike egenskaper kalles det pleiotropi.
Kvantitativ arv (TAMU) Vi kan også tenke oss at to eller flere genpar (TAMU) virker inn på samme egenskap på en rent kvantitativ måte. Allelene A og B gir denne egenskapen, mens a og b ikke gjør det. De individene som har flest av allelene Aeller B får egenskapen i størst grad. Et individ kan da få denne egenskapen gradert fra 0 til 4. Grad 0 får vi hos individer som er aa bb, grad 4 hos individer som er (AA BB). Fordelingen kan man lese ut fra tabell 1.3, og den blir slik:
Grad 0 1 2 3 4
Antall 1 4 6 4 1
Hvis der er tre genpar som bestemmer én kvantitativ egenskap på denne måten, vil vi få en gradert skala fra 0 (aa bb cc) til 6 (AA BB CC). Fordelingen av fenotyper langs denne skalaen er vist i fig. 1.12 (for krysningen (Aa Bb Cc) × (Aa Bb Cc). Eksempelvis så vil genotypen Aa BB cc gi grad 3 på skalaen.
Multifaktoriell arv
Ofte kan mange genpar virke inn på én egenskap på en mer komplisert måte. Eksempel på dette kan være kroppshøyde, hudfarge og mange sammensatte sykdommer . Vi sier at vi har multifaktoriell arv eller polygen arv. Ved slik arv er ofte også miljøet av stor betydning. Vi bruker også begrepet ikke-Mendelskarv når arven ikke følger det enkle mønsteret som er beskrevet i krysningsskjemaene over.
Penetrans (WIKI) ( gjennomtrengning)
Selv om et gen er til stede, er det ikke sikkert at egenskapen, fenotypen, viser seg, slik den normalt skulle gjøre. Dette fenomenet kan variere fra individ til individ. Et gens penetrans kan bli påvirket av andre gener og av miljøforhold. Dette fenomenet understreker at det ikke er noen enkel sammenheng mellom de genene vi har og hvordan vi blir.
1.6 Stamtavler
For å illustrere nedarvingen innen en bestemt slekt kan det være hensiktsmessig å tegne en stamtavle / familietre (pedigree).(WIKI) Fig. 1.13 viser et eksempel. Her ser vi tre generasjoner av en familie.
Symboler i stamtavler brukes slik (ndsu) (S er aktuell egenskap).
Vi ser i figuren (1.13) at det øverste paret (generasjon 1) begge er friske. De har fire barn, en gutt og tre jenter. Av disse er det en jente og en gutt som har arvet sykdommen S. Kvinnen med S får barn med en mann uten S. Ingen av deres tre barn får S. En av kvinnene uten S får barn med en mann uten S. De får to barn, ett med S.
Hvordan kan vi forklare dette arvemønsteret? (CLINTONCC) Hva slags genotyper har disse personene?
Vi ser at foreldre uten S får barn med S. Dette tyder på recessiv arv. Videre er S ikke knyttet spesielt til menn, vi har da ikke kjønnsbundet arv.
Vi kan kalle allelet som gir S for a, det normale "friske" allelet er A. Vi vet da at alle med S har genotypeaa. De som er friske er enten AA eller Aa. Foreldre uten S, som får barn med S må begge være heterozygote (bærere). I generasjon 2 har vi en mor med S (aa) som får tre barn uten S. Det tyder på at hennes mann er homozygot AA, men det er ikke sikkert. Alle barna må være bærere (Aa). Når vi skal "tolke" et stamtre for å finne ut hva slags arvegang vi har ved en arvelig sykdom, kan vi merke oss følgende typiske trekk:
Autosomal recessiv arv: Foreldre som ikke er rammet får barn som er rammet. Hvis nesten bare gutter blir rammet, er det kjønnsbundet arv, ellers autosomal.
Autosomal dominant arv: Barn som blir rammet har alltid en foreldre som er rammet.
Kjønnsbundet recessiv arv: Mødre som ikke er rammet får sønner som er rammet (se også 1.4.4).
I kap. 20 finner du mange eksempler på ulike typer arvegang hos mennesker.
1.4.7 Arv og miljø(WIKI)
Fra Helsenytt Folkehelseinstituttet
De fleste observerbare egenskaper blir ikke bestemt av genene alene, men av et samspill mellom arv og miljø. I noen tilfeller kan vi nok snakke om rent arvelige egenskaper, f.eks. blodtype, evnen til å lage normalt hemoglobin, og noen andre rent biokjemisk definerte egenskaper. Vi kan ellers si at genene girmuligheter og begrensninger for egenskaper, miljøet bestemmer hvilke egenskaper som får utvikle seg.
Det har alltid vært faglig strid om hvor stor rolle genene spiller, og hvordan miljøet virker inn. Dette gjelder i særlig grad for sammensatte egenskaper (HGP) som intelligens (WIKI) , musikalitet, aggresjon osv. I de siste årene har man kommet langt når det gjelder å kartlegge gener som har betydning for å utvikle kompliserte sykdommer som kreft og hjertekarsykdommer. Men dette betyr ikke at miljøet har mindre betydning. Genene kan gi en arvelig predisposisjon, mens miljøet kan avgjøre hva som skjer. Det ville være beklagelig hvis vår økte kunnskap om genetikk gir folk flest inntrykk av at genene bestemmer hele vår menneskelige skjebne. Denne form for genetisk determinisme er det ikke vitenskapelig grunnlag for.
1.5.1 Koblede gener (WIKI)
Ved meiosen foregår det overkrysning mellom homologe kromosomer, og vi får rekombinasjon av gener (se fig. 1.7). Gener som ligger på samme kromosom henger fysisk sett sammen, og vi sier at de er koblet (eng : linked). Alle genene langs ett kromosom utgjør en koblingsgruppe. To koblede gener kan skilles fra hverandre ved overkrysning, og dette kan utnyttes til å finne avstanden mellom dem. Det var den amerikanske genetikeren Thomas Hunt Morgan (WIKI) som først publiserte slike resultater, og han brukte bananfluer (WIKI) i sine forsøk. Om bananfluen, se også HER (ceolas)
Som eksempel kan vi ta for oss to egenskaper hos bananfluer som bestemmes av hvert sitt genpar:
Lange / korte vinger (A / a)
Grå / svart kropp (B / b)
Den førstnevnte fenotypen (lang, grå) er villtype og allelene for dette er dominante. Den andre fenotypen (kort, svart) er en mutant, og allelene er recessive.
1.5.2 Prøvekrysning (NDSU)
Aa Bb * aa bb
Vi krysser en flue som er dobbel heterozygot (Aa Bb) med en som er dobbel homozygot mutant (aa bb). Dette kalles en prøvekrysning (test cross). Det tilsvarer også en krysning mellom et individ fra F1-generasjonene med et individ fra P-generasjonen, også kalt en tilbakekrysning. Vår prøvekrysning er altså:
Lange vinger, grå kropp Aa Bb
´ Korte vinger, svart kropp aa bb
Hvis disse genene ikke er koblet, vil resultatet bli som vist i fig 1.14. Vi får da forholdet 1:1:1:1 av de fire mulige fenotypekombinasjonene.
Hvis genene er koblet (A med B og a med b) og det ikke skjer noen overkrysning, vil vi bare få de to foreldrenes fenotyper, i forholdet 1:1. Se fig 1.15.
% overkrysning
Hvis allelene AB og ab er koblet, og det skjer en overkrysning hos den av foreldrene som er Aa Bb, kan vi få kjønnsceller med en ny kombinasjon av alleler, nemlig Ab og aB. Se fig 1.16. Disse kjønnscellene vil også gi nye kombinasjoner av fenotyper, siden det andre individet i krysningen er dobbel recessiv aa bb. De nye kombinasjonene av fenotyper (lang, svart og kort, grå) kaller vi da rekombinanter. Vi tenker oss at det skjer en overkrysning mellom A/a og B/b i 18 % av meiosene. Da vil 18 % av kjønnscellene være rekombinanter, 9 % Ab og 9 % aB, og vi får tilsvarende tall når det gjelder de rekombinante fenotypene.
Rekombinasjon ved meiosen skjer på vilkårlige steder langs kromosomet (kromatidene). For at det skal skje en rekombinasjon av genene A/a og B/b må overkrysningen skje mellom disse. En overkrysning nedenfor B vil ikke gi noen rekombinasjon av A og b. Jo større fysisk avstand det er mellom A og B, jo større sjanse er det for at det skal skje en rekombinasjon mellom dem. Derved er rekombinasjonsfrekvensen et mål for avstanden.
Genetisk avstand
For å finne en ukjent avstand mellom to gener A og B, kan vi gjennomføre en prøvekrysning, slik vi nettopp har gjennomgått. Vi teller antall individer som er rekombinanter, og angir dette som % av antall individer totalt. Vi finner 18 %. Denne %-verdien er avstanden. En avstand som tilsvarer 1 % rekombinasjon kalles 1map unit (mu) eller 1 centiMorgan (cM) (WIKI) . I det aktuelle eksempelet er da avstanden A-B 18 cM. Denne avstanden kalles genetisk avstand. Den genetiske avstanden er ikke 100 % proporsjonal med fysisk avstand (antall basepar). Dette kommer av at sannsynligheten for overkrysning ikke er helt lik alle steder langs kromosomene. Se kap. 19.2 .4 og fig. 19.1.
Vi kan finne avstanden (CA) mellom en rekke genpar på ett kromosom på denne måten. Vi kan derved konstruere et genkart, som viser innbyrdes avstand mellom genene. Et kart som er laget på denne måten kalles da et koblingskart (linkage map).
1.5.3 Genkart, 3 gener
Vi har funnet at avstanden mellom A og B er 18 %. Vi vil finne plasseringen til et tredje gen D, som ligger på samme kromosom (genet D bestemmer en observerbar fenotype, f.eks. øyenfarge. Vi gjennomfører da følgende prøvekrysning:
Aa Dd ´ aa dd. Disse har fenotyper som vi kan kalleAD og ad. Vi antar at genene AD er koblet og ad er koblet i utgangspunktet.
Vi teller antall rekombinanter (Ad og aD) og finner f.eks. 8 %. Det betyr at avstanden A-D er 8 % (cM). Hvor på kromosomet ligger da D ? Vi har funnet:
A-B: 18 cM A-D: 8 cM
Hvis D ligger mellom A og B (ADB), må avstanden B-D være 10 cM (18 - 8) (se fig 1.17 A). Hvis D ikke ligger mellom A og B (DAB) må avstanden B-D være 26 cM (18 + 8) (fig. 1.17 B). Dette finner vi ut ved å gjøre prøvekrysningen Bb Dd ´ bb dd. La oss si at vi finner 26 % rekombinanter, avstanden B-D er 26 cM. Den riktige rekkefølgen må da være DAB.
Adderbarhet
I dette talleksempelet har vi antatt at genetisk avstand (cM) er adderbar. For genene DAB ville vi da ha:
DA (18 %) + AB (8 %) DB (26 %)
Dette stemmer ikke helt. Det kan nemlig skje 2 overkrysninger samtidig i én meiose, både mellom DA ogAB. Da vil rekombinasjonene Bd og bD bli opphevet, slik at B og D er på samme kromosom igjen. Vi vil altså registrere færre rekombinanter enn antall overkrysninger skulle tilsi. Eller sagt på en annen måte: hvis vi måler 26 % rekombinanter, så er antall overkrysninger mer enn 26 %, og avstanden derved litt større enn 26 cM.
Antall doble overkrysninger kan anslås ved sannsynlighetsberegning. Sannsynligheten for overkrysning mellom D og A er 0,08 (8 %) og mellom A og B er den 0,18 (18 %). Sannsynligheten for at begge skjer samtidig er da (0,08 × 0,18) = 0,0144, dvs. 1,44 %.
1.5.4 3-punkts prøvekrysning (Kimball)
Hvis vi ønsker å finne rekkefølgen av tre koblede gener (A, B og C) kan det være mer hensiktsmessig å gjøre en prøvekrysning som tar med alle tre samtidig (NDSU) :
Flue 1 (Aa Bb Cc) ´ Flue 2 (aa bb cc)
Allelene a, b, c er recessive, slik at flue 1 har fenotypen ABC, mens flue 2 er abc. Vi antar at den heterozygote (flue 1) har koblet ABC på ett kromosom og abc på ett (dette vet vi hvis den stammer fra homozygote foreldre). La oss også anta at genene sitter i rekkefølge A-B-C, med avstand AB = 10 cM og BC= 5 cM (se fig 1.18).
Ved meiosen, når kjønnscellene dannes, vil vi da ha fire muligheter når det gjelder flue 1 (Aa Bb Cc).
OK står for overkrysning. Frekvensen av dobbel OK blir da 0,10 × 0,05 = 0,005 (0,5 %).
1 OK mellom A og B gir Abc og aBC 10 %
2 OK mellom B og C gir ABc og abC 5 %
3 Dobbel OK gir AbC og aBc 0,5 %
4 Ingen OK ABC og abc 85 %
Av de 10 % OK mellom A og B (gruppe 1), vil noen få også ha overkrysning mellom B og C (gruppe 3), slik at antallet i gruppe 1 egentlig blir litt mindre enn 10 %. På samme måte blir antallet i gruppe 2 litt mindre enn 5 %.
Ved befruktning vil disse kjønnscellene avgjøre fenotypen, siden flue 2 bare har recessive alleler (aa bb cc).
Å tolke et resultat
La oss ta med et eksempel motsatt vei, der vi starter med et tenkt resultat, og skal finne rekkefølge og avstand. Vi ser på denne 3-punktskrysningen
Dd Ee Ff × dd ee ff
Vi lager 699 fluer, og får dette resultatet:
1 DEF 266 def 275 sum 541
2 DEf 54 deF 48 sum 102
3 Def 4 dEF 4 sum 8
4 DeF 22 DeF 26 sum 48
DEF og def (gruppe 1) representerer ikke-rekombinante. Vi ser videre at vi har svært få av rekombinantene Def og dEF (gruppe 3). Dette må være resultatet av en dobbel overkrysning, slik at genet D må ligge i midten. Rekkefølgen er altså E-D-F.
E-D. Vi har hatt en rekombinasjon mellom E og D i gruppe 4 (enkel) + gruppe 3 (dobbel), dvs. 48 + 8 = 54. Dette utgjør 54/699 = 0,077 = 7,7 %.
D-F. Antall rekombinasjoner mellom D og F er 102 + 8 = 110, dvs. 110/699 = 0,157 = 15,7 %.
Vi har da funnet rekkefølgen EDF og avstandene ED (7,7 cM) og DF (15,7 cM). Det betyr at avstanden EF er 7,7 + 15,7 = 23,4 cM. I vår beregninmg har vi tatt med de doble overkrysningene, og da kan vi addere avstander.
Mennesker
I Kap 1.8 viser vi hvordan koblingsanalyse kan brukes til å kartlegge humane gener. Kap 18.8 tar opp hvordan man kan bruke koblede markører i forbindelse med gentesting, og hvordan tett koblede gener utgjør enhaplotype med koblingsulikevekt. I 19.2.4 omtales sammenhengen mellom genetisk avstand i cM og fysisk avstand i Mb.
ALFRED - ALlele FREquencies Database
Individ/populasjon
Vi har hittil sett på krysninger mellom to konkrete individer, Aa × Aa osv. Vi skal nå betrakte en hel gruppe av individer under ett, og regne ut hva vi kan forvente av ulike genotyper og fenotyper i gruppen. Vi bruker begrepet populasjon (WIKI), som betyr en stor gruppe av individer av samme art, som kan forplantes med hverandre. Vi kan ha flere populasjoner av én art, og disse kan være mer eller mindre klart adskilt fra hverandre. Reinsdyr i Norge utgjør flere nokså klart adskilte populasjoner, f.eks. reinsdyra på Hardangervidda, de på Dovrefjell, på Svalbard mfl. Når det gjelder mennesker, så er det vanskelig å skille ulike populasjoner klart fra hverandre. Økt geografisk mobilitet og innvandring har gjort at ulike folkegrupper blandes mer og mer. Det er likevel vanlig å operere med noen få hovedgrupper av mennesker, nemlig de europeiske (kaukasiske), afrikanske og asiatiske (orientalske) (se kap. 20.1).
Frekvensen av et gen (allel) (WIKI)
Vi ser på blodtypeallelene A, B og O. Hvert individ har ett genpar, to alleler. Vi tenker oss at vi har 100000 mennesker. Det betyr at vi har 200000 ABO-alleler totalt i populasjonen. Hvis 52000 av disse allelene er A,sier vi at frekvensen (hyppigheten) av allelet A, f(A), er 0,26 (52000/200000), dvs. 26 %. I Vest-Europa (kaukasiske) er hyppigheten av blodtypeallelene slik (ca.):
f(A) = 0,26 f(B) = 0,06 f(O) = 0,68 eller
A = 26 % B = 6 % O = 68 %
Summen av disse skal bli 1,0 (100 %). I andre befolkningsgrupper er frekvensen av disse allelene en annen. Se tabell 1.4. Husk at hyppigheten av selve blodtypene (fenotypen) er noe annet (se under).
Frekvensen av en genotype og fenotype
La oss holde oss til blodtyper (ABO). Vi tenker oss et tilfeldig valgt barn som blir født. Vi "trekker" da to alleler fra befolkningens samling av alleler, ett fra en tilfeldig mor og ett fra en far. Sannsynligheten for at vi skal trekke allelet O fra mor er 0,68 fordi 68 % av befolkningens alleler er O. Sannsynligheten for at vi skal trekke O fra far er også 0,68. Sannsynligheten for at et tilfeldig barn får allelet O fra begge foreldrene (OO) er da 0,68 × 0,68 = 0,46 (46 %). 46 % av barna som blir født har da blodtype O.
Generelt kan vi tenke oss et gen der det er to mulige alleler, A og a. I en populasjon er frekvensene av disse:
f(A) = p og f(a) = q. Sannsynligheten for de ulike genotypene (Aa, Aa og aa) vil da bli:
(A a) AA Aa aa
(p + q)2 = p2 + 2pq + q2
Begrunnelsen for dette er antydet i eksemplet over. En fødsel i populasjonen er som et lotteri. Det trekkes to tilfeldige alleler fra populasjonens samling av alleler. Sannsynligheten for å trekke A er p, og sannsynligheten for å trekke a er q. Sannsynligheten for å trekke A to ganger er da p × p = p2 og for å trekke a to ganger er q2. Sannsynligheten for å trekke Aa er 2pq. Grunnen til dette er at vi kan få dette resultatet på to ulike måter: enten A fra mor og a fra far, eller a fra mor og A fra far. Dette gir oss pq + qp = 2pq.
Vi kan altså beregne frekvensen av genotyper og fenotyper i neste generasjon hvis vi kjenner allelefrekvensene i populasjonen. Denne sammenhengen kalles Hardy-Weinbergs lov eller prinsipp. Hvis dette gjelder uendret fra generasjon til generasjon sier vi at populasjonen er i genetisk balanse (Kimball) . Forutsetningen for dette er (Palomar) :
1 Allelene må ikke forandres ved mutasjoner.
2 Det må ikke skje innvandring eller utvandring.
3 Individene må finne sine partnere (pares) tilfeldig (i forhold de aktuelle gener).
4 Populasjonen må være stor (ellers vil tilfeldigheter kunne slå ut).
5 Det må ikke være noen seleksjon av bestemte gener.
Disse forutsetningen gjelder selvsagt aldri fullt ut. Hvis de gjorde det, ville populasjonen aldri forandre seg genetisk, og ingen biologisk utvikling ville skje. Vi kommer tilbake til dette i kap. 13.5 om evolusjon. Da er poenget at ett eller flere av punktene over ikke er oppfylt. Men over kort tid kan disse 5 punktene gjelde, i hvert fall i tilnærmet grad. Det viser seg at likningen over har bra gyldighet og er nyttig å bruke. Vi skal bruke den i noen enkle regneeksempler, og holder oss til arv hos mennesker:
Eksempel 1 (fra genfrekvens til fenotype)
En sykdom skyldes et allel a som er recessivt for det normale A. Hvis allelet a har en hyppighet på 4 %, hvor mange har sykdommen (aa) og hvor mange er bærere av a, uten å være syke?
Løsning
p = f(a) = 0,04 q = f(A) = 1,0 - 0,04 = 0,96
(p+q)2 = p2 + 2 pq + q2
= (0,04)2 + 2´0,04´0,96 + 0,962
= 0,0016 + 0,0768 + 0,9216
aa Aa AA
Vi ser at hyppigheten av syke personer (aa) er 0,0016, dvs. 0,16 %. Hyppigheten av bærere (Aa) vil være 0,0768, dvs. nesten 8 %. Av en befolkning på 4 mill. vil det da være 6400 personer med sykdommen, og 320 000 bærere.
Eksempel 2 (fra fenotype til genfrekvens)
Cystisk fibrose (CF) er kanskje den vanligste av de alvorlige recessivt arvelige sykdommene. Den skyldes et recessivt allel cf (det normale allelet er CF). I Vest-Europa (inkl. Norge) fødes ca. 1 av 2500 barn med CF. Hvor mange bærere er det i Norge?
Løsning.
Vi innfører: f(cf) = p og f(CF) = q
Hyppigheten av syke personer (cf cf) er p2
p2 = 1/2500 = 0,0004 p = 0,02
q = 1,0 - p = 1,0 - 0,02 = 0,98 1
Bærere er (CF cf), frekvensen av disse er 2pq:
2pq = 2 × 0,02 × 1 = 0,04 (4 %)
4 % av befolkningen er bærere, dvs. 1 av omkring 25 personer. Av 4,5 mill. innbyggere er dette ca. 180000 personer.
Eksempel 3 (tre alleler, ABO)
La oss beregne hyppigheten av alle fire blodtyper (ABO) når vi kjenner hyppigheten av de tre allelene:
A: p = 0,26 B: q = 0,06 O: r = 0,68.
Løsning
Vi setter opp dette i et skjema (delvis avrundet): |
||
Genotype |
Hyppighet |
Fenotype |
AA |
p2 = 0,07 |
A = 0,42 |
AO |
2pr = 0,35 |
|
BB |
q2 = 0,004 |
B = 0,084 |
BO |
2qr = 0,08 |
|
AB |
2pq = 0,03 |
AB = 0,03 |
OO |
r2 = 0,46 |
O = 0,46 |
Resultatet er altså:
42 % A - 9 % B - 3 % AB - 46 % O
Eksempel 4 (kjønnsbundet arv)
Hvis 7 % av mennene er fargeblinde, hvor mange kvinner er fargeblinde og hvor mange er bærere?
Løsning
Alleler: f - fargeblind, F - normal, frekvenser p, q.
Fargeblinde menn har genotype X(f) y. Vi skal bare "trekke" én X. Frekvensen av fargeblinde blir da lik genfrekvensen av X(f), altså p = 0,07. Da er q = 0,93.
For fargeblinde kvinner har vi:
Genotype X(f) X(f).
p2 = 0,072 = 0,0049 = 0,5 %
Kvinner som er bærere
Genotype X(F) X(f)
2pq= 2 ´0,07´0,093 = 0,13 = 13 %
1.7 KJI-KVADRAT-TESTEN (c2) (NDSU) Fra NTNU
Vi tenker oss en monohybrid krysning mellom heterozygote individer (Aa × Aa). Hvis nedarvingen er recessiv, forventer vi forholdet 3:1 mellom de ulike fenotypene. Hvis vi får 80 avkom, skulle resultatet ideelt sett være 60:20. I praksis vil tilfeldighetene gjøre at antallet ikke blir akkurat slik. Vi tenker oss et praktisk forsøk, der resultatet er 54:26. Kan dette resultatet være i samsvar med hypotesen om at spaltningsforholdet er 3:1? For å avgjøre dette bruker vi en statistisk test som kalles kji-kvadrat-test - kji er den greske bokstaven c:
(O - E)2 O = observert antall
c2 = S ------
E E = Forventet antall
I vårt eksempel får vi da:
(54 - 60)2 (26 - 20)2 (-6)2 62
c2 = -------- + -------- = --- + ---
60 20 60 20
= 0,60 + 1,80 = 2,40
Vår hypotese ("nullhypotese") er at forholdet er 3:1. c2-testen avgjør om denne hypotesen kan forkastesmed en viss sikkerhet. Vi må sammenlikne vår verdi av c2 med en tabell over c2-verdier (tabell 1.5). Vi må da først velge "antall frihetsgrader",dette er antall kategorier (fenotyper) minus 1 (n - 1), altså 2 - 1 = 1. Vi må deretter velge hvilket sikkerhetsnivå vi vil teste hypotesen på. Det vanligste er bruke 95 % sikkerhet, dvs. 0,05-nivå (99 % sikkerhet er 0,01-nivå).
Vi ser i kolonnen under 0,05 (= 5 %), og finner verdien 3,84. Hvis vår c2-verdi er større enn 3,84 så kan vi forkaste vår hypotese (3:1) med 95 % sikkerhet. Vår verdi er 2,40, altså kan vi ikke forkaste hypotesen. Konklusjonen er at vårt resultat kan være i samsvar med spaltningstallet 3:1.
Vi tar med ett eksempel til: Vi har en dihybrid krysning (se fig. 1.9), og får resultatet 34:20:17:9. Vår hypotese er at forholdet er 9:3:3:1. Kan denne hypotesen avvises? Forventet resultat etter hypotesen er 45:15:15:5. Våre avvik er da 34 - 45 = -11, 20 - 15 = 5, 17 - 15 = 2 og 9 - 5 = 4. Vi regner ut:
c2 = (-11)2 /45 + 52 /15 + 22/15 + 42/5 = 8,62.
Antall frihetsgrader er 4 - 1 = 3, tabellverdi under 0,05 er 7,82. Vår verdi er større enn dette, da kan hypotsesen avvises med 95 % sikkerhet. Disse resultatene er derved ikke i samsvar med at spaltningsforholdet er 9:3:3:1. Vi må da finne en annen forklaringsmodell på disse resultatene.
1.8 KOBLING OG LOD-SCORE (NDSU)
"Kurs" i koblingsanalyse (NDSU)
Vi har en tilstand som er genetisk betinget, og vi ønsker å finne ut hvor det aktuelle genet er lokalisert. Vi kan da gjøre koblingsanalyser. Vi kan undersøke om tilstanden nedarves sammen andre kjente gentiske markører. Disse markørene kan være gener/alleler eller bestemte DNA-sekvenser som kan identifiseres med DNA-teknikker (SNP, STR m.m. - se kap. 20). La oss se på ett eksempel. Vi undersøker den meget sjeldne sykdommen N som nedarves dominant. Vår hypotese er at genet N ligger på samme kromosom som ABO-genet. ABO-genet brukes da som markør. Vi finner en familie der sykdommen N forekommer. Stamtreet til tre generasjoner av denne familien er vist i fig. 1.27. Blå individer har sykdommen N, hvite har den ikke. Vår hypotese er som nevnt at genet for N og genet for ABO er koblet. Vi må da se på genotypene til individene i stamtreet.
Når det gjelder ABO, så kjenner vi genotypen til alle individer i figuren. Generasjon I må ha genotypeneAO og BO, siden de har barn med blodtype O. I generasjon II og III må alle A-er og B-er være heterozygote.
Siden N nedarves dominant, vet vi at personer med sykdommen har genotype Nn, de uten har nn. Geneotype NN er høyst usannsynlig, siden dette er en meget sjelden tilstand. Vi kjenner derved genotypen til alle individene, både for ABO og N.
Sykdommen "stammer" fra far i generasjon I. Han har genotypen AO Nn, og vi antar altså at genene er koblet. Det er da en fordel å vite hvordan de er koblet hos ham. Er A koblet til N eller til n, altså:
A--N og O--n eller A---n og O---N ?
Vi ser at ingen av de fire individene i generasjon II som har fått sykdommen N har blodtype A. Vi kan da regne med at allelet N ikke er koblet til A. Vi lager da den hypotesen at koblingen hos far I er O-N og A--n.Hvis det skjer en overkrysning vil vi få koblingen A--N og O--n. Vi vet at mor I avgir enten B-n eller O-n. Ut fra dette kan vi se at 7 av 8 barn har mottatt kromosomene fra far uten overkrysning, bare ett med overkrysning (barn nr. 6, merket med *). Dette bekrefter vår teori om at N og ABO er koblet. La oss ta et par eksempler: Barn 1 må ha fått B-n fra mor, og O-N fra far. Barn 2 må ha fått O-n fra mor og O-N fra far. Barn 6 må ha fått O-n fra både far og mor, altså har det vært en overkrysning hos far.
I generasjon III må individ 2 være resultat av en overkrysning Han må ha arvet A-n fra mor og O-n fra far, dette representerer en overkrysning hos far.
Totalt i familien er det 13 barn, av disse er det 11 uten overkrysning og to med. Vi kan da foreløpig konkludere at genet for N er koblet til ABO-genet. Det skjer en overkrysning mellom ABO og N i to av 13 tilfeller, ca. 15 %. Vi kan antyde at avstanden mellom genene er ca. 15 cM.
LOD. For å analysere slike data, bruker man " LOD-score (NDSU) ". Man lager da en hypotese, f.eks at genene er koblet med 15 cM avstand. Man beregner sannsynligheten for det aktuelle resultatet ut fra den hypotesen, og sannsynligheten for dette resultatet hvis genene ikke er koblet. Deretter beregner man forholdet mellom disse sannsynlighetene, i vårt eksempel får vi da ca. 30 (se under). Resultatene i stamtreet er altså 30 ganger mer sannsynlig med kobling enn det er uten, vi har "odds" på 30:1. Tar vi logaritmen av dette får vi LOD (logaritmen av odds), altså
LOD = log 30 = 1,5.
La oss kort vise beregningen av sannsynligheter, av "odds" (OD) og LOD. Vår hypotese er altså 15 % overkrysning, 85 % ikke overkrysning. Ved hver fødsel er sannsynligheten for overkrysning (OK) 0,15 og for ikke OK 0,85. Hvis det ikke er kobling mellom genene, vil allelene fordeles uavhengig, og sjansen er 0,5 for hver av kombinasjonene. Sannsynligheten for vårt spesielle resultat (2 OK, 11 ikke OK) er:
Hvis koblet, P(K) = (0,85)11 × (0,15)2
Hvis ikke koblet P(IK) = (0,5)13
OD = P(K)/P(IK) = (0,85)11 × (0,15)2/(0,5)13 = 30,8.
LOD = log 30 = 1,49
For å godta en hypotese med stor nok sikkerhet bør LOD-score være større enn 3. Det betyr at OD = 1000, altså et resultatet som er 1000 ganger mer sannsynlig med kobling (vår hypotese) enn ikke-kobling. I vårt eksempel kan vi altså ikke være helt sikre på at hypotesen er riktig.
Hvis vi antar at genene er koblet med en avstand på 0,20, vil vi få følgende resultat:
OD = (0,80)11 × (0,20)2/(0,5)13 = 28. LOD = 1,45
Her får vi lavere LOD-score, hvilket betyr at dette er en dårligere hypotese. I slike analyser må vi velge en hypotese som gir høyest (maksimum) LOD-score.
For å gjøre en slik test må vi ha en familie som er "informativ". Det betyr at vi må kjenne genotyper til mange individer i flere generasjoner. I tillegg må vi ha heterozygote individer, slik at vi kan registrere om det har skjedd overkrysninger eller ikke.
2. DNA - RNA Til bokens kapitteloversikt
2.1 DNA OPPBYGNING (WIKI)
DNA står for Deoksyribo Nucleic Acid.
DNA er en polymer (WIKI) der monomeren, eller byggeenheten, er et nukleotid . DNA inneholder fosfat , som er en protolysert form av fosforsyre (WIKI) . Dette er bakgrunnen for navnet nucleic acid , nukleinsyre (WIKI).
2.1.1 DNA byggesteiner
Et nukleotid består av tre deler: a) et sukkermolekyl,
b) fosfat og c) en aromatisk base.
DNA inneholder sukkeret 2'-deoksyribose (WIKI) , som er en aldopentose (se fig. 2.2). Som navnet sier, er dette ribose der -OH-gruppen på karbonatom nr. 2 er erstattet med bare -H. Legg merke til at nummereringen av C-atomene er 1'- 2'- 3'- 4'- 5' , som uttales "1-merket" osv. (fig. 2.2). I DNA er -OH-gruppen på C nr. 3' og 5' bundet til fosfat, mens C nr. 1' er bundet til en av de 4 aromatiske basene.
Fosfat (PO43) er resultatet av fullstendig dissosiasjon av fosforsyre (WIKI) , H3PO4. I DNA er to av O-atomene i fosfat bundet til hver sin deoksyribose (fig. 2.6).
De 4 basene
DNA inneholder 4 heterosykliske aromatiske baser:
2 puriner A = adenin og G = guanin (WIKI)
2 pyrimidiner C = cytosin og T = tymin (WIKI)
Vi sier at disse er heterosykliske (ulike atomer, N og C i ringen), aromatiske (WIKI) (annenhver enkel- og dobbelbinding) baser (-N= og -NH2 har basisk karakter). Purinbasene er store (to ringer) og pyrmidinbasene er små (huskeregel: stort navn - lite molekyl og lite navn - stort molekyl). Disse ringene nummereres slik som vist i fig. 2.4 (1-2-3 osv, ikke 1'-2'-3').
2.1.2 Nukleosider og nukleotider (WIKI)
Et nukleosid er en base + sukker. Dette får vi når én av de 4 basene (A, C, G, T) blir koblet sammen med 2'-deoksyribose. Da vil et N-atom fra basen bli bundet til C-1' i sukkeret, og vi får en N-glykosid-binding (fig. 2.5). Vi kan da få 4 ulike nukleosider, nemlig:
Deoksy- adenosin, -guanosin, -cytidin og -tymidin. Legg merke til at navnene på nukleosidene er litt forskjellig fra de tilsvarende basene.
Et nukleotid er en base + sukker + fosfat. Dette får vi når vi kobler en eller flere fosfatgrupper til et nukleosid (fig. 2.5). Vi får da :
Deoksy-
adenosin-fosfat = dAMP = adenylat
guanosin-fosfat = dGMP = guanylat
cytidin-fosfat = dCMP = cytidylat
tymidin-fosfat = dTMP = tymidylat
I navnene over kan vi evt. presisere monofosfat. Hvis vi har to fosfatgrupper, får vi (deoksy-) adenosin- difosfat,dADP, osv. Med tre fosfatgrupper får vi (deoksy-) adenosin- trifosfat, dATP, osv. Den fosfatgruppen som er nærmest sukkeret kalles a-fosfat, deretter b- og g-fosfat. Navnet adenylat osv. kommer av at dette er en protolysert form av adenylic acid, der fosfatgruppen ikke er protolysert.
Hvis vi skal være litt nøye, er navnet på dATP: 2'-deoksyadenosin-5'-trifosfat.
2.1.3 Polynukleotid (WIKI)
Den repeterte enhet i DNA (monomeren) er som sagt et nukleotid, og DNA er derved et polynukleotid. Når DNA lages (syntetiseres) brukes deoksynukleosidtrifosfater (dATP osv.) som byggemateriale. Det er da -fosfat som beholdes, mens - og g-fosfat spaltes av som pyrofosfat (2 fosfat sammen) (se fig. 7.4).
Bindinger
Når C-1' i deoksyribose binder N-atomet i en av basene, får vi som nevnt en N- glykosidbinding (WIKI) . I et nukleotid er fosfat bundet sammen med 5'-OH-gruppen i sukkeret. Dette er en binding mellom en syre (fosforsyre) og en alkohol (-OH i sukkeret). Bindingen er da en esterbinding, en fosfoesterbinding. Når to nukleotider bindes sammen, er det -fosfat fra ett nukleotid som bindes til 3'-OH-gruppen i neste nukleotid. Dette er også en fosfoesterbinding. To nukleotider er derved bundet sammen av to fosfoesterbindinger, vi sier at vi har fosfodiesterbinding, eller 3'-5'-fosfodiesterbinding (WIKI).
Retning
Vi ser av fig. 2.6 at et polynukleotid har retning. I den ene enden har vi sukker med en fri 3'-OH, i den andre enden har vi sukker med en fri 5'-fosfat (5'-P). Positiv retning er fra 5'-P-enden mot 3'-OH-enden, dvs. 5'®3'. Når vi sier at rekkefølgen på basene er ACTG, menes det at vi starter med å lese fra den enden der sukkeret har en fri 5'-ende, dvs. 5'-ACTG-3'.
2.2 DNA STRUKTUR (WIKI)
DNA har flere mulige former, men den viktigste er den såkalte Watson-Crick DNA, eller B-DNA.
Denne strukturen ble presentert av James D. Watson og Francis H. C. Crick i tidsskriftet Nature 25. april 1953, i en beskjeden ensiders artikkel.
To polynukleotidkjeder bindes sammen ved hjelp av hydrogenbindinger mellom 2 og 2 baser (Kimball). Vi sier gjerne at vi har dobbelttrådet DNA, som består av to enkeltttråder. Vi bruker ofte betegnelsen ssDNA (singlestranded) om enkelttrådet, og dsDNA (doublestranded) om dobbelttrådet DNA.
AT og GC
Basene A og T danner 2 H-bindinger (WIKI) med hverandre, mens G og C danner 3 H-bindinger med hverandre. Et GC-par er derved sterkere bundet sammen enn et AT-par. Fig. 2.4 viser hvor H-bindingene mellom disse basene (WIKI) oppstår.
Komplementære (WIKI)
Legg merke til at hvert basepar består av en purinbase (A eller G) og en pyrimidinbase (T eller C). Dette betyr at størrelsen på hvert av de to parene AT og GC er omtrent like. Pga. H-bindingsevne og størrelse kan A bare binde seg til T, G bare til C osv. Vi sier at A og T er komplementære baser, det samme er G og C. De to enkelttrådene i DNA er bundet sammen bare av GC-par og AT-par. Vi sier at de to trådene er komplementære. En konsekvens av denne baseparingen er at DNA alltid vil inneholde like mye A som T, og like mye G som C. Derved har vi også (A+G) = (T+C), dvs. like mye puriner som pyrimidiner. Dette forholdet kalles Chargaffs regel (WIKI) . Chargaff påviste denne sammenhengen før man kjente strukturen av DNA. Vi bør ellers merke oss at vi ikke kan si at (A+T) = (G+C). Dette forholdet kan variere noe fra en organisme til en annen , og fra en kromosomdel til en annen. Vi kan ha høyt eller lavt GC-innhold.
Motsatt retning (WIKI)
De to trådene i DNA-molekylet har motsatt retning, slik figur 2.6 viser. Vi sier at trådene er antiparallelle. Hvis den ene DNA-tråd har baserekkefølge 5'-AACTGACC-3', så har den komplementære tråden rekkefølge: 5'-GGTCAGTT-3', slik:
® 5'-AACTGACC-3' ®
¬ 3'-TTGACTGG-5' ¬
Et basepar er en plan aromatisk struktur, og baseparene inne i dobbeltspiralen ligger tett stablet, nesten som pannekaker. De to basene i ett par kan imidlertid være noe vridd noe i forhold til hverandre, slik at "pannekaken" ikke er helt flat. DNA-molekylets indre er derved en ganske tett og kompakt struktur.
DNA-spiralen dreier mot høyre (med klokka) når vi beveger oss langs en tråd, slik om gjengene i en vanlig skrue. En full omdreining (360) på spiralen har en lengde på 34 Å (= 3,4 nm), og utgjør 10 basepar. Hvert basepar utgjør da en lengde på 3,4 Å (0,34 nm).
Overflaten
Kjeden av sukker og fosfat vender ut mot dobbeltspiralens utside. Siden fosfat er negativt ladd, vil dette gi DNA-molekylet en jevn negativ ladning. Kjeden av sukker og fosfat kalles på engelsk DNA-molekylets ryggrad (backbone). De to DNA-trådene tvinner seg rundt hverandre i en dobbeltspiral (double helix), med ryggraden ut, og det blir da groper langs overflaten mellom ryggradene. Vi får en stor grop ( major groove (WIKI) ) og en liten grop (minor groove). Baseparene er gjemt inne i dobbeltspiralen, men de er til en viss grad tilgjengelig fra utsiden i major groove. De kjemiske gruppene som er øverst i hver base i fig 1.4 er tilgjengelig for molekyler som skal binde DNA.
Størrelse
Mennesket har 23 par kromosomer. Det største av disse, kromosom 1, inneholder ett DNA-molekyl på ca. 260000000 basepar = 260 mill bp (se fig. 8.2). Antallet basepar i hele det humane genom (23 kromosomer) er ca. 3 milliarder, dvs:
3×109 b = 3000 Mb = 3000000 kb = 3000000000. Dette gir en samlet lengde på ca. 1 m (0,34 nm pr. basepar, du kan regne ut selv!) Hvert basepar representerer en molmasse på ca. 600 g/mol. I biokjemien brukes ofte betegnelsen dalton (WIKI) (d) for molekylmasse/vekt. En molmasse på 600 g/mol tilsvarer 600 d = 0,6 kd. DNA-molekylet i kromosom 1 har derved en molekylmasse på:
0,6 kd/bp × 250 mill bp = 150000000 kd (se tabell 2.1).
Andre DNA-former
Vi har beskrevet den dominerende formen av DNA, som har fått betegnelsen B-DNA eller Watson-Crick DNA. Denne har en diameter på 2 nm, og hver omdreining utgjør 10 bp og 3,4 nm. DNA kan også ha andre konformasjoner. De to viktigste av disse har fått betegnelsen A-DNA og Z-DNA (WIKI) . De ytre dimensjonene for disse er oppgitt i tabell 2.2. Som man ser, er A-DNA tykkere, og Z-DNA tynnere enn vanlig DNA. Z-DNA er dessuten venstredreiende, i motsetning til A- og B-DNA. Det er påvist at Z-DNA kan forekomme in vivo (i levende celler), men det er foreløpig usikkert hvilken
betydning dette fenomenet evt. kan ha.
2.3 DENATURERING, HYBRIDISERING
Denaturering (WIKI) av DNA vil si at de to trådene skiller lag. Dette kan skje ved oppvarming. Dette kalles også smelting, og smeltepunktet av et DNA-molekyl (tm)(WIKI) er definert som
den temperaturen da 50 % av DNA-trådene har skilt lag og blitt enkelttråder (ssDNA). Smeltepunktet til DNA er ca. 90 C. Det er viktig å merke seg at smeltepunktet er høyere jo større innhold det er av G + C. Dette skyldes at GC-parene er bundet sammen med tre H-bindinger, mens AT-parene bare har to.
Renaturering
vil si at to enkelttråder tilbakedanner dobbelttrådet DNA (ssDNA ® dsDNA). Dette kan skje hvis denaturert DNA avkjøles. For at renaturering skal skje riktig, bør avkjølingen skje langsomt. Da dannes H-bindingene langsomt, og derved mest mulig korrekt. Ved for rask avkjøling kan det tenkes at områder av to DNA-tråder som ikke er helt komplementære, likevel går sammen til en dobbelttråd. Ved en teknikk som kalles PCR (se 14.4) foretas denaturering av DNA ved ca. 95 C .
Hybridisering (WIKI)
Hvis man har to DNA -enkelttråder fra ulik kilde, som har komplementære områder med hverandre, vil disse også kunne gå sammen og danne dobbelttrådet DNA. Slik sammensmelting av to tråder kalles generelt hybridisering. De to trådene kan være fra ulike kilder, de kan ha ulik størrelse, og de behøver ikke være 100 % komplementære. De kan likevel hybridisere, slik at vi får områder med dobbelttrådet DNA. En RNA-tråd kan også hybridisere med en DNA-tråd. Vi kan altså ha DNA-DNA hybridisering, og vi kan ha RNA-DNA hybridisering. Hybridiseringsteknikker er en viktig del av mange analysemetoder.
I kap. 14.10 blir smeltepunkt for DNA og hybridiseringsteknikker nærmere omtalt.
Enzymer som kan skille de to trådene fra hverandre ved å bryte H-bindingene kalles helicaser (WIKI)
DNA-molekylene i våre kromosomer er lineære, hver av de to de to DNA-trådene har en 5'-ende og en 3'-ende. Men det er mange organismer og celler som inneholder sirkulære DNA-molekyler, de har ingen ende. DNA i bakteriekromosomer er sirkulært. Vi finner små sirkulære DNA-molekyler som kalles plasmider (WIKI) i mange bakterier, planter og i gjærsopp. DNA i mitokondriene i eukaryote celler (bl.a. hos mennesker) er også sirkulært.
Vi kan tenke oss at vi får sirkulært DNA ved å koble de to endene av et lineært DNA sammen. Vi får da en "slapp" (relaxed) sirkel. Siden begge trådene er sammenhengende, kalles det noen ganger kovalent lukket sirkel, ccc (covalent closed circle).
Vi tenker oss så at vi tvinner DNA-spiralen to ganger fra hverandre før vi kobler sammen endene. Vi får da et DNA-molekyl med færre omdreininger rundt sin egen akse. Da vil hele DNA-sirkelen tvinne seg rundt seg selv, vi får en negativ supervridd (supercoiled) DNA (WIKI) . Hvis vi i stedet tvinner DNA-spiralen en eller to ganger ekstra før den kobles sammen, får vi positivt supervridd DNA.
To DNA-molekyler som er like bortsett fra antall omdreininger rundt sin egen akse kalles topoisomere (WIKI) .
Enzymer som kan innføre flere eller færre dreininger på DNA-spiralen kalles DNA topoisomeraser . Å gjøre dette krever tre operasjoner. Først må en eller begge ryggradene kuttes ved å bryte en fosfoesterbinding (endonuklease). Så må en DNA-tråd føres rundt en annen. Til slutt må ryggraden limes sammen igjen (ligase). Topoisomerase-I-enzymer kutter bare én ryggrad og tvinner trådene mer slik at vi får positiv supercoiling. Type II kutter begge ryggradene og innfører negativ supercoil. Disse enzymene kan altså både bryte en fosfoeseterbinding (nuklease) og etterpå lage en ny fosfoesterbinding (ligase).
Plasmider og andre små sirkulære DNA-molekyler får normalt en omdreining for lite på DNA-spiralen før sirkelen lukkes, slik at at de blir negativt supervridd. Supervridd sirkulært DNA har en mer kompakt form enn en åpen (slapp) sirkel.
2.5 RNA (WIKI)
RNA står for Ribo Nucleic Acid. Rent kjemisk er det tre viktige forskjeller mellom DNA og RNA:
1. RNA inneholder ribose , ikke deoksyribose.
2. RNA inneholder basen Uracil (U) i stedet for Tymin (T) . U skiller seg fra T ved at den mangler en metylgruppe, ellers er de like.
3. RNA foreligger normalt enkelttrådet i cellene.
Mens basene i DNA er bundet sammen og beskyttet inne i dobbeltspiralen, er basene i RNA ofte åpne og ubeskyttet mot miljøet rundt. DNA er derfor utrolig stabilt og tåler svært mye før det ødelegges, mens RNA er ustabilt, og det har ofte begrenset levetid før det brytes ned. Dette gjelder både i en levende celle (in vivo) og utenfor cellen (in vitro).
RNA-funksjon
DNA er selve arvestoffet, og inneholder den genetiske informasjonen. Av RNA har vi tre hovedklasser, som alle er involvert i overføringen av denne genetiske informasjonen ved proteinsyntesen. Vi har:
mRNA, messenger RNA (WIKI) , er en avskrift av baserekkefølgen i en bit av DNA (et gen). Denne brukes som oppskrift ved proteinsyntesen.
rRNA, ribosomalt RNA (WIKI) , er med på å bygge opp ribosomene, der proteinsyntesen forgår.
tRNA, transfer RNA (WIKI), bringer rett aminosyre på rett plass under proteinsyntesen.
I tillegg til disse 3 hovedtypene har vi også andre RNA-typer, bl.a. snRNA, snoRNA og miRNA (WIKI), se kap 8.5.
Sekundærstrukturer
Langs en og samme RNA-tråd kan det tenkes at det finnes to områder som er komplementære med hverandre. Disse to områdene vil da kunne bindes sammen med H-bindinger på vanlig måte (se fig. 2.11).En slik struktur kan kalles en hårnål. På engelsk brukes betegnelsen hairpin eller stem and loop. Dobbelttråddelen utgjør da "stem" (stamme) og området mellom utgjør "loop" (løkke).
Legg merke til at de to områdene av RNA som har gått sammen er antiparallelle. Slik kan enkelttrådet RNA få en dobbelttrådet sekundærstruktur. Dette er et viktig fenomen både in vivo og in vitro (utenfor celler, i reagensrør e.l). Både tRNA og rRNA inneholder flere områder med slike dobbelttrådstrukturer, Se fig. 5.4 som viser tRNA med 3-4 slike hårnåler.
Også enkelttrådet (denaturert) DNA, ssDNA, kan danne slike sekundærstrukturer med seg selv, altså samme tråd.
3. TRANSKRIPSJON Til bokens kapitteloversikt
3.1 DET SENTRALE DOGME (WIKI)
I 1956 lanserte Francis Crick (jfr. Watson-Crick) den fundamentale teorien at genetisk informasjon i alle biologiske systemer følger denne veien: DNA® RNA ® Protein, dvs. de blå pilene i fig. 3.1.
Dette kalles ofte det sentrale dogme (central dogma) innen molekylær biologi. Et dogme er en trossetning eller læresetning, noe vi helst forbinder med fundamentalistiske religioner. Det sentrale dogme er nok noe mer enn tro, det er en vitenskapelig teori, og den er etter hvert blitt meget godt underbygget, selv om den også er blitt noe modifisert. Allerede fra starten var Crick åpen for at genetisk informasjon også kunne flyte andre veier enn de blå og rød pilene i figuren. Dette er blitt bekreftet siden, bl.a. gjennom oppdagelsen av revers transkripsjon (RNA ® DNA), og replikasjon av RNA hos enkelte virus (RNA ® RNA). Pilene i fig. 3.1 representerer de grunnleggende prosesser innen molekylær biologi. Det er enda ikke noe holdepunkt for at genetisk informasjon kan gå fra protein til RNA/DNA (aminosyresekvens ® basesekvens).
Det er forholdene hos E. coli , altså en prokaryot celle , som beskrives i det følgende. Forholdene i eukaryote celler er grunnleggende lik, men viktige ulikheter vil bli tatt opp i kap. 8.
Transkripsjon vil si syntese av RNA med DNA som templat. Vi kan oversette transkripsjon med avskrift,og templat med modell (eller støpeform). Transkripsjonen skjer ved at templattråden (template strand) tiltrekker komplementære baser én etter én, A til T, U til A, G til C og C til G (fig. 3.7 og 3.8). (WIKI)
Cellen inneholder ulike typer RNA, og alle disse blir laget ved transkripsjon fra DNA (se fig. 3.2). I ett bestemt område er det normalt bare den ene DNA-tråden som blir brukt som templat (fig. 3.4). Hvilken DNA-tråd som blir brukt kan være ulikt fra gen til gen. Men innen ett bestemt område av DNA (ett gen) er hovedregelen at bare den ene tråden blir brukt (fig. 3.4).
Kodende tråd . Den RNA-tråden som blir laget vil være komplementær til DNA-templattråden. RNA
vil da være lik den andre DNA-tråden (bortsett fra T/U), og denne DNA-tråden kalles den kodende
tråd. Man bruker også betegnelsen sense (kodende) og antisense (templat)-tråd. Det er den kodende
trådens baser som blir oppgitt når man skriver DNA-sekvensen av et gen. Denne baserekkefølgen vil
derved tilsvare den som vi finner i mRNA. Se fig. 3.3.
3.3 RNA POLYMERASE
Transkripsjonen blir katalysert av enzymet RNA polymerase (RNAP). Dette er et kjempestort sammensatt protein med seks subenheter: a2bb'ws. RNA polymerase har en molekylmasse på 480 kd, og vi finner ca. 3000 slike molekyler pr. E. coli-celle. Dette enzymet utfører alle de tre trinnene som vi kan dele transkripsjonen i: Det åpner DNA-spiralen og starter transkripsjonen (initiering), det beveger seg langs templattråden og binder sammen RNA-nukleotidene i tur og orden (elongering), og det avslutter transkripsjonen på rett sted (terminering). De ulike subenhetene har ansvar for hver sin oppgave. Subenheten b utøver selve polymeraseaktiviteten, s er nødvendig for oppstart (initiering), w er ikke essensiell for transkripsjon, og blir ofte ikke nevnt.
Leseretning
RNA polymerase beveger seg langs DNA-tråden i leseretningen, eller nedstrøms (downstream) . DNA
som befinner seg motsatt av leseretningen sies å være oppstrøms (upstream) . Den første basen
som blir transkribert er base (nukleotid) nr. 1, osv. Baser som ligger foran (oppstrøms for) dette får
nummer 1, 2 osv. Som nevnt i 3.2 så kan leseretningen være motsatt for et annet gen, et annet sted
langs samme DNA. I så fall er kodende tråd og templattråd også motsatt (fig. 3.4).
3.4 INITIERING
Transkripsjonen starter ved at RNA polymerase binder seg til et bestemt område av DNA-molekylet,
og åpner dobbelspiralen, dvs. skiller de to DNA-trådene fra hverandre. Det er -subenheten i RNA
polymerase som gjør at enzymet binder seg på riktig sted, nemlig der transkripsjonen skal begynne.
Dette DNA-området kalles enpromoter. En promoter er en bestemt DNA-sekvens som RNA
polymerase vil binde seg til. E. coli RNA polymerase vil gjenkjenne en E. coli-promoter. RNA
polymerase fra andre organismer vil gjenkjenne andre promotersekvenser. Men mange ulike
prokaryote celler har promotere som er nokså like.
Konsensus
Man har kartlagt en rekke promotere fra ulike gener i E. coli. Det viser seg at det er to områder som er nesten helt like for alle E.coli-gener. En slik sekvens som alle gener har mer eller mindre felles, kalles enkonsensussekvens (konsensus = enighet). Den ene konsensussekvensen av promoteren ligger omkring base nr.-10, dvs. 10 baser oppstrøms fra transkripsjonsstart. Denne sekvensen er TATAAT og kalles ofte en Pribnowboks . Den andre er i området -35. Konsensussekvensen hos E. coli ser slik ut:
-35 -10 +1
5'-TTGACA - (17 baser) - TATAAT - Start ®
Noen promotere er sterke, dvs. at RNA polymerase binder seg effektivt, og transkripsjonen lett kommer i gang. Andre promotere er svake, og transkripsjonen fra slike promotere skjer i mindre grad. Jo mer promoteren er lik konsensussekvensene, jo sterkere er den. Det har vist seg at mutasjoner innen disse to konsensusområdene (10 og 35) kan nedsette en promoters effektivitet ganske mye, mens mutasjoner i området mellom (17 baser) ikke har stor betydning. For en rekke kjente promotere kan vi oppsummere -10-området slik (fra 1993):
T77A76T60A61A56T82. Tallene viser hvor mange % av de kjente promotere som har nettopp denne basen.
Database over alle E. coli-promotere (gå til Resource - promEC)
Når RNA polymerase binder seg til promoteren, dekker den et område av DNA på 50-60 baser. Siden en omdreining av DNA tilsvarer 10 basepar, vil dette betyr ca. seks omdreininger av DNA-spiralen. Det området som dekkes av RNA polymerase vil være fra base nr. 45 til +10. De to DNA-trådene vil bli skilt fra hverandre i området -15 til +5. Komplekset av RNA polymerase og den delvis åpnede DNA-tråden kalles et åpent promoterkompleks (fig. 3.5).
Selve transkripsjonen starter i dette åpne promoterkomplekset. Der hvor den første RNA-basen blir trukket inn, dvs. ved selve transkripsjonens start har vi base nr. 1. Dette er 10 baser nedstrøms for TATAAT-boksen.RNA polymerase er selv i stand til å feste den aller første RNA-nukleotiden på plass, og deretter henger den på én etter én.
Når transkripsjonen har startet, vil -faktoren løsne fra resten av enzymet. RNA polymerase med
-faktor kalles gjerne holoenzym (hele enzymet), uten -faktoren kalles det basalenzym (core enzyme)
(se fig. 3.6).
Andre RNA polymeraser
Innen genteknologi brukes RNA polymerase som er isolert fra ulike organismer, f.eks. fra E. coli eller fra bakteriofag T7 (dvs. T7-infisert E.coli). T7 RNA polymerase vil binde seg til en annen DNA-sekvens enn E. coli RNA polymerase, og derved starte transkripsjon fra andre steder. Dette er da T7-promoteren, og den inneholder denne skevensen:
-TAATACGACTCACTATAGGGAGA -
Denne ligger i posisjon -17 til +6 i forhold til transkripsjonsstart, og den regnes som en sterk promoter.
Humane gener har også promotere som humane RNA polymeraser gjenkjenner og binder seg til (se
kap. 8.8).
3.5 ELONGERING
Når transkripsjonen har startet beveger RNA polymerase seg langs DNA-tråden som samtidig blir
åpnet. Vi får et åpent elongeringskompleks (fig. 3.7). Det er hele tiden et ca. 17 basepar langt stykke
av DNA som er åpent.Den ene DNA-tråden er hele tiden templat. Nye nukleotider blir koblet til den
voksende RNA-kjeden. Dette skjer med en hastighet på ca. 50 nukleotider pr sekund.
Byggesteinene som blir brukt ved RNA-syntesen er nukleosid trifosfater, nemlig UTP, ATP, CTP og GTP, ofte skrevet som NTP.
Retning
Når en ny nukleotid blir hengt på en voksende RNA-tråd, skjer dette ved at -fosfatgruppen i trifosfatet bindes til den fri 3'-OH-gruppen i forrige nukleotid. b- og g-fosfat spaltes av som fritt pyrofosfat (PPi). Nye nukleotider blir altså hele tiden hengt på i den fri 3'-OH-enden av den voksende RNA-tråd. RNA lages da i retningen 5'®3'. Templattråden blir lest i retningen 3'®5', og vi beveger oss da i retningen 5®3' langs den kodende tråden.
Vi har allerede nevnt at vi beveger oss langs DNA-tråden i leseretningen, eller nedstrøms. Motsatt av leseretningen er oppstrøms.
Et lite stykke av den nylagde RNA-tråden vil henge sammen med DNA templattråden inne i elongeringskomplekset, ved hjelp av H-bindinger. Disse to trådene er jo komplementære (fig. 3.8).
Siden det er trifosfater som brukes som byggesteiner, vil det første nukleotidet i RNA, som utgjør
5'-enden, har tre fosfatgrupper (PPP).
3.6 TERMINERING
Terminator
Transkripsjonen avsluttes ved at den voksende RNA-tråden løsner fra DNA-tråden, og at RNA polymerase frigjøres. Dette skjer ved en bestemt DNA-sekvens, som kalles en terminator (fig. 3.9). Her finner vi to nærliggende sekvenser på samme DNA-tråd som er komplementære med hverandre. Når disse sekvensene er transkribert, vil det nylagede RNA kunne danne en hårnålstruktur (se fig. 2.11 og 3.9). Denne hårnålen vil svekke bindingen av RNA polymerase til DNA-tråden.
Litt etter disse komplementære sekvensene inneholder DNA-templaten mange A-er etter hverandre.
RNA vil da inneholde flere U-er. Dette gjør at den nylagde RNA-tråden sitter dårlig festet til DNA pga.
mange A/U-par (bare to H-bindinger). Dette sammen med hårnålen, vil medføre at hele
elongeringskomplekset går fra hverandre, og transkripsjon opphører (se fig. 3.8).
I tillegg kan det være egne proteiner involvert i termineringen, såkalte termineringsfaktorer. Særlig en
slik, som kalles rho (gresk ), er viktig i E. coli. Med denne til stede kan det skje terminering også
andre steder enn ved terminatorsekvensene. Rho kan tenkes å binde seg til bestemte sekvenser i
nylaget mRNA. Dette protein-RNA-komplekset forstyrrer og avbryter transkripsjonen på liknende måte
som hårnålstrukturen ved en terminator.
En transkripsjonsenhet
En transkripsjonsenhet er en avgrenset del av DNA som blir transkribert under ett, fra én promoter.
En transkripsjonsenhet kan inneholde koden for flere polypeptider, altså flere gener (se fig. 6.4 og
6.11). Når det gjelder rRNA og tRNA blir flere RNA-enheter transkribert under ett, og kuttet opp
etterpå (fig. 5.3 og 5.5). En transkripsjonsenhet kan derved inneholde flere gener.
4. PROTEINER Til bokens kapitteloversikt
Ved translasjon blir baserekkefølgen i DNA og RNA oversatt til aminosyrerekkefølgen i et protein. For
å forstå genenes betydning er det derfor viktig å kjenne til hvordan proteinene er bygget opp, og
sammenhengen mellom struktur og funksjon.
4.1 AMINOSYRER
Et protein er en lang kjede av aminosyrer. Dette kalles et polypeptid fordi bindingen mellom
aminosyrene heter peptidbinding.
Vi kan tenke på en aminosyre som ett sentralt C-atom med 4 grupper rundt seg (se fig 4.1):
1 Karboksylgruppen -COOH (-COO-)
2 Aminogruppen -NH2 (-NH3+)
3 Et H-atom -H
4 En variabel gruppe -R
Aminosyrene i proteiner er a-l-aminosyrer (fig. 4.1). a-C er det samme som C-2. Aminogruppen sitter
på dette C-atomet. Betegnelsen l har å gjøre med stereokjemi. Rundt C-2 (a) har vi 4 ulike grupper,
det er derved stereogent, og vi kan ha 2 stereoisomere (enantiomere ). Våre proteiner er bygget opp
av 20 ulike aminosyrer, og alle disse har l-konfigurasjon .
På a-C sitter det en gruppe som kalles R-gruppe eller sidegruppe. Det er denne som utgjør forskjellen mellom de 20 aminosyrene. Sidegruppen kan være stor eller liten, den kan være polar eller upolar, og den kan inneholde andre funksjonelle grupper. Fig. 4.3 viser sidegruppene til de 20 aminosyrene.
Vi er ofte interessert i R-gruppenes polare egenskaper. Noen er upolare, noen er polare og noen er ionisert fordi de har syre/basegrupper. Se fig 4.3. Den minste aminosyren, glycin, har bare et H-atom som R-gruppe, mens f.eks. tryptofan og arginin er ganske store.
Det har vært vanlig å bruke tre små bokstaver for å forkorte aminosyrenes navn. Men for å gjøre det enklere, spesielt ved databehandling, er det blitt mer og mer vanlig å bruke bare én stor bokstav som forkortelse (tabell 4.1).
4.2 PRIMÆRSTRUKTUR
To aminosyrer bindes sammen med en peptidbinding. N-atomet (NH2) i én aminosyre bindes til C-atomet (COOH) i en annen aminosyre (fig. 4.2). Dobbeltbindingen mellom C og O i peptidbindingen kan også tegnes mellom C og N (resonansformer). Dette medfører at alle atomene rundt peptidbindingen(C-CO-NH-C) må ligge i ett plan og utgjør en stiv struktur (fig. 4.2).
Et polypeptid består av mange aminosyrer som er hengt sammen på denne måten. Et protein er et polypeptid og kan bestå av mange hundre aminosyrer.
To aminosyrer som er bundet sammen kalles et dipeptid, tre aminosyrer er et tripeptid, og mange aminosyrer blir et polypeptid. Både aminogruppen og karboksylgruppen blir bundet opp i peptidbindingene. Disse gruppene er derved ikke fri, unntatt én i hver ende av peptidkjeden. Den siste aminosyren, som har en fri karboksylgruppe, kalles C-terminal, og den første, som har en fri aminogruppe, kalles N-terminal. Når vi leser aminosyrerekkefølgen, starter vi med N-terminalen. En polypeptidkjede har en ryggrad av -(NH-CH-CO)-(NH-CH-CO)-(NH-CH-CO)- osv., mens R-gruppene som sitter på a-C vil være fri og stikke ut fra ryggraden.
To ulike aminosyrer, f.eks. (Ala + Leu) kan bindes sammen på 2 ulike måter, avhengig av hvem som er N og C-terminal: (N)-Ala-Leu-(C) eller (N)-Leu-Ala-(C). Når vi har 20 ulike aminosyrer, kan vi sette sammen 400 ulike dipeptider (20 × 20), hvis vi også tillater samme aminosyre brukt to ganger. Vi kan da lage 8000 ulike tripeptider (20 × 20 × 20), og 1×1013 ulike dekapeptider (2010). Vi skjønner da at antallet ulikepolypeptider som kan konstrueres kan sies å være uendelig stort.
Et polypeptids primærstruktur er det samme som aminosyrerekkefølgen. Vi kan skrive dette med tre- eller énbokstav forkortelser, der 1. aminosyre er N-terminal:
Leu-Ala-Ser-Trp-Asp-Pro-Ile = LASWDPI.
Aminosyrerekkefølgen i proteinene blir genetisk bestemt av baserekkefølgen i DNA-molekylet ved
translasjonen (kap. 5). I 2001 ble hele basesekvensen til menneskets DNA bestemt og kunngjort. Nå
er jakten på å kartlegge alle våre proteiner i full gang. Man snakker om at vi går fra genomics til
proteomics.
Kimball
4.3 SEKUNDÆRSTRUKTUR
Med sekundærstruktur menes den tredimensjonale konformasjon som peptidkjeden har. De to
viktigste typene av sekundærstruktur er a-heliks (spiral) og b-bånd (b-sheet).
a-heliks (fig. 4.4A)
Ryggraden i aminosyrekjeden danner en høyredreiende spiral. R-gruppene stikker ut fra spiralen. Spiralen gjør en omdreining (360°) for hver 3,6 aminosyre, og dette utgjør en lengde på 0,54 nm. Spiralstrukturen er stabilisert av hydrogenbindinger . Disse forekommer regelmessig, mellom C=O-gruppen i én aminosyre (nr.n) og N-H-gruppen i aminosyren 4 lenger framme (n+4). Hydrogenbindingene har altså retning langsspiralen.
En a-heliks i et globulært protein kan være så liten som 10 aminosyrer, dvs. ca. 3 omdreininger. En
a-heliks som krysser en cellemembran er på ca. 20 aminosyrer (6 omdreininger), mens noen
a-helikser kan være mange hundre aminosyrer lange, f.eks. i kollagen .
b-bånd (fig. 4.4B)
Hvis to peptidkjeder ligger parallelle ved siden av hverandre, kan det dannes H-bindinger mellom de
to kjedene, én H-binding pr. aminosyre. Hvis kjedene ligger i motsatt retning, sier vi at de er
antiparallelle (fig 4.4). I motsatt fall er de parallelle . På engelsk kalles de også b-pleated sheet , som
betyr et foldet ark. Hvis mange peptidkjeder ligger ved siden av hverandre, vil det se ut som et ark
som er brettet mange ganger, eller som et vaskebrett.
Et protein kan bestå av en peptidkjede der noen områder danner a-heliks og andre områder danner
b-bånd (fig. 4.5). Mellom disse er det gjerne deler av polypeptidkjeden som bare kveiler seg
tilsynelatende tilfeldig. Dette kan vi kalle en tilfeldig kveil ( random coil ).
Kimball
4.4 TERTIÆRSTRUKTUR
Folding
De ulike sekundærstrukturene vil i sin tur folde seg i et bestemt tredimensjonalt mønster , slik at vi får et nøste. Dette gjelder globulære (nøsteformede) proteiner , som f.eks. hemoglobin . Resultatet av denne foldingen kalles tertiærstruktur. Når man skal framstille tertiærstrukturen av et protein, tegner man en spiral der det er a-heliks, en bred pil der det er b-båndstruktur, og bare en strek der det er tilfeldig kveil (fig 4.5).
Ved hjelp av røntgenkrystallografiske bilder av proteinkrystaller har man funnet den 3-dimensjonale strukturen av mange proteiner. Den første gangen dette ble gjort var i 1950-årene med muskelproteinet myoglobin .
Én polypeptidkjede med en bestemt primærstruktur (aminosyrerekkefølgen) vil folde seg til en helt
bestemt sekundær- og tertiærstruktur, og alltid den samme. Dette er det mulig å forklare ved hjelp av
de krefter som dannes innen polypeptidet (proteinet) selv, og mellom proteinet og omgivelsene. Hvis
vi kjenner primærstrukturen, er det i prinsippet mulig å beregne hvordan tertiærstrukturen må bli , dvs.
hva som er den termodynamisk mest stabile strukturen. Det er utviklet dataprogrammer som gjør
dette (bioinformatikk ).
Hvis vi utsetter et protein for ytre påvirkning, kan den tredimensjonale tertiærstrukturen ødelegges,
slik at peptidkjeden får en annen, mer tilfeldig form. Dette kalles å denaturere et protein. Et protein
kan denatureres av varme og av ulike kjemiske midler. Hvis man fjerner dette ytre
denatureringsmiddel, kanpeptidkjeden i noen tilfeller få tilbake den samme opprinnelige
tertiærstruktur. Dette kalles renaturering.
Den biologiske virkningen av et protein er avhengig av at den tredimensjonale strukturen, altså at
tertiærstrukturen er riktig. La oss se på de kreftene som kan forklare tertiærstrukturen av et protein
(fig 4.6).
Aminosyren cystein har R-gruppen -CH2-SH. Hvis to slike grupper på ulike steder i peptidkjeden kommer nær hverandre, kan det dannes en kovalent binding mellom dem, en disulfidbro:
-CH2-SH + HS-CH2- ®
-CH2-S-S-CH2-
Når denne bindingen dannes, skjer det en oksidasjon av S. Omvendt, hvis S-S-broen blir brutt, skjer
det ved en reduksjon av S. Vi må da bruke et egnet reduksjonsmiddel.
2 Saltbroer
Noen aminosyrer har sidegrupper som vil være ionisert, dvs. elektrisk ladd ved fysiologisk pH (dvs.
ca. 7). Spesielt viktige er de sure aminosyrene glu og asp (+) og de basiske arg og lys (-). Hvis en
positiv og en negativ gruppe (f.eks. Arg og Glu) kommer nær hverandre, vil det oppstå sterke
elektrostatiske krefter mellom dem, en "saltbro", noen kaller det en ionebinding. Dette kan bidra til å
stabilisere en tertiærstruktur.
3 Polare og ladde sidegrupper
Når polare eller ladde ( hydrofile ) sidegrupper befinner seg på proteinets utside, ut mot omgivelsene
som er vann, dannes det bindinger mellom sidegruppene og vannmolekylene rundt (ion-dipol,
dipol-dipol, og H-bindinger). Dette stabiliserer proteinet, og det bidrar til at proteinet kan løses i vann.
Mange av aminosyrene har upolare (hydrofobe) sidegrupper. Hvis disse skulle stikke ut mot vannet
som omgir proteinet, ville det være meget ugunstig. Slike grupper løses ikke i vann. Men hvis disse
R-gruppene vender innover i proteinmolekylet, mot hverandre, vil de unngå vann. Når peptidkjeden
folder seg i et vannmiljø, skjer det slik at de upolare, hydrofobe gruppene vender innover, og unngår
vann. De polare, hydrofile gruppene derimot, vender utover.
Mange proteiner består av flere subenheter (subunits) , der hver subenhet er et polypeptid.
Subenhetene kan være like eller ulike, og det kan være fra to og opp til ganske mange. Hvis det er to
like subenheter, snakker vi om en homodimer, er det to ulike har vi en heterodimer osv. Vi har nevnt
RNA polymerase holoenzym , som består av 6 subenheter: 2bb'ws. Hemoglobin består av 4
subenheter: a2b2. Den måten disse subenhetene sitter sammen på utgjør kvartærstrukturen.
4.5 PROTEINFUNKSJON
Liste over proteiner
For å forstå genenes funksjon, er det nødvendig å kjenne til proteinenes funksjon. Proteinmolekyler
har en rekke funksjoner i levende celler. Hvis ett av disse proteinene lages feil, kan det få dramatiske
følger. Og feilen kan ofte spores tilbake til vårt DNA, dvs. til genene våre.
Enzymer
I en organisme foregår det hundrevis av ulike kjemiske reaksjoner. Disse reaksjonene utgjør
stoffskiftet, eller metabolismen. Noen reaksjoner bryter ned næringsstoffer og gir energi
(katabolisme), mens andre reaksjoner er energikrevende, og bygger opp stoffer som organismen
trenger (anabolisme). Hver av disse reaksjonene krever et eget enzym som katalysator for å skje. En
organisme må derfor lage tusenvis av ulike enzymer for at stoffskiftet skal foregå riktig, og enzymene
er proteinmolekyler. Det må også lages riktig mengde av hvert enzym. Hvis et bestemt enzym
mangler eller er laget feil, kan det ha svært alvorlige konsekvenser. En rekke alvorlige sykdommer er
knyttet til mangel på ett bestemt enzym, og slike stoffskiftesykdommer er ofte arvelige (inborn errors
of metabolism).
Transportproteiner
Mange stoffer blir transport rundt i kroppen ved hjelp av bestemte proteiner. Det aller mest kjente er
nok hemoglobin , som transporterer oksygen med blodet. Lipoproteiner er et annet eksempel, disse
frakter lipider rundt i kroppen. Det er en lang rekke andre transportproteiner, som kan transportere
stoffer rundt i kroppen, eller innenfor en celle, gjennom cellemembraner osv.
Strukturelle proteiner
Mange proteiner er med på å bygge opp celledeler eller andre strukturer. Et eksempel er kollagen , som er med på å bygge opp bein, brusk, hud m.m. Vi kan også nevne fibrin/fibrinogen i blod, som kan gjøre at blodet koagulerer eller levrer seg.
Muskler er bygget opp hovedsakelig av proteiner, spesielt aktin og myosin . Disse proteinene gjør at
musklene kan trekke seg sammen og bli kortere, og de har derved også en bevegelsesfunksjon.
Regulerende proteiner
De biokjemiske og fysiologiske prosesser i kroppen må reguleres nøye, og ofte er det spesielle
proteiner som gjør dette. Insulin er et lite proteinhormon som regulerer blodets sukkerinnhold.
Genene blir også regulert av en rekke proteiner, bl.a. såkalte transkripsjonsfaktorer .
Immunforsvar
En viktig del av vårt forsvar mot smitte utgjøres av antistoffene , eller immunglobulinene. Dette er proteiner som alle er mer eller mindre likt bygget opp, men som vi likevel kan ha tusenvis av ulike varianter av.
Membranproteiner
Hos eukaryote finner vi mange proteiner bundet til membraner i cellene . Blant disse membranene er selve cellemembranen som avgrenser cellen, det endoplasmatiske nettverk (ER ), Golgiapparatet , samt mitokondriene , som har både en ytre og en indre membran (se kap. 8.1).
De biologiske membranene er bygget opp av et dobbeltlag av lipider, på engelsk lipid bilayer .
Lipidene er vanligvis fosfolipider , molekyler som har en hydrofob del som vender inn i dobbeltlaget,
og en hydrofil del som vender ut mot det vandige miljø rundt (se fig 4.7).
I én cellemembran kan det sitte over 100 ulike proteinmolekyler. Noen proteiner kan være bundet til
membranen med svake krefter, og kan frigjøres ved ganske mild behandling med f.eks. høy
ionestyrke. Disse proteinene kalles perifere (peripheral) membranproteiner . Andre proteiner sitter i
selve membranen, de er integrerte, og kan bare fjernes ved behandling med detergent e.l. som
ødelegger membranen.
Et integrert membranprotein går altså gjennom membranen, og kalles også et transmembranprotein .
Den delen av proteinet som går gjennom membranen består ofte av en -heliks som har mange
hydrofobe sidegrupper, f.eks: Ala, Leu, Ile, Phe, Val, Met. De hydrofobe sidegruppene vil utgjøre
utsiden av heliksen, og er derved i kontakt med de upolare fosfolipidene. Vi får da såkalte hydrofobe
interaksjoner mellom membranen og -heliksen. For heliksen vil det være gunstig å befinne seg inne i
den upolare membranen fremfor å være i det polare vannmiljøet utenfor. En membran er ca. 3 nm
tykk, en omdreining av a-heliksen er 0,54 nm og 3,6 aminosyrer. Det betyr at a-heliksen gjennom en
membran er ca. 6 omdreininger og 20 aminosyrer lang. En sekvens på 20 hydrofobe aminosyrer vil
være typisk for mange transmembranproteiner. Noen proteiner kan gå gjennom membranen mer enn
en gang, f.eks. adrenalinreseptoren som krysser membranen 7 ganger (se fig. 8.30).
En annen måte å krysse membranen på er en såkalt b-tønne (b-barrel) , se fig. 4.7. Her er det mange b-bånd som krysser fram og tilbake gjennom membranen, og danner en sylinderformet kanal.
Blant de integrerte membranproteinene finner vi både enzymer, strukturelle proteiner,
hormonreseptorer, kanalproteiner, immunglobuliner m.m.
4.6 DOMENER , FAMILIER
Domene (domain). En avgrenset del av et protein kan utgjøre en strukturell enhet. Den folder seg da
på en bestemt måte, har en tertiærstruktur. Dette kalles et domene, som betyr "område". Ett domene
kan være fra noen titalls til noen hundre aminosyrer stort, og ett protein kan bestå av flere domener.
Ett domene kan ofte knyttes til en bestemt funksjon hos proteinet. Blant humane proteiner opererer
man med flere hundre ulike domener. Disse er klassifisert etter hvilken måte de er foldet på. De ulike
domenene kan bli knyttet til hvilken funksjon de har, f.eks. katalytisk, ATP-bindende, DNA-bindende,
ligandbindende.
Vi kan finne det samme domenet i flere ulike proteiner. Et bestemt transmembrandomene kan f.eks. finnes igjen i flere ulike proteiner. Dette vil folde seg nokså likt i de ulike proteinene, men aminosyresekvensene kan likevel være noe ulik.
Et antistoffmolekyl (immunglobulin) består av 12 domener, fire av typen V og åtte av typen C (fig. 4.8). Vi finner også V- og C-domenene i en rekke andre proteiner, f.eks. HLA . Se også kap 23.6.
Motiv (motif). Et proteinmotiv betyr en bestemt aminosyresekvens. Et slikt motiv av en viss størrelse vil ofte folde seg på en bestemt måte, og vil da også utgjøre et domene. Men et "motiv" kan også være ganske lite, bare 4-5 aminosyrer. Et motiv kan da utgjøre en del av et domene. Noen proteinmotiver finnes i en lang rekke ulike proteiner, og samme motiv kan variere noe fra protein til protein.
En aminosyresekvens blir bestemt av en DNA-sekvens i et gen, slik at et proteinmotiv vil tilsvare et eller annet DNA-motiv. Når vi finner samme motiv i flere ulike proteiner/gener, vil det indikere at de har en felles opprinnelse en gang i fortiden, de utgjør enfamilie. Mer om dette i kap. 13.1 og 13.5.
Det finnes åpne databaser over alle kjente proteiner og deres primærstruktur. Her kan man søke etter bestemte sekvenser, og se om dette motivet finnes i ett eller flere proteiner (bioinformatikk).
I neste avsnitt omtaler vi noen viktige DNA-bindende proteinmotiver . Disse motivene utgjør et DNA-bindende domene av disse proteinene.
En aminosyresekvens som avgjør hvor et protein skal transporteres kalles et signalpeptid. En slik
sekvens kan være den samme i flere ulike proteiner, og utgjør derved et bestemt motiv.
4.7 DNA-BINDENDE PROTEINER
Mange proteiner har evnen til å binde seg til DNA eller RNA. Noen av disse binder seg hvor som
helst, andre bare til bestemte baseskvenser. Blant de som binder seg generelt har vi histonene, som
"pakker" DNA i cellekjernene hos eukaryote. Her har proteinet en positiv ladning pga. mange basiske
aminosyrer, som tiltrekkes av DNA-s negative ladning.
Sekvensspesifikk
I den store gropa på DNA er de kjemiske gruppene til DNA-basene delvis tilgjengelig, nemlig den øverstedelen av hver base i fig. 2.4, dvs. aminogruppen til A og C og ketogruppene til T og G. Dette forklarer at vi kan få en sekvensspesifikk binding mellom DNA og protein. Proteinet har et DNA-bindende domene med bestemte aktive aminosyrer, og DNA har en basesekvens som passer til disse.
Et restriksjonsenzym gjenkjenner og binder seg til et restriksjonssete , og kutter DNA-ryggraden der (kap. 14). RNA polymerase binder seg til DNA i en promoter , og starter transkripsjonen der (kap. 3). En repressor binder seg til DNA i et eget område ( operator ) og hindre transkripsjon (kap. 7), mens en transkripsjonsfaktor kan binde DNA og stimulere transkripsjon (kap. 8). Egne initieringsproteiner binder DNA i ori, der hvor replikasjonen skal starte (kap. 7). Alt dette er eksempler på proteiner som kan binde seg til DNA i ett bestemt område.
DNA-bindende proteiner inneholder ofte spesielle motiver som er årsak til de DNA-bindende
egenskapene. Vi skal nevne tre slike.
4.7.1 Heliks-turn-heliks, HTH (fig. 4.9)
HTH-motivet finner vi bl.a. i lac-repressoren , som regulerer transkripsjonen av lac-genene i E. coli.
En -heliks i et protein har en diameter på 1,2 nm. Major groove i DNA har en bredde på 1,2 nm og en dybde på 0,7 nm. En -heliks passer altså akkurat i denne gropa i DNA's overflate. Et typisk repressorprotein har to like deler (er en homodimer). De to like delene har -helikser med en avstand på 3,4 nm, noe som gjør at de passer ned i to nabogroper i DNA (fig 4.8). I dette DNA-området (operatoren) finner vi gjerne samme basesekvens på disse to stedene.
Begge de to -helikser som binder DNA-gropene, omgis av andre -helikser som virker stabiliserende.
Dette proteinmotivet kalles derfor heliks-turn-heliks, HTH.
4.5.2 Sinkfinger (fig. 4.10)
Et annet proteinmotiv som binder DNA er kalt sinkfinger. Dette er en sekvens på ca. 30 aminosyrer,
og den er gjentatt flere ganger, opp til flere titalls ganger. Hver sekvens på 30 aminosyrer binder et
Zn-ion. En del av den 30 aminosyrer lange peptidkjeden vil danne en fingerliknende struktur. Denne
passer inn i den store grop i DNA . Sink-fingeren har spesifikke sidegrupper som er i stand til å binde
spesifikke baser i DNA. Flere proteiner som er med på å regulere transkripsjonen i eukaryote celler
har slike sinkfingermotiv.
4.5.3 Leucin-glidelås (leucin zipper, fig. 4.11)
En leucin-glidelås inneholder en lang -heliks, der hver 7. aminosyre er leucin, dvs. én for hver 2.
omdreining. To slike helikser er bundet sammen i en Y-form, der Y-ens armer ligger i DNAs store
grop, på hver sin side. De to heliksene henger ellers sammen ved hydrofobe interaksjoner mellom leucingruppene.
4.8 ELEKTROFORESE AV PROTEINER
Analyse av proteiner er ikke noe sentralt tema i denne boken, men vi tar likevel med litt om hvordan vi
kan separere proteiner ved elektroforese.
Ladning
Noen av sidegruppene (R) i et protein kan ha ladning, enten (+) eller (-) . Aminosyrene med sure
sidegrupper vil gi (-)-ladning, spesielt asparginsyre og glutaminsyre. Aminosyrer med basiske
sidegrupper vil gi (+)-ladning, dette gjelder lysin og arginin, samt histidin. Dessuten vil N-terminalen
være (+) og C-terminalen være (-). Proteinets totale ladning er altså avhengig av hvilke sidegrupper
som finnes, og dette varierer sterkt. Dessuten vil pH påvirke ladningen, lavere pH vil gi mer (+)-ladning.
Elfo
Ved gel elektroforese plasseres proteinene i et elektrisk felt på en gel. Positivt ladde proteiner vil
vandre mot (-)-polen, og omvendt. Dessuten vil størrelsen på proteinet påvirke hastigheten, de små
vandrer raskere enn de store. Vi får separert proteinene på grunnlag av ladning og størrelse.
SDS-PAGE
Man kan også separere proteiner bare ut fra størrelsen. Man tilsetter da SDS (natrium dodekyl sulfat) til prøven. SDS er en detergent , dvs. et stoff med en hydrofil og en hydrofob del. Den hydrofobe delen av SDS binder seg til proteinets hydrofobe grupper, og derved denatureres proteinet.
Proteinet blir dekket av et jevnt lag av SDS. Den hydrofile delen av SDS, som har negativ ladning, vender ut mot omgivelsene, dvs. vannløsningen. Se fig. 4.12. Antall negative ladninger vil være proporsjonal med lengden på polypeptidet, som får en jevn negativ ladning Det vandrer da mot (+)-polen i et elektrisk felt. De små proteinene vil vandre raskest (lengst), og de store saktest (kortest) pga. motstand i gelen. Man bruker polyakrylamid gel, og dette kalles derfor SDS-PAGE (polyakrylamid gel elektroforese). Dette kan brukes til å bestemme et proteins størrelse. I tillegg til prøven bruker man da en blanding av kjente proteiner/polypeptider som størrelsesmarkør. Proteiner med samme størrelse vil vandre like langt.
5. TRANSLASJON (prokaryote) Til bokens kapitteloversikt
Translasjon er det samme som proteinsyntese. Dette er det andre trinnet i å uttrykke et gen,
transkripsjonen er det første. Ordet translasjon kommer av at base-"språket" i DNA/RNA blir oversatt
(translatert) til aminosyre-"språket" i et protein. Fig. 5.1 viser hvilke elementer som er involvert i
proteinsyntesen: mRNA er "oppskriften", ribosomene er protein-"maskinen" der produksjonen skjer,
aminosyrene er råvarene eller byggesteinene, tRNA bringer disse på rett plass, og enzymene gjør at
det hele går.
5.1 RIBOSOMER
Proteinsyntesen foregår på ribosomene i en celle. Ribosomene kan oppfattes som proteinmaskiner, og de er selv bygget opp av RNA og proteiner.
Prokaryote ribosomer har en samlet molekylmasse på 2,5 mill dalton, og med dimensjoner ca.
29 × 21 × 21 nm. For å angi størrelsen på slike cellekomponenter oppgis en S-verdi ( S = Svedberg).
Dette er et mål for hvor fort vedkommende partikkel sedimenterer ved ultrasentrifugering. Prokaryote
ribosomer har en verdi på 70S, eukaryote omkring 80S.
To subenheter
Figur 5.2 viser at et prokaryot ribosom består av to subenheter, 50S og 30S. 50S-subenheten består
av to rRNA-molekyler (23S og 5S) sammen med 34 ulike polypeptider. 30S-subenheten består av ett
rRNA-molekyl (16S) og 21 ulike polypeptider. 16S rRNA består av 1542 baser.
rRNA-gener
I E. coli finner vi tre typer rRNA (5S, 16S og 23S), og det finnes derved tre ulike rRNA-gener. Disse tre
genene sitter meget nær hverandre, og blir transkribert under ett, med én promoter og én terminator
(fig. 5.3). Etter transkripsjonen blir RNA-produktet delt i tre, og hvert av de tre rRNA blir modifisert til
sin endelige størrelse. E. coli inneholder 7 slike transkripsjonsenheter for rRNA. Det er en fordel for
en celle å ha flere kopier av hvert rRNA-gen. Av alt RNA i en celle utgjør rRNA ca. 80 %, tRNA 15 %
og mRNA bare 5 %. En celle som vokser trenger å lage store mengder av rRNA for å bygge opp
ribosomer, og med flere genkopier kan rRNA produseres raskere.
5.2 tRNA
tRNA står for transfer RNA, og det er blitt oversatt med transport-RNA, selv om dette ikke betyr helt
det samme. Ett bestemt tRNA-molekyl kan binde én bestemt aminosyre, og bringer denne til
ribosomet.
4 armer
tRNA er relativt små, bare omkring 80 baser. Alle har samme grunnstruktur, en kløverbladform, med en stilk og tre blader (se fig. 5.4). De tre bladene er hårnålstrukturer, og også i stilken er det to komplementære RNA-biter som er bundet sammen. Vi sier at tRNA har 4 store armer, og det er særlig to av dem vi skal se på.
Akseptorarmen er stilken til kløverbladet. Her finner vi begge endene av RNA-tråden. 3'-enden av tRNA er normalt CCA-3'. Det er her aminosyren bindes, se fig. 5.4 og 5.7.
Antikodonarmen inneholder de tre basene i tRNA ( antikodon ) som skal binde seg til tre baser i mRNA (kodon).
De to andre store armene av tRNA kalles TC, som inneholder pseudouridin (y ) og D, som inneholder
dihydrouridin. I tillegg har vi en liten variabel arm, som kan inneholde fra 3 til 21 baser.
Uvanlige baser
I tRNA finner vi en del andre baser enn A, U, G og C. Disse er bare markert med X i figuren. Dette
oppstår ved at tRNA blir modifisert etter transkripsjonen. To eksempler er 1-metyladenin og N2,N2-dimetylguanin.
tRNA-gener
Vi finner flere ulike tRNA-gener plassert nær hverandre, slik at de blir transkribert sammen (fig. 5.5). Deretter blir de ulike tRNA-ene delt fra hverandre. Etter dette blir sekvensen (5'-CCA-3') hengt på i 3'-enden, slik at alle tRNA får samme 3'-ende. Til slutt blir noen av basene modifisert, slik at tRNA inneholder en del uvanlige baser.
Totalt inneholder E. coli 60 tRNA-gener, mens en human celle har ca. 500.
Ett bestemt tRNA-molekyl kan binde én bestemt aminosyre, og bare denne. tRNAala kan bare binde alanin, tRNAtyr kan bare binde tyrosin osv. Denne bindingen skjer ved at det dannes en esterbinding mellom aminosyrens karboksylgruppe og den fri 3'-OH-enden av tRNA (fig. 5.6). Når tRNA har bundet en aminosyre sier vi at den er ladd (charged).
Ladingen av tRNA katalyseres av enzymer som kalles aminoacyl tRNA syntetase (fig. 5.7 og 5.8). Det
er normalt ett spesifikt enzym for hver aminosyre, altså 20 i alt. Korrekt translasjon bygger på at ett
bestemt tRNA alltid binder til seg den rette aminosyren. Vi kan si at det er ladingen av tRNA som er
selve oversettelsen fra basespråket til aminosyrespråket. Ladingen av tRNA foregår med svært få feil,
kanskje en av 100000. Enzymet (syntetasen) har tre bindingsseter: ett for tRNA, ett for aminosyre og
ett for ATP som gir energi til å danne esterbindingen. Det aktive setet må være så spesifikt at bare én
aminosyre passer inn, og bare en tRNA-type passer inn (fig. 5.8). Når syntetasen skal binde en
spesifikk tRNA er antikodonarmen et avgjørende element, noen ganger er selve tripletten i
antikodonet helt avgjørende.
5.3 DEN GENETISKE KODE
5.3.1 Triplett, kodon
Når tRNA tar med seg sin aminosyre til mRNA i ribosomet, så er det en basesekvens på tre baser i mRNA, en triplett, som blir gjenkjent. Tre baser koder for én aminosyre, og utgjør altså et kodeord, eller et kodon. Det finnes i alt 64 tripletter (43), altså mer enn nok til å kode for 20 aminosyrer. To og to baser ville bare gitt 16 ulike kodeord (42), altså ikke nok.
Den genetiske koden (tabell 5.1) ble avdekket i 1950-årene gjennom en rekke elegante forsøk med
syntetiske mRNA-molekyler. Man fant f.eks. at poly(U) mRNA medførte at det ble laget
polyfenylalanin. Poly(A) mRNA ga polylysin. For dette arbeidet ble Nobelprisen i 1968 tildelt forskerne
Nirenberg og Khorana .
Aminosyrene met og trp har bare ett kodon, men ellers har alle flere enn ett. De fleste har to eller fire,
mens leu, ser og arg har seks. Valin har f.eks. kodonene GUU, GUC, GUA og GUG. Det er den
tredjebasen i kodonet som kan variere. Vi sier at koden er degenerert.
Det er ett startkodon, som gir signal om hvor translasjonen skal begynne. Dette er AUG, som er
kodon for aminosyren metionin, met. Det innebærer at alle proteiner starter med metionin når de
lages. Startkodonet AUG definerer også leserammen, dvs. hvilke tre baser som skal utgjøre et kodon.
Langs en og samme mRNA kan vi lese tripletter på tre måter, avhengig av hvor vi har startet. Det er
altså tre mulige leserammer, og disse gir helt ulik aminosyresekvens:
Stopp
Det er tre stoppkodoner, nemlig UAA, UGA og UAG. Disse triplettene koder ikke for noen
tRNA/aminosyre. Translasjonen stopper derfor når en slik triplett skal leses. Det betyr ikke at
translasjonen vil stoppe hver gang sekvensen UAG dukker opp. Denne tripletten må være i
leseramme.
Den genetiske koden ble utforsket i bakterier (E. coli), men det har vist seg at alle celler bruker den
samme koden, den gjelder for bakterier, planter og dyr, inklusive mennesket. Men det finnes noen få
unntak, f.eks. i våre mitokondrier. Her har noen få av kodonene en annen betydning enn den vanlige.
Vi finner flere eksempler på en litt annen kode enn den vanlige standard genetiske koden. Den
genetiske koden er altså ikke absolutt universell.
5.3.2 Kodon - antikodon gjenkjenning
tRNA har en arm som kalles antikodonarm. Tre av basene her utgjør den tripletten som skal binde
seg til en komplementær triplett i mRNA. Tripletten i mRNA er et kodon, og tripletten hos tRNA kalles
da antikodon. Bindingen av tRNA til mRNA skyldes da binding mellom komplementære tripletter,
nemlig et kodon og dets antikodon (fig. 5.9).
Det finnes 61 aminosyrekodende tripletter, men langt færre ulike tRNA-typer. Det betyr at det ikke finnes et eget antikodon (dvs. en egen tRNA) for hvert kodon. Dette tilsynelatende misforholdet er løst ved at én tRNA med sin antikodontriplett kan bindes til flere kodontripletter. Det viser seg at den tredje av basene i kodontripletten ikke alltid behøver å passe helt til antikodonet. Denne forklaringen ble først fremsatt i 1966, og kalles wobblehypotesen (wobble = slingre). Det er to måter denne slingringen kan oppstå på (fig. 5.10 og 5.11).
1 G-U par
En G i tRNA kan basepares med C (som normalt) og i tillegg U i mRNA. Begge disse er pyrimidinbaser. Det betyr at to kodoner på mRNA som bare atskiller seg i tredje posisjon med C eller U, kan binde samme tRNA (fig. 5.10A) .
Likedan kan U i tRNA pares med både A (som normalt) og G (fig. 5.10B). A og G i tredje posisjon kan derved binde samme tRNA.
Den genetiske kode viser tydelig at naturen har utnyttet dette. Nesten uten unntak ser vi at U/C i siste
base gir samme aminosyre, og A/G i siste base gir samme aminosyre. Vi kan merke oss at U og C
begge er pyrimidiner, mens A og G er puriner.
2 I-(C, A, U)-par
I tRNA finner vi den uvanlige basen inosin, I. Basen I i tRNA kan hydrogenbindes til både C, A og U i
mRNA's tredje posisjon. Derved kan antikodonet i ett tRNA-molekyl godta 3 ulike kodoner. Se fig.
5.11. Dette finner vi hos aminosyren ile, som har kodonene AUU, AUC og AUA.
Noe av forklaringen på fenomenet wobble kan være at tRNA har en krum form, slik at ved base nr. 3
er avstanden mellom basene i mRNA og tRNA litt større enn normalt.
Hvis disse wobblemulighetene blir utnyttet fullt ut, trenger en celle 31 ulike tRNA-typer. Vi ser av
koden (tabell 5.1) at phe har 2 kodoner og trenger 1 tRNA, leu har 6 kodoner og trenger 3 tRNA,
ilehar 3 kodoner og trenger 1 tRNA, met har 1 kodon og trenger 1 tRNA osv. I praksis kan dette
variere noe fra art til art. Wobble er bare delvis utnyttet i eukaryote celler. Mennesker har f.eks. 45
ulike tRNA (se kap 8.6). Mitokondriene våre derimot klarer seg med 22 ulike tRNA.
5.4 TRANSLASJONEN
"Translasjonsmaskin" Omvendt translasjonsmaskin
5.4.1 Initiering
Ribosomene er stedet der proteinsyntesen skjer, mens mRNA inneholder oppskriften. Disse må derfor kobles sammen. Hos E. coli har alle mRNA et eget ribosombindingssete (RBS), og sekvensen 5'-AGGAGGU-3' er typisk for mange av disse. Denne sekvensen finner vi nær 5'-enden i alle mRNA, og den kalles en Shine-Dalgarno-sekvens (SD) . Det er bare den lille subenheten (30S) av ribosomet som binder seg her. Noe av forklaringen på bindingen er at 16S rRNA inneholder en sekvens som er komplementær til Shine-Dalgarno-sekvensen.
30S-subenheten beveger seg så langs mRNA til det treffer det første startkodonet, AUG. Dette finnes normalt ca. 10 baser nedstrøms for ribosombindingssetet. Ribosomets størrelse tilsvarer ca. 35 baser av mRNA.
Startkodonet AUG i mRNA gjør at ribosomet stopper opp, og tRNA med antikodon for AUG tiltrekkes (fig. 5.12). Dette er tRNA med fmet, formylert metionin , dvs. aminosyren metionin med en formylgruppe (-CHO ) bundet til sin -aminogruppe. Denne formyleringen gjør at metionin ikke kan binde til seg noen ny aminosyre i N-enden. Den kan bare binde en ny aminosyre i C-enden. Peptidkjeden vokser derved alltid i C-enden.
Vi har nå fått et 30 S initieringskompleks. Initieringen krever også egne proteiner som kalles
initieringsfaktorer (se. 5.4.5).
5.4.2 Elongering
Når initieringskomplekset er dannet, vil resten av ribosomet, 50S-subenheten også bindes. Når hele
ribosomet er bundet til mRNA, oppstår det to separate seter ved siden av hverandre, slik at to tRNA
kan bindes til hver sine to nabotripletter. Det ene av disse kalles P-setet (P = peptidyl), og det andre
kalles A-setet (A = aminoacyl) (fig. 5.13). Elongeringen av aminosyrekjeden kan deles i tre trinn:
1 Ladd tRNA-2 bindes til A-setet
Mens tRNA-1 (fmet) sitter i P-setet, bindes en ny tRNA-2 til neste mRNA-triplett (kodon nr. 2), som
sitter i A-setet. Derved havner to tRNA-molekyler med sine to aminosyrer tett ved siden av hverandre.
2 Aminosyre-1 bindes til aminosyre-2
Det dannes en peptidbinding mellom de to aminosyrene (fmet og nr. 2). Dette katalyseres av enzymet
petidyl transferase. Samtidig brytes bindingen mellom aminosyre-1 (fmet) og tRNA-1. Vi kan si at
aminosyre-1 overføres fra sin tRNA til aminosyre-2.
3 Translokasjon
Nå skjer det som kalles translokasjon. Ribosomet beveger seg tre baser bortover, slik at tRNA-2
havner i P-setet. tRNA-1 er nå uladd, og frigjøres. Derved blir A-setet ledig igjen. Det er nå vanlig å
operere med et eget sete der det uladde tRNA havner før det frigjøres fra ribosomet. Dette kalles
daE-setet (E = empty).
Vi får nå en gjentakelse av trinnene 1-2-3: En ny triplett (kodon nr. 3) har havnet i A-setet, som er
ledig. En ny ladd tRNA-3, som passer til kodon nr. 3 bindes i A-setet (= trinn 1). Det dannes en
peptidbinding mellom aminosyre-3 og 2 (= trinn 2), og aminosyre 2 løsner fra tRNA-2. Vi får så en ny
translokasjon, slik at tRNA-3 havner i P-setet og A-setet blir ledig (= trinn 3). Vi får da inn tRNA-3 osv.
Elongeringen krever egne proteiner som kalles elongeringsfaktorer (se. 5.4.5).
Polysomer. Ett mRNA-molekyl kan bli transkribert av flere ribosomer samtidig. De beveger seg da
etter hverandre, og det lages derved flere kopier av samme proteinmolekyl. Vi kaller dette
polyribosom eller bare polysom (se fig. 5.17).
5.4.3 Terminering
Det er tre stoppkodoner; UAA, UAG og UGA. Når ett av disse kommer i A-setet, stopper translasjonen (fig. 5.14). Det skyldes at det ikke finnes noe tRNA som har antikodon som passer til dem. Da stopper ribosomet opp, og alle komponentene i dette komplekset løsner fra hverandre: ribosomet, tRNA, mRNA, og det ferdige polypeptid.
Ribosomet dissosierer også i sine to subenheter, 30S og 50S. Det er viktig å merke seg at den første aminosyren (fmet) utgjør N-terminalen og den siste aminosyren utgjør C-terminalen av proteinet.
Termineringen krever også egne proteiner som kalles releasefaktorer (se. 5.4.5).
5.4.4 ORF - åpen leseramme
En proteinkodende DNA-sekvens starter med ATG (AUG i mRNA) og avsluttes med det første
stoppkodon (TAA/TAG/TGA) som er i leserammen. En slik DNA-sekvens kalles generelt en åpen
leseramme (ORF - open reading frame). Hvis vi leter langs en tilfeldig DNA-bit, kan vi finne slike
ORF-sekvenser mange steder. I sekvensen som er vist under, har vi en åpne leserammen fra grønn
startkodon til rød stoppkodon, med 5 tripletter mellom.
CGCCG ATGTGGCTGTTGATATGATAG CC
Legg merke til at vi finner stopptripletten TGA tidligere også (uthevet), men den er ikke i leserammen,
og vil ikke fungere som stoppkodon ved en evt. translasjon.
De fleste proteiner er godt over hundre aminosyrer lange, slik at den kodende DNA-sekvensen er noen hundre baser lang. Et proteinkodende gen krever derfor en ORF av en slik lengde. Vi skal vise at en slik lang ORF er meget usannsynlig (statistisk sett).
Vi tenker oss en tilfeldig DNA-sekvens, og velger en leseramme fra en vilkårlig ATG. Hvor langt må vi bevege oss før vi treffer et stoppkodon i leserammen? Siden 3 av 64 kodoner er stopp, vil vi statistisk sett få 3 stopp for hver 64. triplett, altså ett stopp for hver 64. base. Dette betyr at de fleste ORF-er som vi finner langs tilfeldig DNA er ganske korte, og alt for korte til å kode for et protein. En ORF på flere hundre baser er meget usannsynlig. Hvis vi finner en så lang ORF, er det stor sjanse for at det er et proteinkodende gen. De genene som finnes i DNA er et resultat av en biologisk utvikling, altså ikke noen tilfeldig sekvens.
Når man leter etter gener i våre kromosomer, er en av metodene å finne lange ORF-er. Det er 6
teoretisk mulige leserammer i en gitt DNA-bit, 3 i hver retning (se kap. 19.4.3).
ORF-finner
5.4.5 Translasjonsfaktorer
Vi har beskrevet tre trinn i translasjonen: initiering, elongering og terminering. Alle disse tre trinnene
krever egne proteinfaktorer i tillegg til de proteinene som er omtalt til nå.
Initieringsfaktorer (IF)
IF-3 binder seg til en lille subenheten av ribosomet, slik at den hindres i å binde den store, men binder bare mRNA.
IF-2 og GTP danner et kompleks med fmet-tRNA, og denne bindes til AUG, noe som også kreverIF-1. Vi har nå fått det som kalles 30S initieringskompleks.
Den store subenheten bindes, og alle tre IF og GDP frigjøres. Vi har fått 70S initieringskompleks.
Elongeringsfaktorer (EF)
EF-Tu, Ef-Ts og GTP binder seg til den ladde tRNA som skal inn i A-setet. Når tRNA er på plass, løsner disse igjen.
EF-G og GTP er også nødvendig for translasjonen.
Terminering (RF - release faktor)
RF1 (UAA/UAG) eller RF2 (UAA/UGA) binder seg i det tomme A-setet, mens RF3 og GTP binder
ribosomet. Dette medvirker til at tRNA i P-setet frigjør sin aminosyre, og derved er hele polypeptidet
frigjort.
5.4.6 Et prokaryot gen
UTR og kodende DNA
Vi har nå omtalt både transkripsjon og translasjon av et proteinkodende gen. La oss se på hvilke elementer et slikt gen inneholder.
mRNA inneholder en avskrift av koden for å lage et protein. Den delen av DNA som inneholder denne
koden kalles kodende DNA. Dette vil være fra første AUG til stoppkodonet. Transkripsjonen starter et
stykke før dette og avsluttes et stykke etter (nedstrøms). Vi har derved et stykke av mRNA i begge
ender som ikke blir translatert. Dette kalles 5'-UTR og 3'-UTR (un-translated region), evt. UTS (S =
sequence). Fig. 5.15 viser de ulike elementene i et prokaryot proteinkodende gen, nemlig promoter,
5'-UTR, kodende DNA, 3'-UTR og terminator.
Rammen under viser et tenkt E. coli-gen.
CACGGCTTTACACTTTATGCTTCCGGCTCGTATATTGTGTGGAATTGTGAGCGCATAACAATTTCACACAGGAGGTAGAACATGATTACGGAATCCGTAC
- - - (kodende sekvens) - - -
GCGTGTCAAAAATAATAACCATCCATTTACACGGCATGCAACTGGGGATCTTCCCCAGUCAACGCGGAATTTTTTTTTCCATTACTAG
Promoter er grønn, SD-sekvens er brun, translasjonsstart og stopp er blå, terminator er rød,
transkripsjonsstart og -stopp er skyggelagt. 5'-UTR er fra transkripsjonsstart (AATT) til
translassjonsstart (ATG), 3'-UTR er fra translasjonsstopp (TAA) til transkripsjonsstopp (TTTT). Den
kodende sekvensen kan være fra hundre til flere tusen baser.
Polygener
I prokaryote celler er det vanlig at flere gener, f.eks. tre, blir transkribert under ett (fig. 5.16). Med et
gen menes her koden for ett polypeptid. Det betyr at disse tre genene har en felles promoter, der
transkripsjonen starter, og en terminator, der transkripsjonen avsluttes. Dette er
entranskripsjonsenhet. Vi får et mRNA som inneholder koden for tre polypeptider. Ved translasjonen
må hvert av disse genene ha sitt start- og stoppkodon, slik at vi får tre polypeptider.
I prokaryote celler starter translasjonen av mRNA før den er laget ferdig (fig. 5.17). Når
transkripsjonen har kommet til omkring base nr. 60, vil et ribosom binde seg til den ferdige 5'-enden
av mRNA, og starte translasjonen herfra. Dette må man kunne kalle effektivt.
I eukaryote celler er de proteinkodende sekvensene i et gen (eksoner) avbrutt av ikkekodende DNA
(introner). Alt dette blir transkribert, og intronene blir deretter fjernet. Dette behandles i kap. 8.3.
http://bioweb.uwlax.edu/GenWeb/Molecular/Theory/Replication/replication.htm
6. GENREGULERING Til bokens kapitteloversikt
6.1 PRINSIPPER FOR GENREGULERING
6.1.1 Betydning
En menneskecelle har omkring 30000 gener, E. coli har kanskje 5000. Alle disse genene blir selvsagt ikke uttrykt hele tiden. Bruken av genene blir nøye regulert og kontrollert.
Et menneske har flere hundre ulike typer celler og vev. Noen gener blir uttrykt i alle celletyper, mens andregener bare blir uttrykt i en helt bestemt type celle. Noen gener skal bare bli brukt i en kort periode av livet, eller av en celles liv, andre hele tiden. Mange gener skrus av eller på etter som miljøet rundt endrer seg. Alt dette gjør at organismen og cellen er tilpasningsdyktig. En nøyaktig regulering av genenes bruk er helt avgjørende for en organisme.
Cellens og organismenens aktivitet blir i stor grad styrt av hvilke proteiner den har og i hvor mye det er av hvert. Cellens "proteinmønster" blir bestemt av hvilke gener som blir uttrykt, og i hvilken grad de blir uttrykt. Genekspresjonen må derfor reguleres nøye. Proteinene inkluderer bl.a. alle enzymene. Hvis ett bestemt enzym ikke blir laget, eller det blir laget for lite, vil en bestemt reaksjon i stoffskiftet stoppe opp eller bremse. Kreft kan være resultatet av at genreguleringen ikke fungerer som den skal.
Genregulering er viktig for en celle også av energiøkonomiske årsaker. Det koster mye energi å lage RNA og proteiner. Cellen er derfor innrettet slik at den ikke lager proteiner som den strengt tatt ikke er nødt til å lage.
Dette kapittelet omhandler genregulering i E. coli, men vi finner igjen de samme reguleringsmåtene i
eukaryote celler. Mer om dette i kap. 8.8.
6.1.2 Nivå
Genenes uttrykk kan reguleres på flere nivåer:
Transkripsjonsnivå (DNA-nivå).
Det er dette som behandles her.
mRNA-nivå.
mRNA har en begrenset levetid, og jo kortere denne er, jo mindre av proteinproduktet vil lages.
Translasjonsnivå.
Selv om et gen er transkribert, og mRNA laget, behøver ikke dette mRNA bli translatert til protein.
Proteinnivå.
Det ferdige protein er ikke nødvendigvis aktivt. Det er f.eks. vanlig at aktiviteten til ferdige enzymer
kan reguleres av eller på.
6.1.3 Koordinert selvregulering
Katabolsk
I katabolske prosesser blir et stoff (katabolitt) brutt ned. Eksempler på katabolitter som kan brytes ned er glukose og laktose. Vi tenker oss nedbrytningen av en katbolitt U slik: U ® V ® W ® X. Til dette trengs enzymene EU, EV og EW som blir kodet av genene u, v og w. Det er ingen grunn for cellen til å lage disse tre enzymene hvis stoffet U ikke finnes i cellen. Uten U vil det derfor være en fordel om genene u, v og w var skrudd av. Hvis stoffet U er til stede, vil cellen trenge de tre enzymene, og de tre genene kan skrus på (fig. 6.1).
Dette kalles selvregulering, siden mengden av stoffet U selv regulerer de genene som styrer nedbrytningen av U. Stoffet U, som skal brytes ned, vil selv skru u-genene på. Eksempel på dette er lac-genene, se kap. 6.2.
Denne reguleringen vil også være koordinert. Genene u, v og w sitter ofte etter hverandre på
kromosomet og blir transkribert under ett, fra én promoter. Det ferdige mRNA vil da inneholde flere
gener, dvs. koden for flere polypeptider. Vi sier at mRNA er polygenisk. Dette gjelder vel å merke bare
for prokaryote celler. Begrepet polycistronisk mRNA er også blitt brukt, der begrepet cistron betyr
koden for ett polypeptid.
Anabolsk
I en anabolsk prosess blir et stoff C laget, f.eks. slik: F ® A ® B ® C. Vi kaller også dette biosyntese.
Til dette trengs enzymene EA, EB og EC som blir kodet av genene a, b og c. Hvis cellen ikke inneholder
nok av stoffet C, er det nødvendig for cellen å lage det. Genene a, b, c kan da skrus på. Hvis cellen
har nok av stoff C, trenger den ikke lage mer, og genene kan skrus av. Selvreguleringen fungerer
altså nå motsatt av forrige eksempel: Stoffet C, som skal lages, vil selv skru c-genene av. Eksempel
på dette er trp-genene, se 6.3.
6.1.4 Positiv og negativ regulering
I positiv genregulering er et protein (genprodukt) nødvendig for å skru genet (transkripsjonen) på. I
negativ regulering er et protein (genprodukt) nødvendig for å skru transkripsjonen av. Vi skal se nøye
på ett eksempel på hver av disse.
6.2 LAKTOSEOPERON MAX animasjon
6.2.1 Biokjemisk bakgrunn
E. coli vil normalt ha glukose som viktigste karbon- og energikilde. Men den kan alternativt leve på f.eks. glyserol eller laktose.
Laktose er et disakkarid og kan spaltes til glukose og galaktose av enzymet ß-galaktosidase (fig. 6.2 og 6.3).
E. coli vil lage enzymet ß-galaktosidase hvis den dyrkes med laktose til stede, og bare da. Det er da
laktose som skrur enzymproduksjonen på, ved å skru genene på. Men E. coli lager ikke dette
enzymet hvis den dyrkes med glukose til stede, selv om det er laktose der. Glukose skrur altså
enzymproduksjonen (genene) av. Vi skal se hvordan dette skjer.
Husholdningsgener
Reguleringen av laktosegenene er et eksempel på cellens økonomisering med ressursene. Glukose
er normalt hovedkilden for energi. Enzymene til nedbrytning av glukose lages alltid, og genene for
disse enzymene uttrykkes derfor hele tiden. Slike gener kalles gjerne husholdningsgener (
housekeeping genes ) eller konstitutivegener . Så lenge det er nok glukose i cellen, er det ikke
nødvendig å sette i gang hele det kostbare maskineriet med å lage enzymene til laktosenedbrytning,
dvs. transkripsjon og translasjon. Dette er noe av bakgrunnen for reguleringen av laktosegenene.
6.2.2 Oppbygning av lac-operon
Vi har allerede lært at prokaryote celler ofte transkriberer flere gener under ett. Disse genene kontrolleres eller opereres fra én felles promoter, og har én felles terminator. En slik enhet kalles en operon .
Lac-operon var det første genetiske systemet der man fikk grundig kjennskap til genregulering på det molekylære nivå. Dette skjedde omkring 1960, og de to franske forskerne Jacob og Monod fikk Nobelprisen for dette i 1965. Kunnskap om lac-operon har ikke bare gitt oss innsikt i genregulering generelt: reguleringen av disse genene er også utnyttet rent praktisk innen genteknologi.
Hele lac-operon hos E. coli utgjør ca. 5000 basepar, 5 kb, av cellens totale 4000 kb. Lac-operon består av de tre proteinkodende genene lacZ, lacY og lacA (eller bare Z, Y og A) og promoter/operator-området (p, o). I tillegg kommer repressorgenet lacI (eller bare I) (fig. 6.4).
LacZ er på ca. 3500 basepar, og koder for enzymet ß-galaktosidase. LacY koder for ß-galaktosid
permease(eller laktose permease) som er nødvendig for at laktose skal slippe inn i cellen.
Funksjonen til genet lacA er ikke helt klar. LacI ligger nær og oppstrøms for lac-promoteren, og koder
for lac-repressoren. LacI har sin egen promoter.
6.2.3 Repressor /operator
Se fig. 6.5. Repressorgenet lacI uttrykkes konstitutivt, dvs. at repressorproteinet lages hele tiden. Denne lac-repressoren vil binde seg spesifikt til et område av DNA som kalles operator. Operatoren ligger meget nær promoteren, faktisk slik at de overlapper hverandre (se fig. 6.9). Når repressoren (et protein) binder seg til sin operator (DNA), vil den blokkere promoteren, slik at RNA polymerase ikke kan binde seg. Det blir derved ingen transkripsjon. Dette vil være den normale situasjonen, nemlig når cellen ikke har tilgang på laktose. Resultatet er at laktoseenzymene ikke lages.
Dette er eksempel på negativ kontroll, dvs. at et proteinprodukt (repressoren) medvirker til at transkripsjonen skrus av.
Lac-repressoren har et DNA-bindende domene av typen HTH (se 4.7.1, fig. 4.9). Det viser seg at det
finnes ikke bare én, men tre operatorsekvenser i lac-operon, men detaljene om dette lar vi ligge.
6.2.4 Induksjon
Se fig. 6.6. Hvis cellen tilføres laktose, vil repressoren bli inaktivert. Dette kalles induksjon, og stoffet som forårsaker dette kalles en induser. Den aktive induser er egentlig ikke laktose selv, men en modifisert form av laktose ( allolaktose ) som dannes. Den inaktiverte repressoren vil ikke binde seg til operatoren. Derved vil promoteren være fri, slik at RNA polymerase kan binde seg, og transkripsjonen starte. Laktose har skrudd laktosegenene på! Vi får laget mRNA (Z-Y-A), og ved translasjon av dette blir de tre genproduktene laget, deriblant ß-galaktosidase og permease.
For at dette skal fungere, må noe laktose kunne lekke inn i cellen også når genene er skrudd av.
Dette vil skje fordi en repressor aldri virker 100 % effektivt. En viss grad av transkripsjon vil foregå
selv med repressor til stede. Derved lages det små mengder av proteinene hele tiden, deriblant litt
permease, som gjør at litt laktose slipper inn.
IPTG fermentas
På laboratoriet kan man indusere lac-genene med kunstige indusere. Én slik er IPTG,
isopropyltiogalaktosid (fig. 6.2). Dette er en effektiv induser, dvs. at den effektivt binder og inaktiverer
lac-repressoren. I tillegg slipper den inn i cellen uten at permease er til stede. Vi kan derved aktivere
(indusere) lac-genene hos E. coli ved å tilsette IPTG i mediet der den vokser. Normalt er disse
genene sperret av lac-repressoren. Dette utnyttes innen genteknologi (kap. 16.2.2).
6.2.5 Lac-mutanter
Det er isolert en rekke stammer av E. coli med mutasjoner på ulike steder i lac-genene. Cellens egenskaper (fenotypen) kan da bli av tre typer:
Lac Cellen kan ikke utnytte laktose.
Lac+ Cellen kan utnytte laktose, ved induksjon (altså som normalt).
LacC Cellen lager ß-galaktosidase uansett ( konstitutivt) .
Vi kan ha ulike typer mutanter:
Z Mutasjon i Z-genet. Cellen lager inaktiv eller ingen ß-galaktosidase. Denne cellen vil aldri kunne utnytte laktose, den er Lac.
Y Mutasjon i Y-genet. Cellen lager inaktiv eller ingen permease. Denne cellen vil ikke kunne leve av laktose,fordi laktose ikke vil slippe inn i cellen, den er Lac.
oC Mutasjon i operatorsekvensen, slik at repressoren ikke kan binde seg. Cellen bruker lac-genene hele tiden, de uttrykkes konstitutivt, cellen er LacC.
IC Mutasjon i lacI-genet slik at det lages en repressor som ikke kan binde operatoren. Genene blir også her uttrykt konstitutivt, cellen er LacC .
I Mutasjon i lacI-genet slik at det lages en repressor som ikke vil binde laktose. Repressoren vil alltid
være aktiv, cellen er Lac.
6.2.6 cAMP - CAP -aktivering
Laktose vil bidra til at lac-operon skrus på, gjennom induksjon. Men dette er ikke tilstrekkelig for at disse genene skal bli aktivert. Cellen må i tillegg mangle glukose. Denne reguleringen utøves gjennom cAMP.
Lite glukose i cellen vil stimulere produksjon av cAMP (syklisk AMP ) fra ATP (fig. 6.8). Dette katalyseres av adenylat syklase , som kodes av genet cya. Glukose i cellen vil hemme denne syntese av cAMP. Stoffet cAMP er derved et signal på glukosemangel.
cAMP kan bindes til et eget protein, CAP, Catabolitegene Activating Protein . CAP kalles noen steder CRP, Cyclic AMP Receptor Protein.
Komplekset cAMP-CAP kan binde seg til DNA ved siden av lac-promoteren. Dette vil stimulere RNA polymerase til å binde seg, det er faktisk en forutsetning for effektiv binding, og derved transkripsjon. CAP blir kodet av genet cap (eller crp). CAP er et protein som fremmer transkripsjon, og er da et eksempel på positiv regulering. Hos eukaryote bruker man betegnelsen transkripsjonsfaktor om proteiner som stimulerer transkripsjon, slik som CAP.
Med glukose i cellen vil cAMP ikke bli laget. CAP-proteinet vil da ikke bli aktivert, og transkripsjon av lac-genene vil ikke skje.
Den positive reguleringen med cAMP-CAP blir også utnyttet av andre gener som koder for katabolske enzymer og andre gener som skal reguleres av glukosenivået.
Når CAP/cAMP binder seg til DNA vil noe av DNA-tråden bli bøyd rundt proteinet. Man antar at denne
bøyen (eng: bend) gjør basene inne i DNA mer tilgjengelig for RNA polymerase (RNAP), og at dette
forklarer virkningen av CAP. I tillegg kan det være en positiv interaksjon mellom proteinene CAP og
RNAP.
Kimball: Laktoseoperon CAP-cAMP
6.3 TRYPTOFAN-OPERON MAX animasjon
Dette er et eksempel på regulering av gener som har å gjøre med en anabolsk, altså oppbyggende
(biosyntetisk) prosess. Lac-operon hadde å gjøre med en katabolsk prosess.
6.3.1 Trp-operon, oppbygning
Se fig. 6.10. Aminosyren tryptofan blir syntetisert i tre trinn fra stoffet CA (chorismic acid) . Dette krever fem proteinprodukter, som settes sammen til tre enzymer, E1, E2 og E3. Genene for disse 5 proteinene kalles (trp)A, B, C, D og E, og de utgjør en genetisk enhet, nemlig trp-operon. Produktet fra genet A og B katalyserer siste trinn, og disse genene ligger sist (lengst nedstrøms).
I tillegg til disse 5 proteinkodende genene, er det ett gen helt i starten, trpL. L står for leder, og denne ledersekvensen gir et eget leder-mRNA og et lederpeptid, som har en regulerende funksjon.
Hele trp-operon utgjør nesten 7 kb av E. coli-genomet.
6.3.2 Trp-repressor
Se fig. 6.11. Det lages et repressorprotein også for trp-operon. Dette kodes av genet trpR, men dette
genet er plassert langt borte fra trp-operon. Repressorproteinet er i seg selv inaktivt og kalles derfor
en aporepressor. Aporepressoren kan aktiveres av tryptofan, som kalles en korepressor. Dette gir det
ønskede resultat: Uten tryptofan vil repressoren være inaktiv, og trp-genene være skrudd på. Med
tryptofan vil repressoren være aktiv, og genene skrudd av. Dette er i tråd med framstillingen i fig. 6.1.
6.3.3 Attenuator
Hvis det er lite tryptofan, vil det kunne foregå transkripsjon fra trp-promoteren, fordi aporepressoren ikke blir aktivert. Cellen kan likevel "ombestemme seg", og transkripsjonen bli stoppet. Dette skjer ved hjelp av ledersekvensen, trpL. Denne ledersekvensen inneholder en såkalt attenuatorsekvens. Se fig. 6.13.
De første 161 basene som blir transkribert fra trp-promoteren er trpL. Vi får laget leder-mRNA. Etter dette følger koden for trpE osv. Leder-mRNA inneholder ribosombindingssete, start- og stoppkodoner, og det koder for et lederpeptid på 14 aminosyrer. Når translasjonen av dette starter, er transkripsjonen av leder-mRNA ennå ikke ferdig. Transkripsjonen ligger 70-80 baser foran translasjonen. ppt Fra Ottawa eller fra Korea?!
Det finnes nok tryptofan
Se fig. 6.12 og 6.13A. Lederpeptidet kan bli 14 aminosyrer langt. Startkodon (AUG) er ved base nr. 27 og stoppkodon er ved base nr. 70 (UGA). Når lederpeptidet er ferdiglaget ved translasjon, vil transkripsjonen ha kommet til ca. 140, mens ribosomet dekker mRNA fram til ca. 80, dvs. området A på figurene. Basene nr. 114-141 inneholder en typisk terminatorsekvens, nemlig to områder som kan danne hårnål/løkke (T1-T2) og poly(U). Vi får dannet denne hårnålen, og transkripsjonen blir terminert. Det betyr at trp-genene ikke blir lest.Siden området A er dekket av ribosomet på dette tidspunktet, kan ikke A danne hårnål med T1, slik den gjør i neste punkt.
Det som er beskrevet her vil skje hvis det er for lite tryptofan til å aktivere repressoren
(transkripsjonen får starte), men nok til at trp-kodonene blir translatert (transkripsjonen blir stanset).
Repressoren utgjør en første grovregulering, attenuatoren utgjør en finregulering.
Det finnes ikke nok tryptofan
Se fig. 6.13B. Leder-mRNA inneholder to tryptofankodoner etter hverandre (UGG UGG, aminosyre nr. 10 og 11). Når translasjonen er kommet hit, vil den stoppe opp hvis det finnes for lite tryptofan i cellen. Under denne stoppen vil ribosomet dekke mRNA fram til ca. base nr. 70. Området A blir da ikke dekket av ribosomet. Området A og T1 inneholder sekvenser som er omvendt komplementære, og de vil danne en hårnål (A-T1) så snart T1 er transkribert. Det betyr at hårnålen T1-T2 ikke kan dannes, fordi T1 allerede er bundet til A. HårnålenA-T1 vil ikke føre til noen terminering. Transkripsjonen fortsetter derved inn i trpE osv. TerminatorsekvenseneT1-T2-UUUU vil forårsake at transkripsjonen avbrytes før den egentlig har kommet i gang. Det er en slik sekvens som kalles attenuator (attenuate = svekke). Hårnålen A-T1 vil motvirke terminering, og kalles gjerne en antiterminator.
Andre operoner for andre aminosyrer har et tilsvarende system med lederpeptid og attenuator.
Lederpeptidet for histidin inneholder 7 histidinkodoner etter hverandre, lederpeptidet for leucin
inneholder 4 leucinkodoner etter hverandre. Her vil mangel på disse aminosyrene gjøre at
ribosomene stopper under translasjonen av et lederpeptid, og dette hindrer en terminator i å fungere.
6.4 ARA-OPERON Fra CCC (Clinton) Fra Griffiths mfl
Arabinose er en pentose. For å bli utnyttet må den først bli omdannet til xylulose-5'-fosfat, som går inn
i pentosefosfatveien . Ara-operon inneholder tre gener (araB, A og D) som gir de nødvendige enzymer
for denne omdanningen (fig. 6.14). AraBAD blir transkribert fra en promoter p(BAD). Genet araC gir et
protein som både kan være repressor og aktivator. Dette genet har en egen promoter p(C), og det blir
lest motsatt vei, og derved på motsatt tråd, av araBAD. Proteinet araC har tre bindingssteder, O1, O2
og I (I består egentlig av to deler, I1og I2). O står for operator (som binder repressor), mens
betegnelsen I skyldes at det er her araC binder seg i indusert form, som aktivator. I tillegg har vi CRP
som kan binde den positive regulatoren CAP/cAMP.
Reguleringen foregår slik.
1. Uten Arabinose (normalt) (fig. 6.15A)
Proteinet AraC er en dimer, og fungerer da som en repressor, på lik linje med lac-repressoren. Den
binder seg samtidig til både I og O2. Da må DNA-tråden lage en sving. Dette hindrer transkripsjon av
araBAD frap(BAD).
2. Mengden AraC blir regulert ved at overskudd AraC binder O1, noe som hindrer transkripsjon av
araC. Dette er selvregulering,
3. Med arabinose til stede (fig. 6.15B)
Arabinose binder seg til proteinet AraC, og hindrer denne i lage en dimer. Den vil da binde seg til I, noe som fremmer transkripsjon fra p(BAD). Arabinose er en induser ved at den inaktiverer repressoren. AraC-proteinet er da en aktivator.
4. Med glukosemangel vil vi få dannet CAP/cAMP, jfr. lac-operon og fig. 6.8. CAP/cAMP vil binde
CRP og dette fremmer transkripsjon fra P(BAD). CAP-bindingen virker positivt i samarbeid med AraC-aktivatoren.
7. DNA-REPLIKASJON Til bokens kapitteloversikt
Kyrk (animasjon) |
7.1 HVA ER REPLIKASJON?
Mitose
Når en celle deler seg ved vanlig celledeling (mitose) , skal de resulterende dattercellene være
genetisk sett lik morcellen, de skal ha identisk DNA-innhold. Det betyr at morcellen før delingen må
inneholde to kopier av alle DNA-molekyler. Når en celle skal dele seg, må det på forhånd ha skjedd
en kopiering, eller replikasjon av alt DNA. For en menneskecelle betyr det at alt DNA i våre 46
kromosomer må være kopiert. Dette representerer i alt ca. 6×109 basepar! For celler som er i vekst
og deling, må alt DNA kopieres mellom hver deling. Dette må skje raskt, og ikke minst: nøyaktig. Når
alt DNA er kopiert, vil selve mitosen sørge for at hver dattercelle får hver sin kopi av alt DNA (kap 1.2.4).
Semikonservativ
Det at DNA består av to komplementære tråder er grunnlaget for at dette molekylet kan kopiere seg selv. Under replikasjonen må de to enkeltrådene skille lag, og begge to brukes som templat for å lage hver sin nye halvdel. Vi får da to dobbelttrådete DNA-molekyler som er like, og som er like med utgangspunktet (fig. 7.1). De nye DNA-molekylene består derved av én tråd fra det gamle molekylet og én nylaget. Derfor sier vi at DNA-replikasjonen er semikonservativ ( semi = halv, 50 % gammelt, 50 % nytt). Den opprinnelige tråden kalles foreldretråd (parent strand) og den nylagde kalles dattertråd (daughter strand).
Det kan være lett å blande sammen transkripsjon og replikasjon. I begge tilfeller brukes DNA som
templat, og selve polymeriseringen har mange likhetstrekk. For ikke å blande disse sammen, kan vi
merke oss noen viktige forskjeller:
• Ved transkripsjon lages RNA, ved replikasjon lages DNA.
• . Den biologiske rollen er ulik: Transkripsjonen er første skritt i å uttrykke den genetiske informasjon i DNA. Replikasjonen skal bare sikre rett kopiering av den genetiske informasjon.
• Ved transkripsjon er det bare en liten bit (ett gen) av DNA som brukes. Ved replikasjon skal alt DNA kopieres.
• Ved transkripsjon brukes bare én DNA-tråd (i ett område). Ved replikasjon skal begge trådene
kopieres hele veien.
7.2 HVORDAN SKJER REPLIKASJON ?
I denne gjennomgåelsen er det i utgangspunktet forholdene i E. coli som beskrives, men
hovedtrekkene er de samme i eukaryote celler. Prosessen er her delt i 6 hovedtrinn, og fig. 7.6 viser
en oversikt over disse 6 trinnene samlet.
7.2.1 Åpne DNA-tråd, ori
Det er en rekke proteiner som er direkte involvert i replikasjonen, minst 20, og alle disse kodes av hvert sitt gen. Det første som må skje er at dobbeltspiralen må åpnes over et lite område, slik at vi får enkeltrådet DNA (en liten replikasjonsboble). Selve initieringsproteinet kalles DnaA , men også andre proteiner er med og bidrar ( DnaB og DnaC ).
Denne oppstartingen av replikasjonen vil bare skje på bestemte steder langs DNA-tråden, og disse
kalles replikasjonsorigo eller bare ori . Hos E. coli er det bare ett ori . Men i eukaryote celler finner vi
mange ori langs ett DNA-molekyl (kromosom), slik at replikasjonen kan starte flere steder samtidig .
Replikasjonen fra ori går normalt i begge retninger (bidireksjonelt). Se fig 7.2.
Hastighet
I E. coli kan replikasjonen skje med en hastighet på mer enn 100 kb pr. minutt, dvs. nesten 2000
baser pr. sekund! I eukaryote celler skjer replikasjonen mye langsommere, ca. 4 kb pr. minutt.
Kromosom 1 hos mennesker har rundt 250000 kbp DNA. Det ville da ta (250000/4) min, dvs. ca. 40
døgn å replikere dette fra ett startpunkt. Vi finner imidlertid mange ori langs ett kromosom, et typisk
tall kan være ett ori pr. 20 kbp, men dette varierer sterkt.
7.2.2 Primer
Se fig. 7.3. Den første lille biten som lages ved ori er av RNA-type, det brukes altså ribo-nukleotider
(ikke deoksy-). Dette kan minne om det som skjer ved starten av transkripsjonen. Det lages en liten
RNA-bit på hver av de to DNA-trådene. Disse små RNA-bitene kalles primere , siden dette er de
første (primære) bitene som lages. Det enzymet som katalyserer syntesen av denne lille
RNA-primeren kalles primase . Dette enzymet er derved en slags RNA polymerase.
7.2.3 Elongering
Se fig. 7.4. Når en RNA-primer er laget, kan selve syntesen av DNA begynne, og dette katalyseres av enzymet DNA polymerase III (Pol III) . Dette er et kjempemessig enzymkompleks som består av 7 ulike subenheter som kalles: a, e, , t, g, d og b. I en E. coli-celle finner vi 10-20 Pol III-enzymer.
Pol III kan bare forlenge en allerede påbegynt tråd, og er derved avhengig av en primer. Forlengelsen skjer alltid fra en fri 3'-OH-ende. Denne forlengelsesreaksjonen er i prinsippet lik RNA-syntesen. Byggesteinene er trifosfater: dATP, dTTP, dGTP og dCTP. Vi skriver gjerne dNTP om denne blandingen. En ny nukleotid henges på ved at det dannes en fosfoesterbinding mellom -fosfat i en ny dNTP og den fri 3'-OH i den eksisterende tråden (fig. 7.4). Hvilken base som skal henges på, bestemmes av templattråden. Forlengelsen av den nye DNA-tråden skjer altså i retningen 5'®3' ("fem til tre") og vi sier at Pol III har 5'®3'-polymeraseaktivitet. Siden dette enzymet har ansvaret for det aller meste av polymeriseringen under replikasjonen, kalles det også for DNA replikase.
De to foreldretrådene har som kjent motsatt polaritet (retning). Det betyr at DNA-syntesen fra de to opprinnelige RNA-primerene skjer i motsatt fysisk retning fra ori på de to trådene. Dette foregår uavbrutt, og vi sier at denne DNA-replikasjonen skjer kontinuerlig. Den tråden som lages på denne måten kalles ledende tråd (leading strand), siden den lages først.
Etter som denne replikasjonen går framover, må stadig mer av de to foreldretrådene skilles fra
hverandre. Det stedet hvor dette skjer kalles en replikasjonsgaffe l. Her sitter enzymet helicase , som
bryter H-bindingene mellom DNA-trådene ved gaffelen. Fra ett ori vil vi da ha to replikasjonsgafler, én
på hver side, som beveger seg fra hverandre. Når DNA-trådene blir skilt fra hverandre vil spiralen
dreie rundt. For å unngå dette, er det egne enzymer som "avtvinner" DNA-spiralen ved å kutte og lime
en DNA-tråd. Dette er gyrase , en topoisomerase (se kap. 2.4.)
7.2.4 Etternølertråd (lagging strand)
Se fig. 7.5. Ved en replikasjonsgaffel lages ny ledende DNA-tråd kontinuerlig, og bare den ene foreldretråden brukes som templat. Den andre foreldretråden blir også enkeltrådet ved avtvinningen. Men denne har motsatt retning, og den nye DNA-tråden må da også lages i motsatt retning, dvs. fra gaffelenes grenpunkt, "bakover". Når og hvordan kan dette skje?
Når et stort nok stykke av denne andre foreldretråden har blitt enkeltrådet blir det laget en ny RNA-primer på denne, like ved gaffelens grenpunkt. Denne RNA-biten lages av enzymet primase, som er nevnt før. Når først en ny primer er laget, kan DNA-syntese skje fra primerens 3'-OH-ende. Dette gjøres som tidligere av Pol III. Det foregår da fysisk sett i retning fra gaffelen, mot ori.
Siden denne tråden lages etterpå, kalles den etternølertråd (lagging strand). Den blir forlenget helt til den treffer RNA-primeren lenger borte.
Ved replikasjonsgaffelen fortsetter helikase å åpne DNA-tråden, slik at ledende tråd syntese kan fortsette. Når dette har gått et stykke til, lager primase enda en ny primer, og det kan lages ny etternølertråd til forrige RNA-primer. Denne DNA-syntesen er diskontinuerlig, siden den stadig må starte på nytt, fra nye primere. Den nye DNA-tråden som lages slik, vil da bestå av DNA-biter, avbrutt av små RNA-biter (primerene). Disse DNA-bitene kalles Okazaki-fragmenter . I prokaryote celler kan disse være 1000-2000 baser, i eukaryote celler 100-200 baser lange.
Templaten til etternølertråden blir liggende som enkeltrådet DNA (ssDNA) i en periode. Dette er sterkt
utsatt for nedbrytning og ødeleggelse. Slikt ssDNA blir beskyttet av et eget protein som kalles SSB
eller SSBP (Single-stranded binding protein) .
Film som viser lagging strand-syntese
7.2.5 RNA til DNA
Etternølertråden vil bli laget fra én RNA-primer til den forrige av Pol III. For at hele tråden skal bli sammenhengende DNA, må RNA-basene kuttes bort og erstattes med DNA-baser. Dette gjøres av enzymet DNA polymerase I (Pol I).
Pol I er et stort enzym, men det består bare av ett polypeptid. Det har 5'®3' eksonukleaseaktivitet , dvs. evnen til å kutte av én eller flere nukleotider i 5'-enden av en DNA- (eller RNA)- tråd. Dette gjøres ved å bryte fosfoesterbindingen mellom siste nukleotid og nest siste (fig. 7.7).
DNA pol I har også 5'®3'- polymeraseaktivitet, slik som Pol III. Det kan altså forlenge en DNA-tråd med en og en base. Når enzymet har kuttet bort et RNA-nukleotid, kan det henge på et nytt DNA-nukleotid. På denne måten kan det spise opp RNA-primeren, og bytte den ut med en tilsvarende DNA. Denne prosessen kan godt fortsette litt forbi RNA-primeren. Enzymet kan nemlig også spise opp DNA-baser, og erstatte dem med nye DNA-baser.
Bakgrunnen for navnene Pol I og Pol III er rent historisk. Pol I var det enzymet som ble oppdaget og karakterisert først. Man trodde da at det var dette enzymet som utførte selve replikasjonen. Pol III ble funnet senere, og er derfor blitt nr. 3. Pol II er et enzym med ukjent funksjon.
Mens vi finner 10-20 Pol III-enzymer i en E. coli-celle, finner vi 3-400 av Pol I. Dette har sammenheng
med at Pol I spiller en rolle ved DNA reparasjon, og det har derfor blitt kalt reparasjonspolymerase.
Pol III gjør énstor jobb, pol I gjør mange små.
7.2.6 Ligering
Når Pol I har erstattet RNA med DNA som beskrevet i forrige punkt, vil det likevel mangle en
fosfoesterbinding i ryggraden mellom sist innsatte base, og den foran. Dette kalles et nick (et hakk).
Den manglende bindingen lages av enzymet DNA ligase (fig. 7.8).
Replisomer
Ved hver replikasjonsgaffel trengs det to stk. DNA polymerase III, én til ledende tråd og én til etternølertråden. I virkeligheten ligger disse samlet, og kalles et replisom. For at dette skal gå, må etternølertråden lage en sløyfe, slik det er vist i fig. 7.9.
Det er viktig at det gjøres minst mulig feil under replikasjonen, dvs. at det ikke settes inn feil base. Hvis templaten har en A, så skal det settes inn T. Ved en feil kan det settes inn f.eks. en G. En slik feil vil medføre at det lages DNA med en annen baserekkefølge enn den opprinnelige. Den nye DNA-tråden med feil base vil være templat ved neste replikasjon, og dette vil representere en mutasjon, en varig forandring av DNA. DNA polymerase III gjør kanskje en slik feil for hver 104 base. For humant DNA (6×109 basepar) vil dette bety 600000 feil pr. replikasjonsrunde.
DNA polymerase III har selv evnen til å oppdage og rette slike feil. Vi kaller dette korrekturlesing (proofreading) , og det skjer på følgende måte:
DNA-polymerase III er et kjempeenzym, med et hull eller "tunnel" gjennom, og DNA-tråden beveger seggjennom dette hullet når nye nukleotider settes inn (fig. 7.10). Hvis det settes inn feil base, vil enzymet merke det. Hvis det f.eks. dannes et AG-par, vil dette ha andre dimensjoner enn det normale AT-paret. DNA polymerase vil da umiddelbart stoppe opp, og kutte bort den (gale) basen som nettopp ble satt inn. Deretter fortsetter den igjen med polymerisering.
Dette kan illustreres med følgende bilde: Du skriver inn tekst på din PC med tastaturet. Hvis du skriver en gal bokstav, føler du det ofte med en gang. Du bruker rettetasten (fjern bakover), skriver deretter rett bokstav, og fortsetter.
Når DNA polymerase fjerner den sist innsatte base, sier vi at den utøver 3'®5'-eksonuklease aktivitet.
Pol III gjør som nevnt ca. én feil for hver 104 base. Ved korrekturlesing kan den kanskje rette opp 99,9
% av disse (bare 1 av 1000 unnslipper). Antall feil vil da være redusert til en av hver 107 base. Også
disse feilene kan bli rettet, men det skjer da etter at replikasjonen er ferdig. Dette regnes som en del
av cellens DNA-reparasjon (kap. 9.4).
Eukaryote
Hos E. coli har vi beskrevet 2 hovedtyper av DNA polymerase, nemlig I og III. Hos eukaryote er det
beskrevet mange flere typer, og de har fått navnene a, b, g osv.
7.4 SIRKULÆRT DNA
DNA (kromosomet) hos E. coli er sirkulært, det samme er de små plasmidene som finnes i mange
bakterier, og som utnyttes ved genspleising. Også mange virus har sirkulært DNA under
replikasjonen. Replikasjonen av sirkulære DNA-molekyler kan skje på to måter, såkalt (teta)- og s (sigma)-replikasjon.
-replikasjon
foregår på den måten vi har beskrevet. Det starter i et eget ori, og skjer i begge retninger (fig. 7.11).
Når replikasjonen har kommet et stykke, vil vi få en figur som minner om bokstaven (teta), derav
-replikasjon. Til slutt vil de to replikasjonsgaflene møtes, og alt DNA er replikert. Da vil de to
DNA-molekylene henge sammen som to ringer. For å løse disse fra hverandre, må DNA-trådene
brytes og bindes sammen igjen. Dette gjøres av topoisomeraser.
s-replikasjon
(sigma) kalles også rullende sirkel replikasjon . Dette kan foregå med både bakteriekromosomer, plasmider, og bakteriofag (virus)-DNA. Dette starter med at en endonuklease bryter en fosfoesterbinding i den éne tråden, slik at vi får et nick (fig. 7.12). Den tråden som er nicket vil ha en fri 3'-OH-ende, og denne kan fungere som startpunkt for DNA polymerase. Den tråden som ikke er nicket vil fremdeles være sirkulær, og den fungerer som templat for ledende trådsyntese. Den sirkulær templattråden ligger rolig og ruller rundt. Den andre foreldretråden tvinnes av, og den vil etter hvert være templat for syntese av etternølertråd (fig. 7.12).
På denne måten kan det fortsette rundt hele den sirkulære templaten, til alt DNA er replikert. Denne replikasjonen kan fortsette med en ny runde, og etter hvert flere runder. Det blir da laget flere sammenhengende kopier av DNA, og disse blir rullet av den sirkulære templaten. Dette finner vi særlig hos virus, som lager mange kopier av sitt DNA når de skal formere seg, f.eks. bakteriofag .
Det forekommer også at rullende sirkel replikasjon bare går én runde.
7.5 REVERS TRANSKRIPSJON
Hos retrovirus finner vi RNA som arvemateriale i stedet for DNA. HIV-viruset er av denne typen. Når
disse skal formere seg, må det først lages en DNA-kopi av RNA. Dette kalles revers transkripsjon.
Det blir da først laget én DNA-tråd som er komplementær til RNA (fig. 7.13). Til dette trengs det et
eget enzym, revers transkriptase(RT). RNA-virus inneholder dette enzymet. Når denne første
DNA-tråden er laget, kan den andre DNA-tråden lages av DNA polymerase.
Enzymet revers transkriptase er isolert og brukes i laboratoriet til å lage DNA fra mRNA. Slikt DNA
kalles cDNA (kap. 14.5).
I kap. 8.10 omtales replikasjon av telomerer, kromosomendene hos eukaryote, og enzymet
telomerase.
8. EUKARYOTE GENER Til bokens kapitteloversikt
|
|
|
|
|
|
8.1 EUKARYOTE CELLER
Levende organismer deles ofte i to grupper, de prokaryote og de eukaryote. Ny kunnskap om
organismenes genomer indikerer at det evolusjonsmessig er tre hovedgrupper av organismer
prokaryote , eubacteria (ekte bakterier) og archaea (urbakterier). De to siste mangler kjerne, og kan
samles som prokaryote. Men gruppen archaea har flere biokjemiske trekk som er mer lik eukaryote
enn eubacteria. I tillegg har vi virus, som ikke kan regnes som levende organismer, men som kan
formere seg i en vertcelle.Som studieobjekt og representant for de prokaryote brukes ofte
tarmbakterien Eschericia coli, E. coli.
Eukaryote
celler finner vi hos alle de øvrige organismer: dyr, planter og sopp. En av de enkleste representanter for de eukaryote er den éncellede gjærsoppen, Saccharomyces cerevisiae . Studier av denne encellede soppen har lært oss mye om hvordan våre egne eukaryote celler fungerer. Bananfluen, Drosophila melanogaster har vært og er mye brukt som studieobjekt innen genetikk. Og når vi vil studere våre nærmeste slektninger, pattedyrene, snakker vi om mammalske celler . Når vi studerer oss selv, Homo sapiens , arbeider vi medhumane celler.
En eukaryote celle (fig. 8.1) er avgrenset av en cellemembran . Cellekjernen er avgrenset av en egen kjernemembran og inneholder kromosomene . Cytoplasma er det som befinner seg mellom kjernemembranen og cellemembranen. Det består av en seigtflytende eller geléaktig væske som kalles cytosol som omgir en rekke celleorganeller med sine spesialiserte funksjoner. Det endoplasmatiske nettverk(endoplasmatic reticulum, ER) er et mebransystem med hulrom (lumen). ER er sete for en rekke biokjemiske prosesser. De fleste ribosomene er festet i ER-membranen, og proteinsyntesen foregår på ribosomene. Golgiapparatet er også hule membranstrukturer som har betydning for proteinenes videre bearbeiding og transport. Mitokondriene er cellens "kraftverk", der de energigivende reaksjonene som gir ATP foregår. I peroxisomene foregår det nedbryting av bl.a. giftstoffer. I lysosomene foregår det nedbryting av proteiner, samt nukleinsyrer og lipider. Sentrosomene har betydning bl.a. ved celledelingen. Cytoskjelettet er med på å gi cellen form og det har betydning for kommunikasjon innen cellen.
Planteceller har i tillegg til dette en cellevegg av cellulose som gir cellen en fast form og størrelse. Planteceller har klorofyllkorn (kloroplaster) der fotosyntesen foregår, og ofte store saftrom ( vakuoler ).
Prokaryote celler skiller seg fra eukaryote bl.a. på følgende måte:
1. Arvestoffet i en eukaryot celle er samlet i en cellekjerne som er avgrenset fra cellen for øvrig av en
kjernemembran. Dette mangler de prokaryote.
Eukaryote celler har en rekke organeller som er avgrenset av membraner, samt et cytoskjelett. Den prokaryote cellen har kun sin cellevegg og cellemembran til dette formålet, og de biokjemiske prosesser foregår i større grad i cytosol. De har ofte en komplisert cellevegg utenfor cellemembranen.
Prokaryote celler er normalt betydelig mindre enn eukaryote.
DNA hos eukaryote er lineært og pakket sammen med histoner til en kompakt struktur (kromosomer).
Prokaryote har sirkulært kromosom. Genene hos eukaryote er bygget opp av eksoner og introner,
dvs. at de kodende sekvensene (eksonene) er avbrutt av ikkekodende (introner).
8.2 KROMOSOMER
Kimball
Kromosomer
Det haploide kromosomtallet hos mennesker er 23 (for andre arter, se tabell 1.1). En diploid
menneskecelle har 46 kromosomer, 22 par autosomer og ett par kjønnskromosomer som er X X
(hunn) eller X Y (hann). Haploide celler, dvs. eggceller og sædceller har 22 autosomer og X eller Y.
De røde blodlegemene (erytrocytter) har "mistet" kjernen, og har ingen kromosomer.
Armer
Kromosomene er synlige under metafasen i mitosen. De er da doble, fordi de er ferdig replikert og består av to søsterkromatider. Kromosomene kan da farges på ulike måter, og hvert kromosom får sitt karakteristiske mønster av fargede områder, bånd. Den mest vanlige er G-bånd ( G = Giemsa , et fargestoff). Se fig. 8.2 og 8.3. De to identiske søsterkromatidene henger sammen i sentromeren , og vi får to armer på hver side av denne. Den korteste armen kalles p (petit), og den lengste q. Plasseringen av gener blir angitt som f.eks. 11p15.5 (genet for hemoglobin-b-kjeden). 11p står for kromosom 11, p-arm (kort arm). De to første tallene, 15 ( en-fem), betyr et avgrenset område eller bånd. Tallet 5 etter punktum er et underbånd.
Den ytterste delen av et kromosom, dvs. enden, kalles telomer. Denne har betydning for replikasjonen
(se 8.10.1).
Kart over Kromosom 1 og de øvrige fra NCBI
DNA-mengde
Ett sett med haploide kromosomer hos mennesker inneholder ca 3,2 milliarder basepar (bp), dvs.
3,2×109 bp eller 3,2 mill kbp eller 3200 Mbp. Et mer nøyaktig tall er 3227 (22 + X) eller 3181 (22 + Y).
Dette er nesten 1000 ganger så mye DNA som hos E. coli (4000 kbp). Kromosomene har en størrelse
fra 263 Mbp (kromosom 1) til 50 Mbp (kromosom 21), de største kromosomene har lavest nr. Se fig.
8.2. DNA-mengden hos noen andre organismer finner du i tabell 2.2.
DNA-pakking
Hvis alt DNA i en cellekjerne blir plassert lineært, vil DNA-tråden måle ca 1 m (haploid), evt. 2 m
(diploid). Dette er ca. 250000 ganger kjernens diameter. I et kondensert kromosom er lengden av
DNA blitt 1/50000 av dette. Her er DNA pakket tett sammen med proteiner. Vi kan beskrive pakkingen
av DNA som fire nivåer der vi får tråder med økende diameter og avtakende lengde (se fig. 8.5).
[0 DNA dobbelspiral - 2 nm]
1 Nukleosom - 10 nm
2 Kromatinfiber - 30 nm
3 Utstrakt kromosom - 300 nm
4 Kondensert kromosom - 600 nm
1 DNA-tråden alene har en diameter på ca 2. nm. Ca. 200 bp av DNA er først surret to ganger rundt
en kjerne av små basiske proteiner, histoner , vi har et nukleosom. En nukleosomkjerne består av
åtte histonmolekyler (en oktamer), to av hver av typene H2A , H2B , H3 og H4. I tillegg har vi histonet
H1 som ligger på utsiden av selve nukleosomet (fig. 8.4). Mellom to nabonukleosomer er det et kort
DNA-stykke, slik at vi får en kjede av nukleosomer, liksom en perlekjede, med diameter ca. 10 nm.
2 Nukleosomkjeden blir også surret i en spiral, slik at vi får en fiber av DNA og protein, en kromatinfibermed diameter 30 nm.
3 En kromatinfiber vil bukte seg ut og inn i sløyfer, og disse sløyfene er festet langs en trådformet proteinakse (scaffold - et stativ). Vi får et utstrakt (extended) kromosom med diameter 300 nm.
4 Denne utstrakte kromsomstrukturen kan til slutt bli kveilet sammen til en enda tettere
(condensed,kondensert) struktur. Det er i denne formen vi kan se et kromosom under metafasen av celledelingen.
Histoner
er små proteiner med et meget stort innhold av de basiske aminosyrene lysin og arginin (20-30 %),
som er positivt ladd. DNA er jevnt negativt ladd, og tiltrekkes derved av histonene. Antallet aminosyrer
i histonet H1 er 223, i de andre er det mellom 102 og 135. Åtte histonmolekyler er pakket til et
kuleformet nukleosomkjerne (en oktamer), og noen av dem har en hale som stikker ut fra selve nukleosomet.
er navnet på den blandingen av DNA og protein som kromosomene består av. Mesteparten av
kromosomene blir kondensert bare under mitosen, dette kalles eukromatin (ekte kromatin). Deler av
kromosomene forblir imidlertid kondensert også under interfasen, dette kalles heterokromatin .
Eukromatin blir altså delvis "pakket ut" når cellen ikke er i deling. Dette har sammenheng med at
genene er aktive, de skal brukes ved transkripsjon. Da må DNA være tilgjengelig. Heterkromatin, som
ikke blir pakket ut, er områder av kromsomene som er genfattig. Pakkingen av DNA rundt histonene
er en måte å regulere genene på (se 8.8.4).
X og Y
X-kromosomet er relativt stort og inneholder mange gener, mens Y-kromosomet er meget lite og
inneholder nesten ingen gener. Det er bare små områder av X og Y som er felles, dvs. homologe.
Disse ligger i begge endene av begge kromosomer, og utgjør ca. 5 % av Y-kromosomet, nesten 3 Mb
DNA. Her kan det skje overkrysning mellom X og Y ved den mannlige meiosen, slik at X og Y
utveksler små biter. Dette felles området for X og Y kalles for det pseudoautosomale området.
Karyotype
Det finnes unntaksvis individer med avvikende kromosomtall fra det normale 46, de har en annen
karyotype. Slike kromosomavvik er normalt forbundet med store fysiske og psykiske avvik. Se kap.
20.6.
8.3 TRANSKRIPSJON
Oregon
DNA i eukaryote celler befinner seg i cellekjernen, mens ribosomene er i cytoplasma utenfor. Det
betyr at transkripsjonen foregår inne i kjernen, mens translasjonen foregår utenfor. RNA blir laget i
kjernen, og deretter transportert ut gjennom kjernemembranen til cytosol der det brukes. Dette
innebærer at transkripsjon og translasjon av et gen ikke kan foregå samtidig, slik det gjør i E. coli (se
fig. 5.17).
8.3.1 Tre RNA polymeraser
E. coli har én RNA polymerase, som lager både tRNA, rRNA og mRNA. Eukaryote celler har tre typer
RNA polymerase: I, II og III. I hovedsak er det slik at de lager hver sin type av RNA:
RNA polymerase I (RNAPI) lager rRNA
RNA polymerase II (RNAPII) lager mRNA
RNA polymerase III (RNAPIII) lager tRNA
I tillegg er det en egen RNA polymerase som brukes i mitokondriene. I dette avsnittet tar vi opp
transkripsjon med RNAPII av proteinkodende gener, som gir mRNA. Transkripsjon som gir andre
typer RNA blir tatt opp i 8.5.
8.3.2 Initiering, 5'-capping
Elementene i et typisk eukaryot (humant) gen er også vist i fig. 13.3. Transkripsjonen starter med at RNA polymerase II binder seg til en promoter i DNA. Men dette er noe mer komplisert enn hos E. coli. For at RNA polymerase skal binde seg og starte transkripsjonen, er det en rekke andre proteiner som først må binde seg i dette området av DNA. Disse kalles transkripsjonsfaktorer. Dette samspillet mellom bestemte DNA-sekvenser og proteiner m.m. er en del av reguleringen av genene, og vil bli behandlet i 8.8 og 8.9.
mRNA blir modifisert i sin 5'-ende like etter at transkripsjonen har startet. Husk at 5'-enden er den første nukleotiden som blir laget, og i utgangspunktet har den derved tre fosfatgrupper. På den ytterste av disse blir det hengt på en ekstra G (GMP) i motsatt retning av normalt (5'-5'). I tillegg skjer det en metylering av denne G-en (7-metyl-G) samt av 2'-OH i sukkeret på de to siste nukleotidene. Se fig. 8.7. Denne modifiserte enden av mRNA kalles 5'-cap.
5'-cap-strukturen har antakelig betydning for eksport av mRNA ut av kjernen, og for ribosombinding ved translasjonen.
8.3.3 Terminering, 3'-polyadenylering (Fra Oregon State)
Transkripsjonen av et gen fortsetter litt forbi den proteinkodende delen av DNA. Men det er ikke noe entydig termineringssignal, slik vi har i E. coli. Transkripsjonen blir avsluttet på noe ulikt punkt fra gang til gang, og dette kan være flere hundre eller tusen baser forbi det kodende DNA. Helt nylaget mRNA vil ut fra dette være av høyst ulik størrelse, selv om det kommer fra samme gen. Dette RNA, som befinner seg i kjernen, kalles hnRNA , heterogent nukleært RNA. Det første RNA-molekylet som lages ved transkripsjonen kalles gjerne for det primære transkript . Noen kaller det for pre-mRNA.
Transkripsjonen foregår altså et stykke forbi den kodende delen av genet. Deretter blir det ferdig transkriberte RNA kuttet på et bestemt sted, og det blir addert en hale av bare A-er. Denne prosessen kallespolyadenylering, og stedet i mRNA der dette skjer kalles poly(A)-setet. Konsensus for poly(A)-signalet hos pattedyr er AAUAAA, og mRNA blir kuttet 10-30 baser nedstrøms for dette. Deretter blir det addert én og én adenylat (AMP)-enhet, totalt ca. 200, slik at vi får en såkalt poly(A)-hale (se fig. 8.8). Enzymet som katalyserer denne prosessen heter poly(A) polymerase. Man har funnet meget stor grad av likhet mellom poly(A)-signalene i ulike mRNA-er, dvs. i ulike gener.
Resultatet av dette er at all mRNA i eukaryote celler har samme 5'-ende (5'-cap) og samme 3'-ende (3'-polyA). Poly(A)-halen har betydning for transporten ut av kjernen og for stabiliteten til mRNA. Både poly(A) og 5'cap har betydning for ribosombinding.
Det finnes mRNA som ikke får poly(A)-hale, f.eks. histon-mRNA. Her blir 3'-enden modifisert med en
annen mekanisme. Her deltar et kompleks av protein og RNA, et såkalt snRNP (small nuclear
Ribonucleoprotein) . RNA-molekylet kalles U7 snRNA.
8.4 RNA SPLEISING
Fra Missouri Fra Oregon State Oklahoma state
Intron/ekson MAX animasjon
DNA som koder for aminosyrer kalles kodende DNA , og vi sier at dette DNA blir uttrykt (expressed) når mRNA og et protein blir laget. I eukaryote celler er det slik at kodende DNA blir avbrutt av lange sekvenser av ikkekodende DNA. Alt dette blir transkribert, og finnes i det primære transkript . De kodende delene av genene kalles eksoner (expressed sequences), og de ikke-kodende sekvensene imellom kalles introner (intervening sequences). Dette fenomenet ble ikke oppdaget før slutten av 1970-årene.
Genet for -globin ( OMIM ) inneholder to introner og derved tre eksoner. Genet for dystrophin inneholder 79 eksoner. Antallet introner vil være én mindre enn antallet eksoner, siden vi starter og slutter med et ekson. Se tabell 8.1. I kap. 13 og kap. 20 finner du nærmere omtale av størrelse og oppbygning av en rekke humane gene
Når mRNA skal brukes ved translasjon må intronene være fjernet, slik at ribosomet leser en sammenhengende rekke av kodoner. Denne fjerningen skjer inne i kjernen, og det kalles RNA spleising (splice). Vi kan si at eksonene blir spleiset sammen, evt. at intronene blir spleiset ut.
Eksonene må spleises sammen ved de samme basene hver gang. Hvis spleisingen skjer én base til siden, vil hele leserammen bli forskjøvet, og alle aminosyrene blir feil. Et slikt protein ville neppe være funksjonelt.
Eksoner og domener
Mange proteiner kan deles inn i ulike domener, dvs. aminosyresekvenser som folder seg på en
bestemt måte,og som har en spesiell funksjon (se kap. 4.6). Ofte finner vi at et ekson i DNA tilsvarer
et domene i proteinet (se fig. 23.10).
Spleisosom
Når det gjelder mRNA er det et stort enzymkompleks som kalles et spleisosom (s pliceosome ) som
gjennomfører spleisingen. Dette komplekset må gjenkjenne ekson/introngrensen (splice sites), kutte
RNA, og koble sammen eksonene (fig 8.6). Et spleisosom er et gigantisk kompleks som består av
opptil 300 ulike proteiner og fem ulike RNA-molekyler. Disse RNA-molekylene kalles snRNA (small
nuclear RNA), og kalles U1 , U2 , U4, U5 og U6. Dette er små RNA-molekyler på ca. 150 baser . Vi
har tidligere nevnt U7 i forbindelse med 3'-enden av histon-mRNA. Komplekset av RNA og proteiner
kalles snRNP ( small nuclear ribonucleoprotein ).
Mekanisme
Den vanligste mekanismen for mRNA-spleising er vist i fig 8.9. Det er tre områder i et intron som er avgjørende for at spleisingern skjer. Det ene er i 5'-enden av intronet, og kalles 5'-splice site eller splice donor (GU). Det andre er i 3'-enden, 3'-splice site eller splice acceptor (AG). Det tredje er inne i intronet, og kalles grenpunkt (branch point) (A). Vi kan dele det som skjer i to reaksjoner. Vi kaller eksonene E1 og E2.
1 Forgreningspunktet (A) binder seg til 5'-G-enden av intronet. Det er 2'-OH i ribosen ved A som bindes til fosfat i 5'-P-G-enden. Resultatet er at RNA blir kuttet, og intronet danner en lassoliknende struktur (lariat).
2 5'-enden av E2 bindes til 3'-enden av E1. Lassoen, dvs. intronet, blir fri.
Spleisestedet
i intronet inneholder som nevnt GU i 5'-enden (splice donor) og AG i 3'-enden (splice acceptor).
GU---AG er konsensussekvens for en rekke eukaryote gener (98 % for humane gener), men det er
flere områder som er viktig for korrekt spleising. Det finnes selvsagt mange GU og AG-sekvenser i et
intron, som kunne gi feil spleising. Disse stedene kalles kryptiske spleisesteder.
Katalytisk RNA
Man har funnet eksempel på at RNA-molekylet selv kan utføre den katalytiske funksjon ved
RNA-spleisingen. Dette gjelder for introner i rRNA. Dette var en ganske oppsiktsvekkende
oppdagelse, siden man ellers har regnet med at det bare er proteiner som har biokatalytiske
egenskaper. Man har brukt betegnelsenselvspleising og katalytisk RNA om dette fenomenet. Dette er
også interessant i et utviklingsbiologisk perspektiv. Kanskje RNA har spilt en rolle som katalysator i de
første primitive celler, før proteinsyntesen utviklet seg?
8.5 ncRNA -GENER
Fra CSI
De proteinkodende genene gir mRNA som koder for aminosyrene i et protein. De andre RNA-typene
kalles ncRNA, noncoding RNA, ikkekodende RNA. Vi kan dele ncRNA i seks grupper, rRNA, tRNA,
snRNA, snoRNA, miRNA og andre.
Eukaryote ribosomer inneholder fire typer rRNA (se fig. 8.10). Genet for 5S rRNA blir transkribert for seg av RNA polymerase III . Genene for 5,8S, 18S og 28S rRNA ligger samlet, med korte sekvenser (spacer)mellom seg. Alt dette blir transkribert under ett av RNA polymerase I , og vi får ett stort pre-rRNA. Dette blir kuttet i tre biter og spacere blir fjernet, på liknende måte som vist i fig. 5.3 for E.coli. Det skjer også en kjemisk modifisering av rRNA, bl.a. en metylering av 106 spesifikke baser. I denne prosessen deltar en egen type RNA som kalles snoRNA (small nucleolar RNA).
80 % av alt RNA i en celle er rRNA. En voksende celle må kunne lage rRNA raskt for å bygge opp ribosomer. Det er da en fordel med mange kopier av rRNA-genene, som kan transkriberes samtidig. En eukaryot celle kan ha flere hundre kopier av rRNA-genene (rDNA). Disse ligger gjerne samlet i mange påfølgende repetisjoner i enkelte av kromosomene. Se 13.1.4.
Både transkripsjonen og bearbeidingen av rRNA skjer i kjernens nukleole . Det er også her rRNA blir
satt sammen med ribosomale proteiner til ribosomer.
Også genene for tRNA ligger samlet i klynger, og de blir transkribert av RNA polymerase III. Vi får laget et pre-tRNA som både blir kuttet og modifisert før vi har et ferdig tRNA. I tRNA er mer enn 10 % av basene kjemisk modifisert. Genene for tRNA og 5S rRNA, som lese av RNAPIII, har en intern promoter, dvs. at promoteren ligger inne i det DNA-området som blir transkribert. Ellers ligger promotere oppstrøms for genene, slik vi har lært for E. coli.
En celle har også flere kopier av hvert enkelt tRNA-gen, samlet er det flere hundre tRNA-gener. Se 13.1.4.
Det finnes eksempler på både rRNA og tRNA som har introner, altså sekvenser innimellom selve
tRNA/rRNA-sekvensen som skal fjernes.
snRNA, small nuclear (små nukleære) RNA inngår i spleisosomet som sørger for spleising av mRNA.
Det er kjent et titalls slike, de kalles U1, U2, U4, U5, U6, U11, U12. Disse blir transkribert av RNAPII.
Betegnelsen U kommer av at de inneholder mye av basen U.
U7 snRNA blir brukt ved bearbeiding av 3'-enden til histonene , og blir transkribert av RNAPIII.
snoRNA , small nucleolar (små nukleolære) RNA blir brukt ved bearbeiding og modifisiering av rRNA.
snoRNA går sammen med egne proteiner og danner små partikler som kalles snoRNP (P = particle).
Det er vanlig at genene som koder for snoRNA befinner seg inne i introner til proteinkodende gener.
Det er kjent over 100 typer snoRNA, f.eks. U3 og U7 snoRNA.
miRNA, microRNA blir omtalt i 8.8.5. Dette er meget små RNA-biter som kan påvirke mRNA, og
derved genekspresjon. DNA som koder for disse små miRNA-molekylene kan derved falle inn under
definisjonen av gener. Inntil nylig har disse sekvensene og deres funksjon vært ukjent.
Andre typer ncRNA som er omtalt i denne boken er er:
7SL RNA inngår i SRP (signal recognition particle), transkriberes av RNAPIII. Se 8.6.2 .
Telomerase RNA, inngår i telomerase, se 8.10.1 .
Xist RNA spiller en rolle ved X-kromosom inaktivering, se 8.8.7 .
8.6 TRANSLASJON
8.6.1 Translasjonen
Translasjonen hos eukaryote følger samme mønster som i E. coli (kap. 5); ribosombinding,
initieringskompleks, samme genetiske kode, wobble, P- og A-seter, translokasjon osv.
Wobble
Vi har lært at siste base i et kodon kan være C/U og A/G og likevel bruke samme tRNA (samme
antikodon). Dette er ikke utnyttet fullt ut i eukaryote. Vi har C/U-wobble, men ikke A/G. Det betyr at
f.eks. kodonene CUC og CUG (Leu) bare har ett tRNA, mens kodonene CUA og CUG (Leu) har hvert
sitt tRNA med antikodonene UAG og CAG. Samlet trengs det da 45 ulike tRNA.
Kodonbruk
Når en aminosyre har flere kodoner, så blir ikke disse like mye brukt. Alanin har fire kodoner, GCU,
GCC, GCA og GCG. En undersøkelse har vist at disse brukes slik: GCU (26 %), GCC (40% ), GCA
(23 %) og GCG (11 %).
Ribosomene
i eukaryote celler er litt større enn i E. coli, og har litt annet mønster av rRNA og proteiner, slik fig.
8.11 viser. Det er fire typer rRNA, 5S, 5,8S, 28S og 18S rRNA. Ribosomet binder seg normalt helt i
5'-enden av mRNA, og det er mulig at 5'-cap-strukturen har betydning for denne bindingen.
Ribosomet beveger seg så langs mRNA, og selve translasjonen starter ved første startkodon, AUG.
Her starter det med aminosyren metionin, som beskrevet i 5.4, men hos eukaryote er den ikke
formylert. Vi har met, ikke fmet.
Translasjonsfaktorer
I eukaryote celler har vi også initieringsfaktorer, elongeringsfaktorer og releasefaktorer, men det er
flere av dem enn hos prokaryote.
8.6.2 Proteinsortering (sorting, targeting)
Web-books Figurer fra Lodish Texas
Proteinene som lages i en celle har ulik adresse. Noen skal inn i kjernen, noen skal til mitokondriene,
noen til peroxisomene, noen skal festes i cellemembranen, noen skal eksporteres ut av cellen (fig.
8.11). Proteinene har spesielle aminosyresekvenser, signalsekvenser, som styrer dette. Vi kan kalle
dem "adresselapper".
Kjernen , mitokondriene og peroxisomene
Proteiner som skal inn i kjernen, mitokondriene eller peroxisomene blir laget på frie ribosomer i cytosol (fig. 8.11).
Signalsekvensen som styrer et protein til kjernen inneholder mange positivt ladde aminosyrer, f.eks. Pro-Pro-Lys-Lys-Lys-Arg-Lys-Val-, og den er internt plassert, ikke N- eller C-terminalt.
Mitokondriesignalet er en N-terminal sekvens som også har et sterkt innslag av aminosyrene lys og arg, men den er ganske variabel.
Proteiner som skal til peroxisomene har en C-terminal som normalt er -Ser-Lys-Leu-C.
Kjernemembranen har meget store porer som kan slippe gjennom både mRNA og proteiner. Et
protein kan gå gjennom disse porene i foldet tilstand. For å komme inn i mitokondriene må proteinet
derimot foldes ut. I begge tilfellene må proteinene hjelpes gjennom membranen av egne
transportproteiner.
ER
En stor del av proteinsyntesen foregår på ribosomer som er festet til ER-membranen (ER = det endoplasmatiske nettverk). Proteinet blir da ført inn i hulrommet (lumen) til ER mens det blir laget. Dette gjelder både proteiner som skal forbli festet i membranen og de som skal bli eksportert til andre organeller eller ut av cellen. Proteiner som skal lages i ER har en N-terminal signalsekvens på ca. 20 aminosyrer , der vi normalt finner minst åtte hydrofobe aminosyrer etter hverandre, f.eks. Leu-Leu-Leu-Val-Gly-Ile-Leu-Phe-Trp-Ala. Humant veksthormon har f.eks. denne N-terminale signalsekvensen:
N-Met-Ala-Thr-Gly-Ser-Arg-Thr-Ser-Leu-Leu-Leu-Ala-Phe-Gly-Leu-Leu-Cys-Leu-Pro-Trp-Leu-Gln-Glu-Gly-Ser-Ala-|*|-Phe-Pro...
Her er det framhevet i kursiv en sammenhengende rekke av 13 hydrofobe aminosyrer. Denne
signalsekvensen blir senere kuttet bort av en signal peptidase (mellom ala og phe, merket |*|).
Proteinsyntesen i ER kan deles opp slik (se fig. 8.12 og 8.13):
http://cellbio.utmb.edu/cellbio/rer2.htm
1 Translasjonen starter på et fritt ribosom. De første ca. 20 aminosyrene er som nevnt et signalpeptid.
2 Signalpeptidet binder til seg SRP (signal recognition particle) . SRP består av seks proteiner + et RNA-molekyl (7SL RNA), og befinner seg i cytosol.
3 SRP tar med seg mRNA og ribosom, og binder seg til et reseptorprotein som sitter i ER-membranen, enSRP-reseptor.
4 Dette SRP-reseptorkomplekset finner en kanal i ER-membranen, som polypeptidet kan passere gjennom mens det blir laget.
5 Signalpeptidet blir sittende fast i kanalen (her er de hydrofobe aminsosyrene viktige), mens resten av proteinet blir ført inn i lumen (hulrommet) av ER.
6 Når proteinet er ferdig laget og har kommet inn i lumen i ER, blir signalpeptidet kuttet bort av en egensignal peptidase, og resten av proteinet blir da frigjort i lumen i oppløst tilstand.
Dette siste gjelder altså for proteiner som ikke skal være membranbundet.
Hvis proteinet skal sitte fast i membranen som et transmembranprotein, vil det i tillegg inneholde
enintern signalsekvens som sier "stopp overføring". Dette er gjerne hydrofobe aminosyrer som danner
en a-heliks, som vil bli sittende i membranen. Den resterende C-terminale delen av proteinet vil da bli
værende på utsiden av membranen (cytosol). Hvis proteinet skal krysse membranen flere ganger, vil
det inneholde flere slike "stoppsekvenser".
Proteintransport
Proteinene som havner i ER-lumen eller i ER-membranen kan ha ulike adresse etter dette. Noen proteiner skal eksporteres ut av cellen, noen skal havne i plasmamembranen, noen i lysosomer. Denne transporten skjer via Golgiapparatet (T, der proteinene også kan bli modifisert videre (se 8.7).
Fra ER kan det bli avsnørt små vesikler (blærer), som deretter smelter sammen med Golgi. Videre blir det avsnørt blærer fra Golgi som kan smelte sammen med plasmamembranen, slik at innholdet kommer ut. Proteiner som sitter i membranen på innsiden av ER vil da havne på utsiden av cellemembranen. Proteiner som er løst i lumen, vil bli tømt ut på utsiden av cellen.
Noen vesikler fra Golgi utvikler seg til lysosomer , som inneholder enzymer som kan bryte ned og fordøye uønskede proteiner og andre stoffer. Inne i lysosomene er det meget surt (pH 4,8), og enzymene her har sitt optimum ved denne lave pH. Hvis enzymene skulle lekke ut i cytoplasma, der vi har ca. pH 7, vil de ikke være virksomme.
Proteiner som skal bli igjen i ER-lumen kan være merket med Lys-Asp-Glu-Leu i C-enden.
8.7 PROTEINBEARBEIDING eller her
Når et polypeptid er nylaget i cellen gjennom proteinsyntesen (translasjonen), har vi en lang kjede av
aminosyrer. Denne kan gjennomgå flere endringer før proteinet er ferdig.
8.7.1 Folding (til sin tertiærstruktur)
Selv om foldingen til en bestemt tertiærstruktur skjer ut fra termodynamiske prinsipper (se kap. 4.4),
er det egne proteiner som "hjelper til". Disse hjelpeproteinene kalles molecular chaperones
(anstandsproteiner). Dette finner vi både i prokaryote og eukaryote celler. Chaperonene binder seg til
peptidkjeden før den er ferdig laget (fig. 8.15), og hindrer den i å folde seg galt, de hindrer "uønskede
forbindelser", jf begrepetanstand. Også dannelsen av S-S-broer katalyseres av egne enzymer.
8.7.2 Proteolytisk spalting
Enzymer som bryter en peptidbinding er proteolytiske, og de kalles proteaser. Det finnes mange
proteaser, og de kan ha ulik spesifisitet. Det er flere eksempler på at en polypeptidkjed blir spaltet
etter translasjonen.Slik er det f.eks. med insulin . Den uferdige formen kalles proinsulin og er 84
aminosyrer lang. Denne blir spaltet på to steder, slik at det blir tre deler. Den midterste delen
(aminosyre 31-63) blir fjernet, mens de to andre delene blir forbundet med disulfidbroer.
8.7.3 Kjemisk modifisering
Glykosylering
Mange proteiner får oligosakkarider kovalent bundet til seg. Dette skjer ved at sukkerets -OH-gruppe danner en glykosidbinding til en av aminosyrenes sidegrupper (-OH eller -NH2). Aminosyrene serin og threonin danner en O-glykosidbinding og aminosyren aspargin danner en N-glykosidbinding . De sukkerartene som danner slike glykoproteiner er spesielt glukose , galaktose , mannose og N-acetyl glukosamin (NAG).
Mange membranproteiner blir glykosylert på ulike måter. Dette har organismen utnyttet ved å bruke
disseglykoproteinene som gjenkjenningssignaler, såkalte antigener . Vårt immunforsvar kan
gjenkjenne våre egne typer antigener, men vil reagere mot andre typer. Se kap. 13.6 (ABO-systemet).
Acylering
Fettsyrer kan også bli hengt på bestemte aminosyrer. Disse kan f.eks. fungere som hydrofobe "anker"
for at proteinet skal festes i en membran.
Nedbrytning
Proteiner blir også bli brutt ned i cellen. Dette er en måte å bli kvitt uønskede proteiner på, og å regulere proteiners aktivitet på . Denne nedbrytningen kan bli styrt eller satt i gang av et lite polypeptid på 76 aminosyrer som heter ubiquitin . Dette kan binde seg til proteiner, og representerer i så fall en "dødsdom" for proteinet. Selve nedbrytningen gjøres av et gigantisk proteinkompleks som kalles et proteasom . Dette består av over 20 subenheter, og opererer i cytosol.
Vi har allerede nevnt at mange proteiner kan bli brutt ned i lysosomene (8.6.2).
8.8 GENREGULERING
Genreguleringen hos eukaryote er betydelig mer komplisert enn hos prokaryote. Genregulering kan skje på flere ulike nivåer (se kap. 6.1.2). Av de sju punktene som tas opp her, er ett regulering på mRNA-nivå (nr. 5), resten er på DNA-nivå (transkripsjon).
Eukaryote har tre ulike RNA polymeraser. Vi omtaler her gener som gir mRNA, som gjenkjennes og
transkribers av RNA polymerase II, RNAPII .
8.8.1 Promotere
Det området av DNA der RNA polymerase binder seg og starter transkripsjonen kalles promoter eller
kjernepromoter (core promoter) (fig . 8.17). Her er det flere typiske ("konsensus")-sekvenser, som kan
binde til seg ulike regulerende proteiner ( transkripsjonsfaktorer ). Rundt 25 baser oppstrøms for start
(-25) finner vi noe som minner om Pribnowboksen i E. coli, nemlig TATAA. Den kalles ofte
TATA-boks . Videre har vi et GC-rikt område i posisjonen -35. Området lenger oppstrøms for
kjernepromoteren kan også ha stor betydning for genreguleringen. Dette kalles noen ganger
regulerende promoter eller kontrollelementer. Her kan vi finne ett eller flere GC-rike områder, f.eks.
sekvensen GGGCGG. Dette kalles gjerne en GC-boks.Ofte finner vi også en CAAT-boks, som ligger i
området -70-80. Dette er DNA-sekvenser som har betydning for bindingen av ulike proteiner rundt
transkripsjonsstart.
8.8.2 Transkripsjonsfaktorer
For at RNA polymerase II skal starte transkripsjonen fra sin promoter er det helt nødvendig at flere andre proteiner også binder seg her. Dette kan ha sammenheng med at aktivt DNA er pakket i nukleosomer (eukromatin), og derved er mindre tilgjengelig. Dette skiller eukaryote fra prokaryote. De proteinene som binder seg ved kjernepromoteren kalles generelle transkripsjonsfaktorer . Disse er selv proteiner, og er derved kodet av egne gener. En av oppgavene til disse er å pakke DNA ut av nukleosomene (se fig. 8.18).
Det første som skjer, er at transkripsjonsfaktor IID (TFIID) binder seg til TATA-boksen. Tallet II
kommer av at det handler om RNA polymerase II. TFIID består av mange subenheter. Den ene av
dem, som binder TATA-boksen, er TBP, TATA-bindende protein . Det er også en rekke andre
proteiner som deltar i denne bindingen (TFIIA, B, E, F m.f.). Disse kalles ofte TAFs (TBP-assosierte
faktorer). Når alle disse faktorene er bundet har vi fått et initieringskompleks, og RNA polymerase II
kan starte transkripsjonen av genet (fig. 8.19).
Noen av de viktigste trinnene i denne initieringen er:
1 TBP og resten av TFIID binder TATA-boksen , og lager en sving på DNA-tråden.
2 Svingen på DNA gjør det mulig for TFIIB å binde seg, og denne gjør at RNA polymerase binder seg i korrekt posisjon.
3 TFIIH sørger for å bryte H-bindinger, slik at DNA-tåden blir åpnet, og vi får et åpent
promoterkompleks. Det samme proteinet kan fosforylere RNA polymerase, slik at denne blir aktivert.
cis/trans
Tanskripsjonsfaktorene er kodet av gener som kan sitte på andre kromosomer, vi sier at de er
transvirkende.Men de DNA-områdene som disse binder seg til (promoterelementene), må ligge i
nærheten av det genet som reguleres. Dette er da cis-virkende elementer .
Aktivator
De generelle transkripsjonsfaktorene binder seg i samme område som RNA polymerase, i kjernepromoteren rundt TATA-boksen, like ved transkripsjonsstart. Andre proteiner kan binde seg til DNA-områder litt lenger oppstrøms (GC- og CCAAT-boks), og stimulerer transkripsjonen derfra. Disse kalles også transkripsjonsfaktorer, eller aktivatorer. Et eksempel på en slik er proteinet Sp1 som binder seg til GC-boksen i mange gener. Dette proteinet ble isolert i 1982, og det binder seg med et sinkfingermotiv (se 4.7.2). For at Sp1 skal påvirke RNA polymerase, er det også nødvendig at flere mindre molekyler danner mellomledd mellom disse. De kalles da kofaktorer eller koaktivatorer (se fig. 8.20).
Sp1 er en generell faktor som finnes i nesten alle celler, og som påvirker mange gener. Den stimulerer såkalte husholdningsgener , gener som nesten alltid brukes aktivt. Mange andre transkripsjonsfaktorer er spesifikke for bare visse typer celler/vev, eller for bare visse gener, eller bare for en bestemt periode i cellens/organismens livssyklus.
Mange transkripsjonsfaktorer blir aktivert av ytre stimuli gjennom cellens signaloverføring. Dette blir
tatt opp i kap. 8.9.
8.8.3 Enhancere, silencere, responselementer MAX animasjon
Vi har hittil omtalt DNA-sekvenser som befinner seg mindre enn 100 baser fra transkripsjonsstart, og faktorer som binder seg her. Man har også funnet DNA-sekvenser som kan være flere tusen baser unna, og som påvirker transkripsjonen. Slike områder kalles forsterkere ( enhancere ) eller slukkere ( silencere ), etter som hvilken virkning de har (fig. 8.21). Disse ligger vanligvis oppstrøms, men også nedstrøms enhancere er kjent. Et tredje begrep er responselement, f.eks. CRE (cAMP response element) (fig. 8.22). Dette er en DNA-sekvens som binder et protein som representerer et signal, f.eks. fra et hormon. Denne bindingen vil så påvirke transkripsjonen. Et protein som binder en enhancer vil være en aktivator, et som binder en silencer vil være en repressor.
Hvordan kan en fjerntliggende DNA-sekvens påvirke transkripsjonen? Dette er ikke så vanskelig å
forstå når vi vet at DNA-molekylet ikke er stivt, men danner sløyfer av ulik lengde. Forsterkerområder
kan komme fysisk nær promoterområdet. De proteiner som er bundet til forsterkeren vil kunne
påvirke RNA polymerase (fig. 8.21).
Koordinert regulering
Hos prokaryote kan flere gener ligge etter hverandre, bli transkribert sammen fra samme promoter,
og derved bli kontrollert sammen. Dette er ikke vanlig hos eukaryote. Imidlertid kan beslektede gener
inneholde de samme kontrollelementene, selv om de ikke ligger nær hverandre. Vi har nevnt CRE
(cAMP response element). Det er mange ulike gener som inneholder responselementet CRE. Alle
disse genene blir da påvirket av de hormonene som øker cAMP-mengden i cellen (se fig. 8.29).
Derved vil ett ytre signal (cAMP) påvirke mange gener samtidig, reguleringen er koordinert. Samtidig
kan ett bestemt gen inneholde mange ulike responselementer, og derved bli påvirket av mange ulike
hormoner og andre signalstoffer.
8.8.4 Histoner og kromosomstruktur
A Acetylering av histoner
Den tette pakkingen av DNA i heterokromatin hindrer aktiv transkripsjon av DNA (fig. 8.5). Det finnes
egne enzymer som kan modifisere histonene og gjøre pakkingen av DNA løsere. Histonene har en
N-terminal hale som stikker litt ut fra selve histonkjernen (se fig. 8.4). Her finner vi flere positivt ladde
lysiner. Disse kan bli acetylert av enzymet HAT (histon acetyl transferase) . Dette medfører antakelig
at den positive ladningen på histonet blir svekket , og DNA-bindingen svakere. Dette er derved en
generell mekanisme for å gjøre DNA mer tilgjengelig for transkripsjon, altså aktivere gener. Det er
også et enzym som har motsatt effekt, nemlig deacetylering av histonene, noe som bidrar til å
inaktivere gener.
B Demetylering av CpG-øyer
Hos vertebrater finner vi et enzym som metylerer cytosin (C) til 5'-metylcytosin (CM), men bare når C har G som nabo: 5'-CG-3'. Vi skriver dette som CpG , og metylering ( av DNA ) gir oss CMpG. Man skulle forvente å finne CpG for hver 16. nukleotid langs en DNA-tråd, men i praksis forekommer dette mye sjeldnere, kanskje bare 1/5 av dette. Dette kan forklares slik: Både C og CM kan blir utsatt for deaminering , vi får da henholdvis U og T, som kan representere en mutasjon. I tilfellet C®U vil U bli reparert av et eget enzymsystem. Men for CM®T vil vi ikke få noen reparasjon, T er jo naturlig i DNA. Det betyr at C i CpG gradvis blir forvandlet til TpG, via CMpG. Se fig. 8.23.
Sekvensen CG er altså sjelden i vårt DNA. Men i noen områder av vårt DNA finner vi likevel en "normal" andel av sekvensen CpG. Dette kalles CpG-øyer, og vi finner dette særlig i starten (5'-enden) av gener, der vi generelt har mer enn 50 % GC-innhold. CpG kan som nevt lett bli metylert. Metylering av CpG i et promoterområdet av et gen vil hemme transkripsjonen. For at genene skal brukes må metylgruppen bli fjernet, noe cellen også er i stand til. Denne aktive demetyleringen kan være en overordnet måte å aktivere gener på.
Ca 50 % av våre gener ligger i nærheten av CpG-øyer, og graden av metylering sier noe om genets ekspresjonsmønster. Husholdningsgener er stort sett umetylert, noe som stemmer med at disse genene stort sett skal uttrykkes hele tiden.
Demetyleringen medfører at nukleosomet blir destabilisert, og DNA "pakket ut". Dette kan være med på å gjøre genene tilgjengelig. Både acetyleringen av histoner og demetylering av CpG vil aktivere et gen.
Når DNA er nyreplikert, vil den gamle tråden være metylert, men ikke den nye. Sekvensen CpG er et
palindrom, slik at vi også får CpG i den nye tråden. Enzymet som metylerer CpG, har en tendens til å
metylere en tråd der hvor den andre tråden allerede er metylert (hemimetylert DNA). Dette medfører
atmetyleringsmønsteret har en tendens til å bli beholdt og gå i arv. I noen tilfeller kan dette nedarvede
metyleringsmønsteret rundt et gen være helt avgjørende for om genet blir brukt eller ikke. Dette kalles
imprinting av gener, og blir tatt opp i kap. 20.1.
8.8.5 mRNA levetid
Jo lengre levetid ett mRNA har, jo mer protein blir laget fra dette mRNA. I prokaryote har mRNA en levetid på bare noen få minutter, i eukaryote har mRNA en halveringstid fra 5 min til mange timer. Rent generelt har både 5'-cap og 3'-poly(A)-halen betydning for stabiliteten til mRNA. Uten disse vil mRNA raskt bli ødelagt. Generelt så er AU-rike områder i mRNA, f.eks. AUUUA-repetisjoner destabiliserende. Slike områder blir kalt ARE (AU-rich elements).
Det kan også være egne områder av mRNA som påvirker stabiliteten, og dette kan være en måte å
regulere genekspresjon på. La oss ta med et eksempel på dette. Transferrinreseptoren (TfR) er et
protein som gjør at jern blir tatt opp i cellen fra blodserum, der det er bundet til transferrin . I
3'-UTR-området av TfR mRNA finner vi en AU-rik sekvens som lett blir kuttet, slik at mRNA blir
nedbrutt (se fig. 8.24). Cellen inneholder et eget jernbindende protein som kan binde seg her og
beskytte mot nedbryting av mRNA. Dette proteinet er aktivt uten jern, og blir inaktivert av jern. Med
nok jern i cellen vil altså TfR mRNA bli nedbrutt, reseptoren blir ikke laget, og cellen tar ikke opp jern.
Uten jern vil det jernbindende proteinet vær aktivt, beskytte mRNA, TfR blir laget, og cellen tar opp
jern. Det AU-rike området av TfR mRNA kalles IRE, iron response element .
siRNA (W) og RNAi (W)
I 1998 ble det oppdaget at dobbelttrådet RNA som ble ført inn i celler kunne føre til at gener med
samme basesekvens som det innførte RNA ble skrudd av. Det som skjedde var at mRNA ble
degradert. Mekanismen involverer såkalt siRNA (small interfering RNA ), og fenomenet kalles RNAi
(interference) . I 2002 var siRNA "årets molekyl" i Science. Dette virker slik (se fig. 8.25):
1 Dobbelttrådet RNA som kommer inn i cellen blir bundet av et eget enzym, en RNase som kalles
Dicer.
2 Dicer kutter dobbelttrådet RNA i små biter, vi har fått siRNA.
3 siRNA bindes til et annet protein, gjøres enkelttrådet, og vi får et RNA-proteinkompleks som kalles RISC (RNA induced silencing complex).
4 RISC-komplekset binder seg til en komplementær RNA i cellen (f.eks. mRNA).
5 mRNA blir kuttet i biter, blir nedbrutt.
Kilden for det opprinnelige dobbelttrådete RNA kan være mRNA, RNA-virus eller fremmed DNA.
Resultatet er, som vist over, at dette RNA blir ødelagt. Denne mekanismen kan derved beskytte mot
fremmed RNA, f.eks. virus, og det kan skru av gener ved å ødelgge mRNA. Det er den spesifikke
RNAasen dicer og RISC-proteinet som er kjernen i denne prosessen.
miRNA
Et liknende fenomen er miRNA (microRNA) . Dette er små RNA-molekyler på ca. 22 baser som er
kodet av cellens eget DNA. Disse kan foldes tilbake på seg selv og danne hårnåler , som er
dobbelttrådet RNA (se fig. 17.5). Dette blir utsatt for enzymet DICER, som lager kutt i det. Deretter
kan miRNA, sammen med RISC, binde seg til komplementært mRNA og hindre dette i å bli uttrykt.
Mekanismen for dette er antakelig at den binder seg til mRNA og hindrer translasjon.
miRNA har vært mest studert i modellorganismer (planter, nematoder, fluer), men de spiller også en
rolle hos mennesker og andre virveldyr. Det blir stadig identifisert nye miRNA-typer, også hos
mennesker, antallet har passert mange tusen. Siden miRNA kan utøve en funksjon, kan man kalle
DNA-sekvensen som gir miRNA for et gen. I så fall kan vi få en stor økning i antallet gener, nemlig
miRNA-gener. Disse genene har for øvrig allerde fått betegnelsen MIR.
Denne effekten av dsRNA i en celle kan bli utnyttet innen forskning og medisin til å skru gener av etter
ønske (gene "knockdown"). Dette kan tenkes brukt både i studier av gener, innen genterapi og som
antivirusmiddel, f.eks. mot HIV. Denne teknologien har vært i sterk utvikling de siste årene.
Se kap. 17.4.4.
8.8.6 Alternative mRNA
Kartleggingen av det humane genom har vist at det finnes flere ulike mRNA (og derved proteiner) enn gener. En forklaring på dette er at ett gen kan gi flere ulike mRNA-typer, og derved flere ulike proteiner. De ulike alternativene kan bli brukt
a på ulike tidspunkt i cellens utvikling
b i ulike vev i kroppen
c i ulike organeller i cellen
Alternative mRNA kan dannes på flere måter:
1 alternative promotere
2 alternativ spleising av eksoner
3 alternativ polyadenylering
4 RNA redigering (editing)
1 Alternative promotere
Ett av de største kjente genene er DMD-genet, det er 2400 kb stort og har 79 eksoner (om
sykdommen DMD, se kap. 20.4). Dette genet har åtte ulike promotere som blir brukt i ulike celler/vev i
kroppen. fire av disse promoterne er plassert i 5'-enden av genet, slik at alle 79 eksoner blir lest.
Disse gir bare litt ulike proteiner. En av disse fire promoterne brukes i muskelceller. De fire andre
promoterne er plassert inne i genet og blir brukt i andre deler av kroppen. Den "siste" promoteren er
plassert ved ekson 63, slik at bare de siste 17 eksonene blir lest.
2 Alternativ spleising av eksoner
Vi kan tenke oss et gen som består av fem eksoner, E1, E2 ,E3, E4 og E5. Normalt skal mRNA inneholde sekvensene E1-E2-E3-E4-E5. Men det kan også tenkes at eksonet E2 kobles direkte sammen med E5, slik at mRNA inneholder sekvensene E1-E2-E5. Vi vil få to alterrnative polypeptider.
Vi har nevnt at ett ekson noen ganger kan kode for ett proteindomene, altså en polypeptiddel som folder seg unikt, og som ofte har en spesiell funksjon. Ved alternativ spleising kan proteindomener settes sammen på ulike måter og gi proteinet ulike funksjoner.
Et eksempel på alternativ spleising er genet i Rhesus C/E-systemet. Dette har ti eksoner, og disse kan spleises på tre ulike måter, slik at vi får ulike membranproteiner, med ulike antigene egenskaper (se 13.6.2).
Hvis et av de berørte eksonene inneholder signaler for proteinlokalisering (se 8.6.2), kan alternativ spleising medføre at samme protein kan få ulike "adresselapper".
Det er antydet at halvparten av våre gener er gjenstand for alternativ spleising, og derved gir mer enn
ett proteinprodukt.
3 Alternativ polyadenylering
I genene for antistoff (immunglobulin, Ig) finner vi to poly(A)-seter, pA1 og pA2, som vist i fig.
8.27.Mellom disse er det en sekvens M som koder for et transmembrandomene. Hvis pA2 blir brukt
får vi et langt transkript som inneholder M, og proteinet vil bli bundet i membranen, noe som skjer i
B-celler. Hvis pA1 blir brukt, vil M ikke bli transkribert, og proteinet blir skilt ut som fritt antistoff, noe
som skjer i plasmaceller. I utgangspunktet (i B-celler) er det pA2 som blir brukt. Hvis B-cellen blir
stimulert og utvikler seg til en plasmacelle, vil den lage et protein som binder seg til pA2 og blokkerer
denne, og da vil pA1 bli brukt. Se også kap. 22 om immunforsvaret og dets gener.
8.8.7 X-inaktivering
Kvinner har dobbel dose av alle gener på X-kromosomet , mens menn bare har enkel dose. Man skulle derved tro at kvinner produserte mer av genproduktene fra X-kromosomet enn menn, men slik er det ikke. I kvinnens celler vil det ene av X-kromosomene være inaktivert . Derved vil kvinner bare ha ett aktivt X-kromosom, slik som menn. Hvilket av kvinnens X-kromosomer som er inaktivert, varierer fra celle til celle. Hvis hun er heterozygot, vil derved begge allelene bli uttrykt, men i ulike celler. Dette medfører at kvinner som er heterozygote bærere av et recessivt kjønnsbundet sykdomsgen (XA Xa), kan vise tegn til sykdommen. Dette kan skje hvis kun det defekte Xa-allelet blir uttrykt i mange naboceller i en avgrenset del av et organ, mens XA-allelet er inaktivert.
Det X-kromosomet som er inaktivert vil bli meget sterkt kondensert, som heterokromatin. Det vil derfor kunne ses i mikroskopet, og kalles et Barrlegeme . Det er et eget område på X-kromosomet som gjør at det ene kromosomet blir pakket og inaktivert. I dette området finnes genet Xist (X-inactivation specific transcript). Dette genet koder for et RNA-produkt som antakelig binder seg til det ene X-kromosomet, og medfører at dette blir pakket. Her har vi altså nok et eksempel på et gen som ikke koder for noe protein (ncRNA), der RNA er det funksjonelle produkt.
Inaktiveringen av den ene X-en skjer på et tidlig stadium i embryoutviklingen, da det er noen tusen
celler stort. Det er tilfeldig hvilket X som blir inaktivert i en celle. Når denne deler seg videre, beholder
dattercellene samme X aktivt og inaktivt.
Imprinting kan oppfattes som en form for genregulering. Dette blir tatt opp i kap. 20.1.
8.9 SIGNALOVERFØRING
Fra Biocarta Indiana RPI
Det er mange ytre miljøfaktorer eller eksterne stimuli som kan påvirke aktiviteten til våre gener, f.eks. næringsforhold, infeksjoner, psykiske faktorer osv. Denne påvirkningen kan skje gjennom hormoner, vekstfaktorer og andre signalstoffer. Hormoner skilles ut av egne endokrine kjertler, og transporteres med blodbanen. Vekstfaktorer er polypeptider som kontrollerer cellenes vekst og differensiering, og som skilles ut fra celler i nærheten av der de skal virke
Disse signalstoffene utøver sin virkning ved å binde seg til egne reseptorer. (hormonreseptorer)
8.9.1 Fettløselige hormoner (fig. 8.29) MAX animasjon MAX animasjon (enklere)
Noen hormoner er fettløselige, og kan derfor passere en cellemembran. Blant disse hormonene finner vi tyroksin fra skjoldkjertelen (thyroidea) og alle steroid - hormon ene. Blant steroidhormonene finner vi mange kjønnshormoner (østrogen, testosteron m.fl.) og glukokortikoidene fra binyrebarken (kortisol m.fl.).
Steroidhormonene passerer cellemembranen, og binder seg til egne steroid reseptorer inne i cellens
cytoplasma. Østrogen binder seg til en østrogenreseptor, kortisol binder seg til
glukokortikoidreseptoren osv. Reseptoren er et protein som cellen selv produserer. Når reseptoren
har bundet hormonet, vil den forandre struktur, og bli aktivert. Det er vanlig at reseptoren danner en
dimer fra to monomerer når den blir aktivert. Den aktiverte respetoren utøver sin funksjon inne i
cellekjernen, som en transkripsjonsfaktor/aktivator. På denne måten vil disse hormonene indirekte
fremme transkripsjonen av bestemte gener. Det DNA-området som binder en slik aktiv
hormonreseptor kalles HRE, hormonresponselement. HRE inneholder ofte en omvendt repetert
enhet, f.eks:
5'-NNNNAGTCCANNNTGGACTNNN-3'
3'-NNNNTCAGGTNNNACCTGANNN-5'
Reseptordimeren binder da to like DNA-områder, på motsatte tråder.
Ett bestemt hormon, f.eks. østrogen, har sitt eget responselement HRE (DNA-område), men det kan være over 100 ulike gener som har dette elementet, og som derved blir påvirket av østrogen.
Det finnes mange ulike steroidreseptorer, og de utgjør en stor proteinfamilie. Disse proteinene har to viktige domener, et hormon (ligand)-bindende og et DNA-bindende. Spesielt i det siste finner man stor grad av homolgi mellom ulike reseptorer. Det er av typen sinkfinger (fig. 4.10).
Noen hormoner binder sin reseptor i kjernen, f.eks. tyroxin. Disse kjernereseptorene virker ikke direkte som transkripsjonsaktivatorer. De kan bindes til DNA både med og uten hormon tilstede. Men når de har bundet sitt hormon, vil de også binde til seg andre proteiner som er koaktivatorer, jfr. fig. 8.20. Uten hormon kan de i noen tilfeller virke som repressorer og hindre transkripsjon, f.eks. reseptoren for tyroidhormoner.
Også kjernereseptorene utgjør en proteinfamilie, og disse har dessuten likhet med
steroidreseptorene. De tilhører samme storfamilie, kjernereseptorfamilien (nuclear receptor family).
Det er kjent mer enn 50 proteiner i denne familien hos mennesker.
8.9.2 Vannløselige signalstoffer
Signalstoffer som kan ikke passere den hydrofobe cellemembranen, virker gjennom en membranbundet reseptor og ett eller flere mellomledd. Blant hormonene i denne gruppen finner vi adrenalin og peptidhormonene insulin, glukagon og veksthormon. Vekstfaktorene EGF (Epidermal Growth Factor) og PDGF (Platelet-Derived Growth Factor) og cytokiner er også signalstoffer som må binde seg til en membranreseptor på cellens utside.
Signalstoffene kan ellers være av mange typer, og de kan ha ulik kjemisk natur. De kan komme fra
nerveimpulser, og kan skyldes smerte, lukt, syn, hørsel m.m.
Reseptoren som mottar og viderefører disse signalene kan deles i to hovedgrupper:
a G-protein-koblede reseptorer
b Katalytiske resptorer
Fosforylering
Mange av trinnene i signaloverføringen består av fosforylering/defosforylering av proteiner. La oss derfor se litt generelt på hva dette innebærer.
Mange proteiner vil forandre sin aktivitet når de blir fosforylert (mottar en fosfatgruppe), noen blir aktivert, andre inaktivert. Dette er en måte å regulere deres aktivitet på. De enzymene som henger på en fosfatgruppe kalles kinaser , og siden det er proteiner som blir fosforylert, kalles de protein kinaser. De aminosyrene som mottar fosfatgruppen er enten serin/threonin eller tyrosin. Enzymene heter da f.eks. protein tyrosin kinaser . For å henge på en fosfatgruppe trengs ATP, som da blir hydrolysert til ADP (evt. GTP/GDP).
En fosfatgruppe i et protein har to negative ladninger, og den kan danne mange nye
hydrogenbindinger til andre sidegrupper i proteinet. Dette forklarer at mange proteiner forandrer
tertiærstruktur når de blir fosforylert. Denne forandringen kan endre proteinets aktivitet fullstendig.
Protein kinasefamilien. I dette kapittelet møter vi fire grupper av protein kinaser, nemlig tyrosin
kinaser, reseptor kinaser, MAP kinaser og cyclinavhengige kinaser (cdk-er). Alle disse har en viss
grad av homologi, og de utgjør en stor familie av proteiner. Genene for disse protein kinasene utgjør
da en stor genfamilie.
Enzymer som fjerner en fosfatgruppe fra et protein kalles protein fosfataser. De gjør det motsatte av
protein kinasene, og de kan spille en liknende regulerende rolle.
2a G-proteinkoblede reseptorer
Signaloverføring fra RPI
cAMP-kaskaden (fig. 8.31) MAX animasjon
Adrenalinreseptoren er et eksempel på en G-protein-koblet reseptor. Den er vist skjematisk i fig. 8.32. Den har tre deler (domener). Én del stikker ut fra cellen, dette er det hormon( ligand )-bindende domenet. En annen del går gjennom membranen , typisk sju ganger (transmembrandomene). Den tredje delen stikker ut i cellens indre (cytosol), der den utøver sin aktive rolle.
Denne gruppen reseptorer som krysser membranen sju ganger kalles også for 7TM (seven transmembrane protein) . Dette utgjør en meget stor proteinfamilie.
Når adrenalinreseptoren binder adrenalin på utsiden av cellen, vil den forandre konformasjon på innsiden. Dette vil aktivere et såkalt G-protein (et GTP-bindende protein). G-proteinet sitter kovalent bundet til membranen, og det består av tre subenheter, a, b og g. I den passive formen er det bundet GDP til a-subenheten. Når G-proteinet blir aktivert av reseptoren, blir GDP samtidig byttet ut med GTP, og dette fører til at subenheten a blir spaltet fra resten, bg. Den frigjorte a-delen av G-proteinet, G(a), vil aktivereenzymet adenylat syklase (AC), som også er membranbundet. Det krysser membranen mange ganger, men har to katalytiske domener på innsiden av cellen. Den katalytiske virkningen av AC er dannelsen av cAMPfra ATP (se fig. 6.7).
G(a) går tilbake til sin inaktive tilstand sammen med bg.Dette skyldes at GTP i den aktive formen blirhydrolysert til GDP + Pi. G-proteinet er faktisk selv en GTP-ase. G-proteinet må altså bli stimulert igjen og igjen for fortsatt å ha sin virkning.
cAMP bringer signalet fra hormonet videre inn i cellen, og kalles derfor en second messenger , det er en intracellulær sekundær budbringer. cAMP utøver sin virkning ved å aktivere en cAMP-avhengig protein kinase ( PKA ). PKA består av fire subenheter, R2C2. R-ene er regulerende og C-ene er katalytiske, dvs. de har kinaseaktivitet. Så lenge disse henger sammen, vil det aktive setet til C være bundet til R, og derved skjult. Begge R-enhetene kan binde to cAMP, de vil da forandre konformasjon, og R og C skiller lag. Da vil C-proteinene bli fri, og siden de har protein kinaseaktivitet, kan de fosforylere andre proteiner. Som allerede omtalt vil fosforylering ofte endre konformasjonen og derved aktiviteten til et protein. En liten økning av konsentrasjon av cAMP fører til at PKA blir aktivert, så dette er en meget følsom signaloverføring. Selv et svakt signal kan gi en stor effekt; signalet blir da amplifisert.
Én virkning av PKA er at den stimulerer nedbrytning av glykogen i cellen til glukose, og omvendt inhiberer oppbygningen av glukose til glykogen. Dette gjør PKA ved å fosforylere de to enzymene glykogen syntase og glykogen fosforylase . På denne måten er adrenalin et "kamphormon", som aktiverer cellens energiarsenal.
Men den aktiverte PKA kan også vandre inn i cellekjernen der den fosforylerer en
transkripsjonsfaktor, som da blir aktiv. Derved har hormonet, gjennom mange mellomledd, påvirket
genekspresjonen. Den aktiverte C-subenheten av PKA vil bli inaktivert av en gene protein fosfatase,
slik at virkningen av signalet ikke er permanent.
Vi har da denne kjedereaksjonen fra hormon til gen:
Signalstoff, f.eks. hormon/vekstfaktor
® Reseptor
® G-protein
® Adenylat syklase
® cAMP
® Protein kinase A
® Transkripsjonsfaktor
® Transkripsjon av gen.
De DNA-sekvensene som kan binde slike cAMP-induserte transkripsjonsfaktorer kalles CRE
(cAMP-Responsive Element). Selve transkripsjonsfaktoren som binder CRE kalles CREB, der B står
for bindende protein.
Fosfolipid - Ca2+-kaskaden (fig. 8.33) MAX animasjon
Noen G-proteiner virker gjennom et annet signalsystem enn cAMP. Dette starter også med at den aktiverte reseptoren forandrer et G-protein. G-proteinet kan aktivere enzymet fosfolipase C (PLC) . PLC katalyserer hydrolysen av et spesielt fosfolipid i cellemembranen, som inneholder inositol (et sukkerliknende molekyl). Vi får da frigjort stoffet inositol-1,4,5-trifosfat (IP3) og diacylglyserol (DAG) , som sitter igjen i membranen. Begge disse stoffene virker som budbringere, og aktiverer protein kinase C (PKC).
PKC er normalt løst i cellen, men vil binde seg til DAG i cellemembranen, der den forandrer konformasjon. Men for å bli aktiv trenger den også å binde Ca2+-ioner, og det er her IP3 kommer inn. IP3 som ble frigjort fra cellemembranen vil påvirke ionekanaler i ER-membranen, slik at Ca2+-ioner slippes ut i cytoplasma. Normalt inneholder cytoplasma nesten ikke Ca2+, mens lumen i ER inneholder betydelig mer. Ca2+-ioner som kommer ut i cytosol vil, sammen med DAG, aktivere PKC (C for Ca2+).
PKC er en protein kinase som har en liknende effekt som PKA (som er omtalt), som altså aktiverer transkripsjonsfaktorer, og derved gener.
De frigjorte Ca-ionene har for øvrig mange virkninger i cellen, bl.a. på glykogennedbrytning og
muskelkontraksjon i glatte muskelceller.
PLC og dette signalsystemet kan for øvrig også bli aktivert av reseptor tyrosin kinaser (neste punkt).
2b Katalytiske reseptorer (fig. 8.34)
Vekstfaktorene EGF og PDGF, hormonet insulin og veksthormon binder seg til en reseptor som selv har protein kinaseaktivitet. De kalles reseptor tyrosin kinaser fordi de fosforylerer tyrosiner på andre proteiner. Disse reseptorene har en hormonbindende del på utsiden, de krysser membranen bare en gang (en a-helix), og på innsiden sitter det katalytiske området av reseptoren. Mange av disse reseptorene er dimerer, mens andre blir dimerer når de binder sin ligand.
Veksthormon har en reseptor som er en monomer. To slike monomerer går sammen til en dimer når hormonet binder seg, mens både insulin, EGF og PDGF har en reseptor som er en dimer hele tiden.
Når reseptoren binder sin ligand, blir den katalytiske innsiden automatisk fosforylert, og de får da sin
enzymatisk aktivitet. Reseptor tyrosin kinasene kan binde til seg og aktivere en lang rekke andre
proteiner, de setter i gang en kaskade, en kjedereaksjon.
En av disse kaskadene kalles MAP kinaseveien ( MAP = mitogen activated protein kinases ). Her vil først proteinet Ras bli aktivert av reseptoren (via flere assosierte proteiner). Ras er en gruppe proteiner som binder GDP i pasiv form, og blir aktiv når GDP blir byttet ut med GTP. De har en viss likhet med G(a) i cAMP-kjeden, og kalles derfor små G-proteiner .
Aktivert Ras vil aktivere Raf, som igjen aktiverer (fosforylerer) MEK , som fosforylerer ERK (extracellulær signal regulating kinase). Til slutt kan ERK gå inn i cellekjernen og fosforylere flere viktige transkripsjonsfaktorer. Disse transkripsjonsfaktorene styrer aktiviteten til rundt 100 sentrale gener, blant disse er det gener for transkripsjonsfaktorer! Dette signalsystemet har derved en dyptgående effekt på cellens videre utvikling. Kaskaden i dette systemet inkluderer altså disse leddene:
Vekstfaktor ® Reseptor tyrosin kinase ® Ras ® Raf ® MEK ® ERK ® Transkripsjonsfaktor ® gen.
Onkogener
Som vi har sett, er det en rekke proteiner som er involvert i denne signaloverføringen fra
hormon/vekstfaktor til genregulering. Vi kan dele disse inn i fire kategorier:
1 Vekstfaktorer.
2 Vekstfaktorreseptorer.
3 Proteiner involvert i intracellulær signaloverføring: G-protein, adenylat syklase, Ras, en lang rekke protein kinaser (PKA, PKC) m.fl.
4 Transkripsjonsfaktorer, dvs. DNA-bindende proteiner.
Alle disse proteinene blir naturligvis kodet av egne gener. Mutasjoner i disse genene kan gjøre at
genreguleringen ikke fungerer som den skal. I noen tilfeller kan dette medføre ukontrollert cellevekst,
og kreft. Flere av disse genene er derved kreftrelaterte gener, såkalte onkogener . Dette blir nærmere
omtalt i kap. 24.3.
8.10 REPLIKASJON
Fra Oregon
Replikasjonen hos eukaryote følger samme hovedmønster som vi lærte i kap. 7. Det finnes minst ni
DNA polymeraser, som kalles a, b, g osv., d er den viktigste. Det er mange replikasjonsori langs hvert
kromosom.
8.10.1 Telomer og telomerase
Kromosomene i eukaryote celler er lineære, og har derved to ender. Ved replikasjonen representerer dette et problem. Hva skjer når replikasjonen kommer helt til enden? Ledende tråd-syntese kan tenkes å fortsette helt til siste base på templaten. Men for etternølertråden ( lagging strand ) blir dette vanskelig. Her lages det jo primere etter hvert, og den siste av disse vil ikke kunne lages helt i enden. Dessuten er primeren RNA, og denne må erstattes med DNA etterpå av Pol I, slik det ble beskrevet i 7.2.5. Dette kan ikke skje helt i enden (se fig. 8.33). Det medfører at vi mister en liten bit av DNA i begge ender for hver replikasjonsrunde. Det er antydet at det er 8-12 baser i enden som går tapt på denne måten for hver replikasjon. Hvis vi tenker oss noen tusen replikasjonsrunder fram i tid, så vil altså kromosomet bli mange tusen baser kortere. Etter mange generasjoner ville kromosomene ha mistet viktige deler (husk at kromosomene leveres videre til neste generasjon). Dette har naturen funnet en løsning på.
Det viser seg at endene på ulike eukaryote kromosomer har store likheter, og de kalles telomerer . En typisk telomer kan bestå av rundt 1000 repetisjoner av den samme korte DNA-sekvensen, totalt ca. 15000 baser. Telomersekvensen er relativt lik hos ulike arter, hos mennesker er den TTAGGG. Dette er ikke kodende eller genliknende DNA. Det finnes et enzym, telomerase , som kan forlenge telomeren, og derved kompensere for det tapet som er nevnt. La oss se hvordan dette kan skje.
Som vist i fig 8.33 så er det i forbindelse med lagging strand syntese at dette problemet oppstår. Her
vil vi få et enkelttrådet stykke av 3'-enden av templat-DNA, som utgjør noen repetisjoner av
telomersekvensen 5'-TTAGGG-3'. Telomeraseenzymet inneholder selv en RNA-tråd på ca. 450 b.
Her finner vi repetisjoner av sekvensen 3'-AAUCCC-5' som er komplementær til telomeren.
Telomerase-RNA vil binde seg til den utstikkende 3'-enden av telomeren, og kan derved fungere som
templat for forlengelse av denne. Se fig. 8.34. Når én telomersekvens er laget, kan templaten flytte
seg seks baser, og det samme kan gjenta seg. I denne prosessen blir RNA brukt som templat til å
lage DNA. Dette er det omvendte av transkripsjon, og blir derfor kalt revers transkripsjon. Når
3'-enden av telomeren er blitt en del forlenget, kan denne brukes som templat for syntese av lagging
strand, ved hjelp av primase og nye primere.
Kimbanen
Enzymet telomerase er aktivt i kimceller ( germ cells ), dvs. celler som skal utvikle seg til sædceller eller eggceller. Dette er avgjørende, for det er kromosomene i disse cellene som skal gå videre til neste generasjon. I vanlige kroppsceller ( somatiske celler ) er ikke enzymet aktivt. Det betyr at kromosomene her blir kortere og kortere for hver celledeling. Etter noen tusen celledelinger vil kromosomene være mange tusen baser kortere. Dette kan være medvirkende til aldring og død.
I kreftceller er telomerase aktivt. Kreftceller deler seg som kjent ukontrollert, og telomeraseaktiviteten
kan være med på å gjøre dem "udødelige". Denne aktiviteten kan også hjelpe oss til å oppspore
mulige kreftceller blant vanlige somatiske celler.
Reparasjon
Telomerendene kan også ha en annen funksjon. Ved store DNA-skader kan det oppstå dobbelttrådbrudd, slik at et kromosom blir kuttet i to. Dette kan bli reparert ved at de to bruddendene blir limt sammen igjen. Dennaturlige enden av kromosomene vil ha telomersekvensene, noe som gjør at de ikke blir forvekslet med bruddendene av DNA.
8.10.2 Kontroll av cellesyklus MAX Animasjon Kimball
Fra Biocarta
Cellesyklus (cell cycle) består av fasene G1, S, G2 og M (se fig. 1.3). Replikasjonen foregår i S-fasen (S=syntese), mens M-fasen er mitosen, fordelingen av kromosomene på dattercellene. De to G-fasene er mellomrom (gap).
Det er viktig å forstå hvorfor cellesyklus må reguleres. Replikasjon og celledeling er en krevende og
"kostbar" operasjon. Denne operasjonen må ikke settes i gang før cellen selv er "klar", og
dessutenorganismen har behov for det.
Her er noen sentrale forutsetninger for at cellesyklus skal få fortsette:
1 Cellen må ha et gunstig miljø, den må bl.a. ha nok av proteiner og celleorganeller (være stor nok) og ha nok næring.
2 Cellens DNA må ikke på noe tidspunkt være skadet.
3 Organismen må ha behov for nye celler.
Det er særlig tre "sjekkpunkter" hvor dette blir kontrollert, ett før replikasjonen i S-fasen får starte (i
G1), ett før mitosen i M-fasen får startet (i G2), og ett i mitosen før den blir fullført (se fig. 8.37).
Cycliner og cdk-er
Det er egne proteiner som "vokter" sjekkpunktene, og evt. tillater at cellesyklus får gå videre. Disse
proteinene er komplekser av en cyclin og en cdk (cyclinavhengig kinase , d = dependent). Cycliner er
proteiner der mengden svinger i takt med cellesyklus; derfor navnet. Det er flere typer av cycliner og
cdk-er. Cyclinene er nødvendig for å aktivere en cdk, og denne kan aktivere transkripsjonsfaktorer
ved å fosforylere dem, og disse vil aktivere de genene som trengs for å lage
"replikasjonsmaskineriet". Noen proteiner virker aktiverende og andre hemmende på cellesyklus.
Dette er det generelle bildet, og man kjenner nå en masse cycliner, cdk-er og andre proteiner. To
konkrete eksempler er tatt med under, nemlig pRb (fig. 8.38) og p53 (fig. 8.39).
Sjekkpunkt G1 (før replikasjon). Gunstig miljø? Sjekkpunkter
Replikasjonen av alle kromosomene er en enorm prosess, som krever mye energi, masse
byggestener, enzymer og andre proteiner osv. Den må ikke starte før cellen har kontrollert at den har
nok av alt dette eller tilgang til det (gunstig miljø). Det må også være slik at DNA ikke er skadet.
Replikasjonen starter i flere orilangs kromosomene. Her vil det samle seg lang rekke proteinfaktorer
som til slutt gjør at replikasjonen starter. I sjekkpunktet G1 er det også cycliner og cdk-er som deltar,
de kalles da S-fase cycliner og Cdk-er. Eksempelet pRB under er et eksempel på kontroll i G1.
Sjekkpunkt G2 (før mitosen). Er DNA uskadd?
Mitosen krever at DNA pakkes, at kjernemembranen oppløses, at spindeltråder lages osv. Hvis cellen skal gå inn i mitose, er det viktig at alt DNA er ferdig replikert og et det er minst mulig feil og skader. Dette blir kontrolert i G2, før inngangen til M-fasen.
I sjekkpunktet G2 er det et kompleks av cyclin og M-Cdk som kalles MPF, M-fase promoting factor.
Dette komplekset må gjennom en prosess av fosforyleringer og defosforyleringer før det er aktivt. Det
er altså en lang rekke regulerende proteiner som skal til for at cellesyklys skal gå videre til M-fasen.
Noen proteiner er aktivernede, andre er inhiberende.
Sjekkpunkt M (før splitting). Er spindel OK?
Før anafasen skal kinetochoren i alle kromosomer være festet til spindel, slik at alle søsterkromatider
blir fordelt riktig til dattercellene. Dette blir kontrollert før denne splittingen får skje.
pRb
(retinoblastom) er et protein på 110 kdal. Vi skal se hvordan dette proteinet kan bremse cellesyklus i
G1/S (fig. 8.38). S-cycliner er avgjørende for oppstart av replikasjonen i S-fasen, ved at de binder seg
til og aktiverer en G1-Cdk. E2F er en transkripsjonsfaktor for for S-cyclingenene, og stimulerer derved
cellesyklus. pRB kan binde seg til E2F og inaktiverer denne, og har derved en bremsende effekt på
celleyklus. I sin aktive form er pRB ikke fosforylert. Hvis den blir fosforfylert blir den inaktiv, og da vil
E2F bli fri og sette i gang cellesyklus. Fosforylering av pRb kan bli gjort av vekstfaktorer som
stimulerer celledeling. RB-genet er et kreftgen, nærmere bestemt et tumor supressorgen (se kap.
24.4).
p53
er også et protein som har en bremsende effekt på cellesyklus (fig. 8.39). Det er en transkripsjonsfaktor, og fører til produksjon av et annet protein, p21. Proteinet p21 vil hemme en S-Cdk som stimulerer cellesyklus på et kritisk punkt i G1/S-fasen. Uten p53/p21 vil cellesyklus gå videre. Dette er normalt, fordi det lages lite av p53.
Ved DNA-skade vil mengden av aktiv p53 øke betydelig. Normalt vil p53 bli bundet til annet protein, Mdm2, som gjør at det blir brutt ned. DNA-skaden setter i gang produksjonen av protein kinaser som fosforylerer p53, som da blir frigjort fra Mdm2. Aktivt p53 vil så føre til at cellesyklus bremser eller stopper. Når DNA-skaden er reparert vil p53 bli defosforylert, bundet av Mdm2 igjen, og ødelagt. Cellesyklus får fortsette. I noen tilfeller kan p53 dirigere cellen mot en programmert celledød, apoptose.Dette er en meget viktig mekanisme for å unngå at kreftceller overlever.
Uten et funksjonelt p53 vil en celle med DNA-skade kunne dele seg videre. En slike celle vil da lett
kunne gi opphav til kreft.
Vekstfaktorer
Hittil har vi sett hvordan forhold i cellen selv påvirker cellesyklus. En celle er bare en del av hele organismen, og skal bare dele seg hvis organismen har behov for nye celler. Cellene rundt skiller ut vekstfaktorer og kroppen lager hormoner som påvirker cellesyklus, som vi har sett i kap. 8.9. Vekstfaktorene setter i gang en kaskade av fosforyleringer som ofte ender opp med transkripsjonsfaktorer. Her finner vi mange av proteinene som styrer cellesyklus.
PDGF (platelet derived growth factor) skilles ut fra blodplatene (trombocytter, platelets ) når disse blir skadet ved sår. PDGF binder seg til sin reseptor som bl.a. finnes på bindevev, og setter i gang kaskaden av protein kinaser. Dette vil stimulere bindevevscellene til deling, og såret gror.
EPO (erythropoietin) er et hormon som stimulerer dannelse av flere røde blodlegemer (erytrocytter)
ved å binde seg til sin reseptor i forløperen til erytrocyttene. Inntak av EPO for å øke mengden av rød
blodlegemer kunstig er et kjent dopingfenomen innen kondisjonsidrett.
9. MUTASJONER, REPARASJON Til bokens kapitteloversikt
9.1 INNLEDNING
En mutasjon er en varig forandring av arvestoffet, DNA. Med varig menes at forandringen føres videre
fra celle til celle ved kommende delinger. Hvis mutasjoner skjer i kjønnscellene, kan de bringes videre
til kommende generasjoner. Kjønnscellene kalles også kimceller, og vi snakker da
omkimbanemutasjoner ( germline ). Mutasjoner i andre celler ( somatiske celler ) vil bare få
konsekvenser for det individet der mutasjonen skjer.
Celler eller organismer med egenskaper som skyldes en mutasjon kan kalles mutanter, de med normale egenskaper kalles villtype ( wild type ). Disse begrepene brukes både om fenotype og genotype. Som oftest har vi en bestemt egenskap eller ett gen i tankene når vi bruker disse begrepene, f.eks. øyenfargen hos bananflue. Villtypen har rød øyne, fluer med hvite øyne er mutanter.
Enkle mutasjoner kan oppstå ved at det gjøres feil under DNA-replikasjonen. Det settes da inn en feil nukleotid, og dette blir ikke rettet eller reparert. Konsekvensen blir først at en av dattertrådene får en feil base. Den ene tråden med feil base vil i neste omgang gi en mutant. Dette er vist i fig. 9.1.
Mutasjoner kan også oppstå ved at DNA blir endret kjemisk ved påvirkning av mutagener.
Mutasjoner er noe som foregår spontant og naturlig, hele tiden. Mutasjonene forandrer arvestoffet, og er derved en av forutsetningene for den biologiske utviklingen på jorda, evolusjonen. Mange mutasjoner vil ikke merkes, i hvert fall ikke på kort sikt. Det vil avhenge av hvor i kromosomet mutasjonen skjer. De aller fleste mutasjoner er likevel skadelige, ofte dødelige. Det er derfor viktig for en celle å unngå mutasjoner eller å reparere dem.
Hyppigheten av mutasjoner kan øke under påvirkning av ytre miljøforhold. I moderne genteknologi kan mutasjoner introduseres bevisst og spesifikt i et DNA-molekyl, helt etter vårt ønske. Dette kalles setespesifikk mutagenese (site specific mutagenesis). Naturlige mutasjoner er derimot tilfeldige.
Noen deler av vårt DNA er naturlig utsatt for ekstra stor mutasjonshyppighet, vi taler omhypermutasjon. Genene for antistoffer er et eksempel på dette, hypermutasjoner gir en mulighet for ekstra variasjon i proteinproduktet.
HGMD = Human genome Mutation Database
Hos mennesket er det kartlagt tusenvis av mutasjoner som forårsaker sykdommer. Tabell 9.1 gir en oversikt over kjente mutasjoner bare i HBB-genet (søk på HBB) (hemoglobin, b-kjeden). Sigdcelleanemi er et skoleeksempel på hvordan en enkel mutasjon kan gi en alvorlig sykdom. En mutasjon har endret én base i b-globingenet (A ® T). Dette har endret ett kodon (GAG ® GTG), og dette har endret én aminosyre i -globin (glu ® val). Personer som er homozygote for denne mutasjonen, har sykdommen sigdcelleanemi, som er dødelig.
Mutasjoner kan være større forandringer av kromosomene, eller det kan være mindre forandringer i
basesekvensen. Rent fysisk kan enkle mutasjoner være av tre typer: substitusjon, delesjon og
insersjon:
0. Villtype
T C C T A T G C A G T A C C A G
1. Substitusjon (A ® G) T C C T A T G C A G T G C C A G
2. Delesjon (T)
T C C T A T G C A G - A C C A G
3. Insersjon (+G)
T C C T A T G C A G G T A C C A G
En basesubstitusjon blir også kalt en punktmutasjon. Kjemisk sett kan dette være av to typer.
Ved en transisjon har vi purin ® purin (f eks A ® G) eller pyrimidin ® pyrimidin (f eks C ® T).
Ved en transversjon har vi purin ® pyrimidin (f eks A ® C) eller pyrimidin ® purin (f.eks. C ® G).
Kromosommutasjoner
Vi kan få tilsvarende fenomener for hele kromosomsegmenter som de vi nå har omtalt for
enkeltbaser. Et slikt segment kan være på mange tusen baser og inneholde flere gener. Oversikten
under viser fire hovedtyper av kromosommutasjoner, eller kromosom-rearrangementer. Her er A, B, C
osv. kromosomsegmenter.
Normal: ABCDEF
Delesjon ABEF (CD mistet)
Duplikasjon ABCDBCEF (BC duplisert)
Inversjon ABDCEF (CD snudd)
Translokasjon ABEF (CD til annet kromosom)
I dette kapittelet skal vi holde oss til enkle genmutasjoner som kan forklares på det molekylære plan.
Større kromosomforandringer blir omtalt i kap. 13.4.2.
9.2 MUTASJONER, VIRKNING
La oss se på mulige konsekvenser av enkle mutasjoner. Vi skiller først og fremst mellom mutasjoner i
kodende DNA (eksoner) og ikke-kodende DNA.
9.2.1 Ikke-kodende DNA
A. Utenfor gener
Hvis en mutasjon skjer utenom et gen, vil det sannsynligvis ikke få noen konsekvens. Mesteparten av
DNA i eukaryote celler (kanskje 80 %) er slikt ikke-gen DNA.
B. Introner, UTR
En mutasjon i introner vil høyst sannsynlig heller ikke merkes. Intronsekvensene blir som kjent kuttet
bort på veien mot ferdig mRNA. For området før startkodonet i ekson 1 (5'-UTR) og etter stoppkodon i
siste ekson (3'-UTR) gjelder det samme.
Spleisested (splice site)
RNA-spleisingen er omtalt i kap. 8.4. Basene like ved ekson/introngrensen er avgjørende for at
spleisingen skjer korrekt. En mutasjon her, også på intronsiden, kan medføre feil spleising, og derved
et annet mRNA-produkt enn normalt, og et annet protein.
D. Kontrollområder
Hvis det skjer en mutasjon i et promoterområde, kan det få alvorlige følger, men dette avhenger av
hvilke baser det gjelder. Det samme kan vi si om alle andre DNA-sekvenser som har betydning for
genregulering: operator, enhancere, responselementer osv. Vi har nevnt eksempler på dette under
omtale av ulike lac-mutanter i E. coli.
9.2.2 Kodende DNA (eksoner)
For å forstå konsekvensen av mutasjoner i kodende DNA må vi kjenne til den genetiske koden, og
hvordan denne brukes ved translasjon. Dette er gjennomgått i kap. 5. Husk at den genetiske koden
viser basene i mRNA, mens vi her viser kodende DNA. Det innebærer at vi har T der hvor koden viser
U, ellers er det likt.
Tause (synonyme) punktmutasjoner
Hvis kodonet AGA forandres til AGG ved en punktmutasjon, så får det ingen betydning. Begge disse
koder for aminosyren arginin. Vi sier at mutasjonen er taus, evt. stum (silent) eller synonym (samme
betydning). Bakgrunnen for dette er at koden er degenerert. En mutasjon i tredje base i et kodon vil
svært ofte ikke bety noe. For halvparten av triplettene har tredje base ingen betydning. Studer den
genetiske kode i kap. 5, og se at dette stemmer. Noen punktmutasjoner kan gi samme aminosyre,
men med en annen tRNA. Det kan bety en forskjell i translasjonens hastighet m.m., så den er ikke
helt taus, men den er synonym.
Missense (ikke-synonyme) punktmutasjoner
De fleste punktmutasjoner vil gi en endret aminosyre, og dette kalles en missense mutasjon, eller en ikke-synonym substitusjon. Hvis AGA forandres til AGC, vil vi få serin i stedet for arginin, selv om dette er i kodonets tredje base. Forandringer i 1. eller 2. base vil nesten alltid gi en annen aminosyre. Forandringen (CTG ® CCG) gir f.eks. (Leu ® Pro).
Men selv om en aminosyre forandres, så er det ikke sikkert at proteinet mister sin normale aktivitet. Det vil avhenge av hvor i proteinet aminosyren sitter, og hvilken aminosyre den byttes ut med. Forandringer nær endene av polypeptidet har ofte minst betydning, mens forandringer i det aktive setet betyr mye. Hvis en upolar aminosyre byttes ut med en annen upolar aminosyre (Val ® Leu) betyr det kanskje lite, men hvis den byttes ut med en polar aminosyre (Val ® Asp) så kan det bety mye. Resultatet av ett aminosyrebytte kan derved være at proteinet blir helt inaktivt, eller at det får redusert aktivitet (med f.eks. 50 %), eller at det er like aktivt som normalt. Det kan til og med tenkes (unntaksvis) at det fårstørre aktivitet enn før.
En missensemutasjon (aminosyrebytte) som ikke gir noen endring av funksjon, kalles en nøytral
mutasjon.
Nonsense punktmutasjoner
Hvis kodonet CGA (ala) forandres til UGA (stopp), vil translasjonen stoppe opp, og vi får ikke laget
hele polypeptidet. Dette kalles en nonsensemutasjon, og det medfører at det ikke blir laget noe
funksjonelt proteinprodukt. Nonsensemutasjoner i E. coli ble tidligere kalt ambermutasjoner.
Små delesjoner, ny leseramme
En delesjon på én base vil forandre leserammen, slik at alle aminosyrer fra dette punktet blir forandret
(se fig. 9.3). Dette vil ganske sikkert gi et ikke-funksjonelt produkt, med mindre dette skjer helt på
slutten av proteinkoden. En ny leseramme betyr også at det normale stoppkodonet er forandret til en
eller annen aminosyre. Men det har antakelig også blitt skapt et stoppkodon et annet sted i den nye
leserammen, som avslutter translasjonen. Vi får et avkortet (truncated) protein , f.eks. slik:
ACC CCT AGG CUA AGA GCC
Thr - Pro - Arg - Leu - Arg - Ala
ACC -CTA GGC UAA GAG CC
Thr - Leu - Gly - STOPP
Øvesrt ser vi et normalt gen med leseramme som gir fem aminosyrer. Linjen under viser en delesjon
av C. Den nye leserammen gir først nye aminosyrer, deretter har vi fått et stoppkodon (UAA) i
leserammen.
En delesjon på to baser vil få tilsvarende konsekvens som én. Men hvis tre baser blir borte, vil vi bare miste én aminosyre, men beholde leserammen. Om dette får store konsekvenser eller ikke, vil avhenge av hvor dette skjer.
Små insersjoner vil ha tilsvarende virkning som små delesjoner: dvs. enten endret leseramme (en eller to baser) eller en ekstra aminosyre (tre baser).
På Internett finnes en database over kjente mutasjoner i humane gener,
HGMD ( Human Genome Mutation Database ),
se ref. bak i boken. For Hemoglobin (b)-genet, HBB, var det i mai 2002 kjent totalt 325 mutasjoner i dette genet, se tabell 9.1. HGMD oppgir også fenotypen for de ulike mutasjonene.
Substitusjonsraten, antall basesubstitusjoner som oppstår og føres videre til neste generasjon, vil bli
tatt opp i forbindelse med molekylær evolusjon, kap. 13.5.5. Vi kan foreløpig nevne at denne raten er
mye mindre i kodende DNA enn ikke-kodende. Grunnen til dette er at de fleste mutasjoner i kodende
DNA er ugunstige, og at de derved ikke blir ført videre til neste generasjon pga. negativ seleksjon.
Mutasjoner i ikke-kodende DNA vil ikke merkes på samme måte.
9.2.3 Reversjon
Tilbakemutasjon eller reversjon vil si at en mutasjon oppheves. Det kan skje på to måter, enten direkteeller indirekte. Direkte reversjon skjer ved at vi får motsatt hendelse av den opprinnelige mutasjon. Dette er fullt mulig for en punktmutasjon. Vi har kanskje hatt mutasjonen G ® A på ett bestemt sted. Ved en senere replikasjon kan vi få forandringen A ® G på samme sted i DNA. Vi har da fått tilbake originalen, dvs. villtypen.
En mutasjon ett sted kan imidlertid oppheves av en annen mutasjon et annet sted, altså indirekte. Det kalles på engelsk second site reversion. Dette kan skje på mange ulike måter.
Den negative virkningen av et aminosyrebytte ett sted kan motvirkes av et annet aminosyrebytte et annet sted i samme protein. Vi får da forandret genet, men beholder fenotypen.
Vi kan også få reversert en punktmutasjon i én triplett med en punktmutasjon i en annen base i
samme triplett. Mutasjonen (TTA ® TTT) gir forandringen (Leu ® Phe). Vi kan deretter få en ny og
annen mutasjon i samme triplett: (TTT ® CTT) som gir (Phe ® Leu). Vi får tilbake den opprinnelige
aminosyren leucin.
Nonsense supressormutanter
Vi tenker oss at vi har følgende punktmutasjon i et gen: (AAG ® AUG) som gir oss (Lys ® stopp). Dette er en nonsensemutasjon som gir tidlig stopp av translasjonen.
Men den samme cellen kan inneholde en annen mutasjon, nemlig i genet for tRNA (tyr). Dette tRNA har antikodon 3'-AUG-5', og vi tenker oss at mutasjonen har forandret dette til 3'-AUC'5'. Dette betyr at vi har fått et tRNA som passer til stoppkodonet UAG (se fig. 9.4).
Denne tRNA-mutasjonen medfører at den første nonsensemutasjonen (Lys ® stopp) blir opphevet. I stedet blir det satt inn aminosyren tyrosin. Dette er jo også feil, men kanskje mindre skadelig enn en stopp av translasjonen. Mutasjonen i tRNA-genet opphever virkningen av nonsensemutasjonen, og den kalles derfor en nonsense supressormutasjon.
Problemet med denne type tRNA-mutasjon er selvsagt at cellen nå kan få satt inn en aminosyre også
der det normalt skal være stopp pga. UAG. Nonsense supressormutasjoner gir mye feil ved
translasjonen, men celler med en slik mutasjon kan likevel overleve. Dette har sammenheng med at
det er flere kopier av disse tRNA-genene, og bare ett av dem er mutert.
9.2.4 Betingede og absolutte mutanter
Betingede mutanter vil si at virkningen av en mutasjon bare viser seg ved visse betingelser, ellers er
cellen normal, lik villtype. Det vanlige er absolutte mutanter.
Temperatursensitive (Ts) mutanter er en form for betingede mutanter. Det innebærer at mutasjonen
bare viser sin virkning over en viss temperatur. Et eksempel kan illustrere dette.
En E. coli-celle som er leu har en mutasjon i leu-genet, slik at den ikke kan lage aminosyren leucin. Den kan da bare vokse hvis næringsmediet inneholder leucin. På minimalmedium, som ikke inneholder leucin, vil den ikke vokse. Men hvis dette er Ts-mutanten leu(Ts), så kan den likevel lage leucin hvis temperaturen er under 34 °C. Den vil da være som en normal E. coli-celle (villtype) og vokse på minimalmedium. Men over 39 °C vil den ikke vokse, for da har den mutantens fenotype (fig. 9.5).
Slike mutanter kan være nyttige, idet vi kan skru dem av og på ved å velge temperatur. Under 34 °C er de villtype, over 39 °C er de mutanter (fenotypisk).
Mange mutasjoner kan være dødelig, og de kalles letale mutasjoner.
9.3 MUTAGENER
Under DNA-replikasjonen gjøres det av og til feil som ikke blir rettet opp (se fig. 9.1). Dette gir en
vissmutasjonsfrekvens (mutasjonshyppighet) som er naturlig. Men enkelte stoffer kan øke denne
frekvensen, slik at det skjer flere mutasjoner. Slike stoffer, som forårsaker mutasjoner, kalles
mutagener . I tillegg vil visse typer stråling, samt høye temperaturer kunne gi mutasjoner. Vi skal
omtale 5 ulike kilder for mutasjoner:
1 Baseanaloger
2 Basereaktive stoffer
3 Interkalerende stoffer
4 Varme
5 Stråling
9.3.1 Baseanaloger
Hos alle de fire basene finner vi et fenomen som kalles keto/enol tautomeri (kan evt. kalles
amino/imino). Det innebærer at en ketogruppe (-NH-CO-) kan omdannes til en enolgruppe
(-N=COH-). Se minifigur og fig. 9.6. Hos alle basene er keto/amino-formen dominerende, og det er
denne vi pleier å tegne. Den sjeldne enol/imino-formen vil ha andre hydrogenbindingsevner enn
ketoformen. Tymin binder normalt adenin (T=A), mens enolformen av tymin kan binde guanin (TE ºG)
(fig. 9.6).
5-bromuracil, 5BU
Baseanaloger er stoffer som likner på en av de fire DNA-basene, men som avviker litt. 5-bromuracil (5BU) er en slik. Den er helt lik tymin (T), bortsett fra at metylgruppen (-CH3) er erstattet med brom (-Br). 5BU oppfører seg normalt akkurat som T, og binder seg til A: (5BU=A), mens enolformen binder seg til G (5BUEºG) (fig. 9.6). Hos 5BU er enolformen mye mer vanlig enn hos de vanlige basene, likevekten keto ®¬ enol (5BU ®¬ 5BUE) vil være mer forskjøvet mot enolformen.
Hvis det finnes 5BU i en celle, så vil den gå inn og ta den samme plassen som T under replikasjonen, og binde seg til A (5BU=A). Ved neste replikasjon vil denne 5BU være en del av templattråden. Da er den kanskje i enolformen, og binder da G (Gº5BUE). Etter dette igjen vil denne G binde til seg C (CºG). Resultatet er at vi har fått byttet et AT-par med et GC-par, slik:
(A=T) ® (A= 5BU) ® (Gº5BUE) ® (GºC).
2AP
En annen baseanalog er 2-aminopurin (2AP), som kan erstatte A. 2AP vil normalt binde T, men av og til C. Vi kan da få følgende forandring:
(A=T) ® (2AP=T) ® (2AP-C) ® (GºC).
9.3.2 Basereaktive stoffer
Noen stoffer kan reagere med en av de fire basene A, G, C eller T i DNA, slik at de endrer seg rent
kjemisk, og derved også endrer sine H-bindende egenskaper.
Deaminering
Nitritt eller salpetersyrling (NO2/ HNO2) er et slikt basereaktivt stoff. Det fører til en oksidativ deaminering, dvs. at en -NH2-gruppe blir erstattet med en =O-gruppe (fig. 9.7). Dette kan f.eks. gjøre om adenin (A) i en DNA-tråd til hypoxantin (HX). HX binder seg til C, slik at vi får: (A=T) ® (HX-T)® (HX=C) ® (GºC).
Oksidativ deaminering av C gir oss U. Legg spesielt merke til dette. Basen U i DNA vil altså representere en mutasjon. Dette blir kommentert i 9.4.2B. Resultatet av deamineringen C®U blir:
(CºG) (U-G)®(U=A) ® (T=A).
N-nitrosoaminer (R1R2N-N=O) og hydroksylamin (NH2OH) har liknende virkning som nitritt.
Alkylerende
stoffer kan henge en alkylgruppe (f.eks. metyl) på en base. Guanin kan metyleres til O-6-metylguanin,
som vil basepares med T (se fig. 9.11). Slik alkylering vil derfor gi feil ved replikasjonen. Alkylerte
baser vil etterpå kunne fjernes av DNA reparasjonsenzymer, men det er alltid en risiko for at den da
erstattes med gal base. Eksempel på alkylerende stoffer er enkelte nitrosoforbindelser, nitrogen
mustard (kjemisk beslektet med sennepsgass) og EMS (etylmetansulfonat) .
Oksygenradikaler
Under normalt stoffskifte i en celle oppstår det en rekke derivater fra oksygen. Mange av disse er
radikaler , dvs. at de har et uparet elektron. Slike radikaler vil være svært reaktive og kan påvirke eller
skade basene i DNA. Slike skadde baser kan få endret sine baseparingsegenskaper, noe som kan
medføre mutasjoner. Mengden av skadelige oksygenradikaler vil også øke ved ioniserende stråling
og varme.
9.3.3 Interkalerende stoffer
Noen molekyler kan klemme seg inn mellom to basepar i DNA dobbeltspiralen. Et slikt stoff er etidiumbromid (EtBr) (fig. 9.8). EtBr er et plant aromatisk molekyl med dimensjoner omtrent som et basepar. Når dette kiler seg inn i DNA, vil avstanden mellom baseparene øke, og spiralen blir strukket noe ut. Ved replikasjon kan dette medføre at det settes inn en ekstra base, altså en liten insersjon. Etidiumbromid brukes i laboratoriearbeid til å synliggjøre DNA.
Et annet eksempel på et interkalerende mutagen er akridinfargestoffer som akridinorange ogproflavin.
9.3.4 Varme
Høy temperatur kan føre til at N-glykosidbindingen mellom en base og sukkeret i DNA-ryggraden blir
brutt. Fosfoesterbindingene blir ikke brutt, så ryggraden i DNA forblir intakt (fig. 9.9). Vi mister bare en
base, spesielt gjelder dette adenin og guanin, altså puriner. Vi får et såkalt AP-sete, et a-purinisk (eller
a-pyrimidinisk) sete, et sted uten base. I en menneskecelle kan det skje flere tusen slike
depurineringer pr. dag, som må repareres.
9.3.5 Stråling
UV-lys med bølgelengde omkring 260 nm absorberes av de aromatiske basene, og kan medføre forandringer i disse. Spesielt hyppig er dannelse av såkalte T-dimere. To tyminbaser etter hverandre kan bindes sammen med kovalent binding, slik fig. 9.10 antyder. Dette kan gjøre at de dras tettere sammen, og kan medføre at vi mister en base ved replikasjon (en delesjon), eller at replikasjonen stopper opp.
Ioniserende stråling har nok energi til å ionisere molekyler. Dette kan f.eks. være røntgenstråling eller
g-stråling fra radioaktive kilder. Slik stråling kan som nevnt gi oksygenradikaler, som setter i gang en
rekke skadelige forandringer i DNA-basene. Denne strålingen kan også medføre brudd i
DNA-ryggraden og andre større DNA-skader.
Karsinogener
Et stoff som fører til mutasjoner er et mutagen. Et slikt stoff er ofte også kreftfremkallende, det er
etkarsinogen. Dette kan forklares med at kreft gjerne skyldes at kontrollen og reguleringen av genene
ikke fungerer som den skal. Hyppige mutasjoner vil føre til forandringer også i regulerende deler av
kromosomene eller i gener som koder for regulerende proteiner. Det er utviklet enkle tester for å finne
ut om et stoff er et karsinogen/mutagen. Se kap. 24.1.3.
9.4 DNA REPARASJON
Kimball
Ut fra det som er skrevet over, skjønner vi at DNA vil bli skadet, og at det vil skje feil under replikasjonen med en viss hyppighet. Miljøet rundt oss kan øke hyppigheten. Konsekvensene kan være alvorlig for en celle, eller for hele organismen, og i verste fall for hele artens eksistens. Alle celler er derfor utstyrt med en lang rekke mekanismer som kan forhindre DNA-skader eller reparere dem når de har skjedd. Det følgende er en gjennomgang av noen av de måtene dette kan skje på.
Denne gjennomgangen gjelder for E. coli, men man har identifisert omtrent tilsvarende
reparasjonssystemer og -gener hos mennesker.
Korrekturlesing (proofreading)
ble gjennomgått i forrige kapittel. DNA polymerase III kan selv oppdage at det settes inn feil base
under replikasjonen. Den kutter bort denne, setter inn ny og riktig base, og fortsetter. Dette regnes
ikke som reparasjon, siden det skjer mens DNA lages.
Reparasjon av DNA kan skje på to hovedmåter:
1. Direkte reparasjon
2. Utkuttingsreparasjon (excision repair)
9.4.1 Direkte reparasjon
Dette betyr at skaden som er gjort ganske enkelt blir omgjort. Dette er ikke så vanlig, men vi har et
par viktige eksempler på direkte reparasjon.
•T-dimere MAX animasjon
Vi har sett at to tyminbaser kan bindes sammen til en T-dimer av UV-lys (fig. 9.10), og at dette kan
medføre feil ved replikasjonen. Det finnes et eget enzym som kan bryte denne bindingen igjen.
Enzymet kalles fotolyase , og det krever synlig lys for å virke. Mekanismen kalles fotoreaktivering,og
resultatet er altså at T-dimeren oppheves. Genet som koder for fotolyase kalles phr. Se fig. 9.11A.
•Alkyleringsskader
Også alkyleringsskader kan rettes direkte. Dette gjøres av en gruppe enzymer som kalles transferase
r. Basen guanin kan bli metylert i posisjon 6, og dette kan føre til feil baseparing. Se fig. 9.11B.
Enzymet 6-metylguanin metyltransferase vil fjerne denne metylgruppen fra guanin. Enzymet kodes av
genet ada. Når en E. coli-celle først har vært utsatt for denne skaden, vil den reagere raskere neste
gang. Dette kalles derfor adaptiv respons.
9.4.2 Utkuttingsreparasjon (excision repair)
Dette innebærer at den ene tråden i et område rundt en skade blir kuttet bort, og ny tråd blir laget.
Denne metoden innebærer generelt disse trinnene (se fig. 9.12):
1 Det må lages to nick i den ene DNA-tråden, ett på hver side av feilen. Et slikt nick betyr at en
fosfoesterbinding i ryggraden brytes, og enzymene som gjør dette kalles endonukleaser.
2 Området mellom de to kuttene, som inneholder feilen, løsner og blir borte.
3 DNA polymerase I setter inn nye nukleotider fra den fri 3'-OH-enden som oppstår. Den hele, uskadde tråden er templat.
4 DNA ligase lager til slutt fosfoesterbindingen som mangler.
Det er DNA polymerase I (Pol I) som står for DNA-syntesen ved DNA-reparasjon av denne og
liknende typer. Dette enzymet er derfor blitt kalt reparasjonspolymerase. Det er et interessant poeng
at en E. coli-celle inneholder bare 10-20 kopier av Pol III, men flere hundre kopier av Pol I. Pol III
arbeider, som vi vet, jevnt og trutt ved replikasjonsgaflene, mens Pol I må erstatte RNA-primere
(forbinde Okazakifragmenter), og gjøre små biter av reparasjonsarbeid rundt om alle steder i
kromosomet der det skjer skade. Pol III arbeider for øvrig 60 ganger raskere enn Pol I.
• T-dimere
Cellen har egne gener som koder for en endonuklease som kutter bort 12 baser rundt en
T-dimer-skade (og en del andre skader) (fig. 9.13B). Enzymene som gjør dette kodes av genene
uvrA, B, og C. Deretter blir ny DNA laget som beskrevet.
• AP-seter
Vi har nevnt at enkelte mutagener kan forårsake skadelig alkylering av baser. Det kan også oppstå
andre skader på basene. Det finnes mange typer glykosylaser som bryter bindingen mellom slike
skadde baser og sukkeret, dvs. glykosidbindingen. Vi får da i første omgang et AP-sete, et sted der
en base mangler (fig. 9.13B). Vi har tidligere forklart at det også dannes AP-seter spontant når cellen
utsettes for varme.
AP-endonukleaser
Ved et AP-sete mangler en base, men DNA-tråden har en intakt ryggrad. Det finnes egne
endonukleaser som kan kutte bort sukker + fosfat fra ryggraden ved AP-setet. Deretter kan Pol I sette
inn nytt nukleotid, og ligase forbinde ryggraden. Dette er en variant av utkuttingsreparasjonen, selv
om det bare er én nukleotid som er kuttet bort fra den gale tråden.
T (ikke U) i DNA
Vi har lært at en av skadene som kan skje med DNA er deaminering, f.eks. med nitritt. Hvis basen
cytosin blir deaminert får vi uracil (C ® U), og dette er noe som kan skje relativt hyppig. Basen U i
DNA kan derved være resultatet av en deaminering, og denne forandringen vil gi mutasjoner siden U
tiltrekker A, mens C tiltrekker G. Derfor har cellen et eget enzym som fjerner basen U fra en
DNA-tråd: uracil-DNA-glykosylase, ofte kalt UDG eller UNG. Resultatet blir at vi får et AP-sete. Hvis U
hadde vært naturlig i DNA, hadde dette selvsagt vært umulig. Deamineringen C ® U hadde da vært
umulig å reparere. Med basen T i DNA er dette problemet unngått.
• Feilparingsreparasjon (mismatch repair)
Hos E. coli er det et eget enzymsystem som retter feil baseparing som ikke er oppdaget av Pol III sin korrekturlesing. Vi tenker oss at det blir satt inn feil base i 1 av 104 tilfeller. Korrekturlesingen oppdager og retter omkring 99,9 % av disse. Etter korrekturlesingen er det da bare 1 feil pr. 107base. I neste omgang vil 99,9 % av disse feilene (som ikke er oppdaget av Pol III) bli rettet vedfeilparingsreparasjon (mismatch repair). Vi sitter da igjen med bare 1 feil pr. 1010 base. Disse tallene må ikke oppfattes som sannheter, men kan antyde noe om dimensjoner.
Feilparingsreparasjon skyldes egne enzymer kodet av genene mutH, L og S. Enzymene
scannernylaget DNA, og kan oppdage feil baseparing (mismatch). Det blir kuttet vekk et lite stykke av
denene DNA-tråden der feilen ligger (endonukleaseaktivitet). Når dette er gjort, kan ny tråd lages som
beskrevet under utkuttingsreparasjon.
Hvilken tråd?
Når det oppdages en feilparing i DNA, f.eks. et AG-par, hvordan kan enzymene vite hvilken av basene som er feil, og hvilken som er rett? Er det A som skal kuttes bort og erstattes eller er det G? Poenget er her at den nye tråden inneholder feilen, den gamle er originalen. Feilen har oppstått ved siste replikasjon. Hvordan kan enzymene vite hvilken tråd som er nylaget og hvilken som er gammel?
Svaret på dette spørsmålet er at den gamle tråden er sterkere metylert enn den nye (se fig. 9.14). En liten stund etter at DNA replikasjonen har skjedd, er det nemlig et eget enzym som beveger seg langs hele tråden, og setter på en metylgruppe på alle adeninbasene som forekommer i sekvensenGATC. Vi får GAMeTC. Legg merke til at GATC er et palindrom, de to DNA-trådene har GATC på samme sted.
Feilparingsreparasjonen skjer før metyleringen av ny tråd. Derved er det bare den gamle tråden som
er metylert (denne ble metylert etter forrige replikasjonsrunde). Enzymene vil fjerne en bit av den
umetylerte tråden, fordi det er den nye. Etter feilparingsreparasjonen blir også den nylagde
DNA-tråden metylert.
dam
Denne metyleringen av GATC-sekvenser gjøres av enzymet dam metylase som kodes av genet dam. Det er viktig å merke seg at denne metyleringen ikke påvirker DNA-replikasjonen negativt. Andre typer metylering kan derimot endre baseparingsegenskapene, og derved være skadelig.
9.4.3 SOS-respons
Som navnet SOS antyder, er dette et nødsystem. Det trer i kraft hvis det oppstår mye skade på DNA, f.eks. ved sterk UV-bestråling. Når det er mye skadd DNA, vil replikasjonen gjerne stoppe helt opp. SOS-systemet gjør at replikasjonen likevel kan fortsette forbi et skadd område av en DNA-tråd (f.eks. en T-dimer). Prisen for cellen er at det antakelig gjøres en del feil, de nye cellene får altså noen mutasjoner. Alternativet for cellen ville vært at replikasjonen stoppet helt opp. Naturens motto er her: Heller muterte celler enn ingen celler. Vi bør kanskje tilføye at i mange sammenhenger kan mottoet være motsatt. For en flercellet organisme kan det være bedre at en celle dør enn at den fører videre en mutasjon.
Det er en rekke proteiner som er med på å skape denne SOS-responsen. Disse proteinene gjør at
Pol III mister sin korrekturlesingsfunksjon. Under replikasjonen vil da enzymet slippe f.eks. T-dimerer
gjennom, og sette inn A i den nye tråden (som oftest). Men det blir som nevnt også en del feil på
denne måten. Produktene fra bl.a. genene recA, umuC og umuD er nødvendig. Disse genene kalles SOS-genene.
Regulering av SOS-genene
SOS-genene blir aktivert ved DNA-skade. Disse genene utgjør flere operoner, men de kontrolleres av samme repressor. Repressoren for SOS-genene kalles lexA (fra lexA-genet). Det lages normaltlitt av denne repressoren, slik at SOS-genene i hovedsak er skrudd av.
Ved DNA-skade oppstår enkeltrådområder av DNA, ssDNA. Proteinet recA binder seg her, og det får da en proteolytisk aktivitet slik at det spalter repressoren lexA. Det gjør at denne mister sin virkning som repressor. Det betyr at SOS-genene blir skrudd på. RecA bundet til ssDNA er altså en induser for disse genene (se fig. 9.15).
Blant SOS-genene er uvr (utkuttingsreparasjon), umu (SOS), ssb og lexA selv. Det lages som nevnt
litt LexA-repressor også disse genene er regulert ned. Når først recA-proteinet har inaktivert
SOS-repressoren (LexA), lages det derved enda mer repressor, som stadig blir inaktivert. Når
DNA-skaden er reparert vil recA-proteinet miste sin proteolytiske effekt. Da vil cellen inneholde store
mengder repressor, som raskt skrur SOS-genene av, og situasjonen er normal igjen.
10. BAKTERIER, PLASMIDER Til bokens kapitteloversikt
Bakterier er prokaryote celler, de mangler cellekjerne. E. coli er en typisk representant for bakteriene, den er en modellorganisme. Studier av denne bakterien har gitt oss mye av vår kunnskap innen molekylær genetikk. I tillegg brukes E. coli som redskap til å produsere verdifulle proteiner ved hjelp av genteknologiske metoder.
E. coli har et sirkulært kromosom på 4000000 baser, den har 4-5000 gener, og disse sitter relativt tett. Av genene til E. coli er det 1500 som koder for enzymer, 600 for transportproteiner, 400 regulerende proteiner, 250 membranproteiner og 125 strukturelle proteiner. De fleste bakterier har også små sirkulære DNA-molekyler, plasmider.
E. coli er gram negativ, dvs. at den har en relativt komplisert cellevegg, med en ytre membran utenfor
et lag av peptidoglykan.
10.1 Å DYRKE OG TELLE BAKTERIER
Bakterier kan dyrkes i flytende medium, også kalt buljong (broth) i en kolbe e.l. Vi får en bakteriekultur. Bakteriene vil da formere seg ved deling. Etter en kort periode (lag-fase) vil bakteriene formere seg eksponensielt: de er da i log-fase. Da vil logaritmen av antall bakterier øke lineært med tiden. Vi får en vekstkurve, som vist i fig. 10.1. Antall bakterier kan lett komme opp i 107 pr. mL.
Vi kan også dyrke bakterier på et fast, geléaktig medium, agar. Dette gjøres i skåler, nemlig
petriskåler (plateeller petri dish). Hvis vi heller ut litt av en kultur i en skål, slik at det blir tett i tett med
bakterier som vokser opp, får vi et jevnt teppe av bakterier (lawn). Hvis vi heller ut en sterkt fortynnet
kultur, slik at bakteriene havner én og én på skålen, formerer hver bakterie seg og danner en synlig
koloni. Vi kan også dyppe en nål e.l. ned i en kultur, og stryke denne ut på en skål. Vi får da et utstryk
(fig. 10.2).
Et rikt vekstmedium
kan være ekstrakt fra biologisk materiale, f.eks. gjær, kjøtt eller blod. Mediet inneholder da stort sett
alle nødvendige næringsstoffer, og bakteriene behøver ikke lage aminosyrer, vitaminer o.l. selv.
Minimalmedium
Bakterier kan normalt lage de fleste næringsstoffer selv ut fra en enkel karbonkilde og uorganiske
salter, inklusive en nitrogenkilde (ammoniumsalt). Som karbonkilde kan man bruke f.eks. glukose
eller glyserol. Et minimalmedium inneholder bare disse næringsstoffene. På et slikt medium må
bakteriene lage de øvrige stoffer selv, f.eks. aminosyrer. De vokser og formerer seg derfor mye
langsommere i et minimalmedium enn i et rikt medium.
Auxotrofe
bakterier mangler evnen til å lage bestemte stoffer selv, f.eks. aminosyren leucin. Denne mangelen
skyldes en mutasjon i ett av bakteriens gener, leu. Bakterien har da genotype leu og fenotype Leu . En
slik bakteriestamme kan ikke vokse på minimalmedium uten at leucin er tilsatt.
Selektivt medium
Bakterier vil normalt ikke vokse i nærvær av antibiotika, f.eks. streptomycin. De er da streptomycin
sensitive, de har fenotype Str-s. Noen bakterier bærer et gen som gjør dem motstandsdyktige,
resistente, mot f.eks. streptomycin, de er Str-r. Genotypen skrives da str-r. Et vekstmedium som er
tilsatt antibiotika (f.eks. streptomycin) er et eksempel på et selektivt medium. Her vil normale bakterier
ikke vokse, fordi de er sensitive overfor streptomycin (Str-s). Bakterier som er streptomycin resistente
(Str-r), kan derimot vokse. Vi kan lage et minimalmedium med laktose som eneste karbonkilde. Dette
vil være et selektivt medium mot Lac-celler. Lac+-celler vil vokse.
Å telle
Hvis man skal telle antall bakterier (pr. mL) i en flytende kultur, må man først lage en
fortynningsrekke. Man kan da fortynne kulturen 10 ganger (10×). Deretter fortynner man denne
fortynningen 10×, osv. 6-8 ganger (fig. 10.3). Man kan så ta ut 0,1 mL fra de siste fortynningene, og
så ut på en agarskål. Hvis fortynningen er passe stor vil hver bakterie gi opphav til en liten koloni. Ved
å telle antall kolonier, kan vi beregne antall bakterier pr. mL i fortynningen, og i den opprinnelige kultur.
Absorbans, OD
Man kan også anslå antall bakterier pr. mL ved å måle kulturens optiske tetthet (absorbans) ved
f.eks. 520 nm. OD står for optical density. Man trenger da en standardkurve som viser
sammenhengen mellom absorbans og konsentrasjon av bakterier i vedkommende medium.
Replikaplating er en teknikk som er nyttig ved genetiske studier av bakterier. Man kan da overføre
bakteriekolonier som vokser på én petriskål til en ny skål (fig. 10.4). Man bruker da et rundt stempel
som er dekket med filt. Dette trykkes ned på skålen der koloniene vokser. En del bakterier fra hver
koloni vil henge fast i filtputen. Stempelet presses ned på en ny agarskål, og noen bakterier fra hver
koloni vil bli overført. Disse vil så vokse opp til nye kolonier. Den nye skålen vil da ha kolonier med
samme mønster som den opprinnelige. Vi kan da studere hvordan de samme bakteriene vokser på
ulike næringsmedier, f.eks. selektive medier.
10.2 PLASMIDER'
Plasmider er små sirkulære, supervridde DNA-molekyler som finnes i de fleste bakterier. Plasmider
finnes også i eukaryote celler, f.eks. gjær og i mange planter. Et plasmid er i stand til å bli replikert, og
kan derved bli ført videre fra celle til datterceller. Størrelsen på bakterieplasmider kan variere fra 5 til
100 kb. Hver plasmidtype foreligger i et visst antall kopier. Dette kopitallet kan være fra 1 til ca. 20. Vi
har følgende hovedtyper av bakterieplasmider:
Col-plasmider
Disse er små. En av dem, ColE1 er på 6646 bp. Kopitallet er 10-15. Navnet har de fått fordi de lager
coliciner,dvs. proteiner som kan hemme visse bakteriers vekst. Col-plasmidene stammer muligens fra
defekte fagpartikler som har beholdt enkelte av sine gener. Col-plasmider kan ikke overføres fra en
celle til en annen ved egen hjelp.
F-plasmider
F står for fertility, og disse plasmidene kalles også kjønnsfaktorer. F-plasmider er ca. 100 kb store, og
det er bare en eller to kopier pr. celle. De inneholder alle de gener som trengs for å overføre seg selv
til en annen celle.
R-plasmider
R står for resistens. Disse plasmidene inneholder gener som gir resistens mot antibiotika, f.eks. penicillin ellerstreptomycin. R-plasmider er vanligvis store, og de består av én del som gjør at de kan overføres til andre celler (RTF, resistance transfer factor) og en annen del som bærer et resistensgen (r determinant). Vi kan tenke oss at R-plasmider stammer fra F-plasmider som har mottatt r-determinanten som et transposon (se neste kapittel).
pSC101 er et lite R-plasmid (ca. 9 kb) som ikke kan overføre seg selv til andre celler.
Konstruerte plasmider
I genteknologi brukes plasmider som bærere av gener (vektorer). Disse plasmidene er laget ved å
sette sammen deler fra ulike plasmider, samt konstruerte deler. Plasmidvektorene pBR322 og
pUC18/19 (kap. 23) er en videreutvikling av en nær slektning av ColE1.
10.3 KONJUGASJON
Når et plasmid overføres naturlig fra celle til celle kalles det konjugasjon. Det samme kan skje med hele bakteriekromosomet (se 12.3). Dette ble oppdaget i 1946, da man fant ut at gener kunne overføres fra en bakteriestamme til en annen.
En bakterie som inneholder et F-plasmid kalles F+, mens en som ikke inneholder F kalles F. Hvis disse to blandes slik at F overføres, vil F+-cellen være donor (giver), og overføre F-plasmidet til F-cellen som er recipient (mottaker). Donoren lager en kopi av F som overføres, slik at etter konjugasjonen er begge cellene F+. Konjugasjon er altså en enveis DNA-overføring.
Hvis F-plasmidet bærer andre gener av betydning for cellen, f.eks. lac-operon, kalles cellen F', f.eks. F'lac.
Overføringen av plasmid fra celle til celle kan deles i fire trinn: 1. kontakt, 2. DNA-mobilisering, 3.
overføring og 4. ferdiggjøring (fig. 10.5).
Kontakt
Et plasmid som bærer de nødvendige gener for å danne kontakt til en annen celle kalles konjugativ.
Selve kontakten skjer ved at donorcellen (F+) danner pilustråder, laget av proteinet pilin. Pilustrådene
kan binde seg til recipienten (F). Pilustrådene trekker cellene sammen, og det dannes et hull eller
konjugasjonsrør, mellom dem. En F+ bakteriestamme inneholder altså et F-plasmid, og plasmidet
bærer et gen som koder for proteinet pilin.
DNA-mobilisering
For å overføre DNA må cellen kunne starte rullende sirkel-replikasjon av plasmid DNA (kap. 7.4). De plasmider som kan gjøre dette, kalles mobiliserbare. Rullende sirkel-replikasjon krever et startpunkt, kalt oriT (T for transfer), og et nicking enzym (nuklease) som kutter den ene DNA-tråden i oriT.
Hos ColE1 kalles det området som inneholder oriT for bom (basis of mobility) og nicking enzymet
kodes av genet mob. Disse to DNA-delene gjør at ColE1 er mobiliserbar. Når det er laget et nick i
oriT, oppstår det en fri 3'-OH-ende, og dette vil være startpunktet for DNA-replikasjon.
Overføring
Egentlig er det looped rullende sirkel-replikasjon som foregår av plasmidet (bare en runde), slik at det
bare lages én ny DNA-kopi. Den ene mortråden, som blir nøstet av, kan så bli overført gjennom
konjugasjonsrøret. Det er derved enkeltrådet DNA som blir overført. Denne må være beskyttet mot
nedbryting av SSBP (single strand binding protein).
Ferdiggjøring
I recipienten vil den overførte DNA-tråden være templat for syntese av ny tråd, slik at DNA blir
dobbeltrådet. Resultatet blir at både donor og recipient har hver sin kopi av plasmidet. Hos begge to
er den ene DNA-tråden nylaget, og den andre gammel. DNA-syntesen har imidlertid foregått separat i
de to cellene: Først rullenede sirkel i donoren (donor konjugal DNA syntese), så syntese av ny
komplementær tråd i recipient (recipient konjugal DNA-syntese).
Kontroll av overføring
De genene som er nødvendig for å lage pilin og andre nødvendige stoffer for konjugativ kontakt slik
at DNA kan overføres, kalles tra-gener. Av disse er det over 20 stykker.
Et F-plasmid blir lett overført fra en F+- til en F-stamme, men et R-plasmid bare i liten grad blir overført fra en R+- til en R-stamme. Dette skyldes at R-plasmidet lager en repressor som blokkerer tra-genene (fig. 10.6). Denne tra-repressoren blir kodet av to fin-gener (fertility inhibition). R har fin-genene, men F har dem ikke.
F-plasmider er selvoverførende, dvs. både konjugative og mobiliserbare. ColE1 er bare mobiliserbar,
ikke konjugativ. Men hvis begge plasmider er i samme celle, kan også ColE1 overføres, fordi
F-plasmidet skaper den nødvendige konjugative kontakt.
10.4 PLASMID KOPITALL
Review av plasmid replikasjon
10.4.1 Replikasjon
Når et plasmid er overført til recipienten, vil recipienten ha én kopi av plasmidet. Nå er det mulig for dette DNA-molekylet å bli replikert, slik at vi får flere kopier i cellen. Dette foregår som vanlig -replikasjon (7.4).
Plasmidet må ha sitt eget replikasjonsorigo, oriV. Plasmidene utnytter vertcellens (E. colis)
replikasjonsenzymer (DNA polymeraser, ligase, helicaser osv.). Men noen plasmider koder også for
enkelte av disse enzymene selv. ColE1 er avhengig av DNA polymerase I (Pol I) fra E. coli (fra genet
polA), mens F-plasmider og R-plasmider som oftest ikke er det (f.eks. det lille R-plasmidet pSC101).
Det betyr at hvis plasmidet ColE1 blir overført til en vertcelle som er polA, så vil det ikke bli replikert
videre til flere kopier (16 er normalt) (se fig. 10.7). Plasmidet pSC101 derimot vil bli replikert normalt
(til 6 kopier), selv om vertcellen er polA, fordi den selv koder for et tilsvarende enzym.
10.4.2 Kontroll av kopitall
Hvert plasmid blir replikert i en celle til sitt karakteristiske kopitall, som tidligere omtalt. Dette kan
forklares slik: Plasmidet selv har et gen som koder for en repressor som kan binde seg til oriV (fig.
10.8). For å stoppe replikasjonen må det være en viss mengde av denne repressoren i cellen. Denne
mengden blir større når det finnes flere kopier av plasmidet, og derved flere kopier av repressorgenet.
Ved et bestemt kopitall av plasmidet, f.eks. 6, vil det bli laget så mye repressorprotein i cellen at oriV
blir blokkert.
Plasmid amplifikasjon
Kloramfenikol hemmer proteinsyntesen i E. coli. Hvis dette tilsettes mediet, vil kopitallet for plasmider bli svært høyt. Dette skyldes at repressoren, som er et protein, ikke vil bli laget. Replikasjonen av plasmidet vil likevel skje, siden replikasjonsenzymene er i cellen fra før og er ganske stabile.
Hvis replikasjon av plasmidet er avhengig av proteiner som er kodet av plasmidet selv, kan vi ikke få slik amplifikasjon.
I noen rekombinante plasmider (bl.a. pUC) har man fjernet den delen av plasmidet som koder for
repressor, slik at kopitallet blir høyt.
10.4.3 Inkompatibilitet
Repressoren som hemmer replikasjon kan være ulik fra én plasmidtype til en annen. Hvis to ulike plasmider replikeres i samme celle, og lager ulike typer repressor, vil de ikke påvirke hverandre. Begge plasmidtypene vil bli kopiert til sine typiske kopitall. Disse plasmidene kan sies å være kompatible. Dette betyr at de kan finnes i samme celle side om side, og replikeres og nedarves sammen, uavhengig av hverandre.
Men hvis to ulike plasmider, A og B, som er i samme celle, har samme type repressor og ori, vil de påvirke hverandre. Hvis kopitallet for A og B er 6, vil plasmidene A og B bli replikert til summen av dem er 6 (fig. 10.9). Dette kan være 3A+3B, 2A+4B, eller 1A+5B osv. Disse plasmidene sies å være inkompatible.
Ved celledeling blir alle plasmidene fordelt mellom dattercellene tilfeldig. Hvis en celle inneholder 2 A- og 4 B-plasmider, kan dattercellene få henholdsvis (1A + 2B) og (1A + 2B), men de kan også få (2A + 1B) og (0A + 3B). Det betyr at plasmidet A er mistet i den ene dattercellen. Etter hvert som cellen deler seg gjennom mange generasjoner, vil noen celler miste den ene plasmidtypen og få bare A, og noen miste den andre og få bare B. Slike plasmider tilhører samme inkompatibilitetsgruppe.
Konsekvensen blir at "like" plasmider ikke går sammen. To plasmider i samme inkompatibilitetsgruppe ("like"), kan ikke eksistere sammen i samme bakteriestamme i lengden.
Innen kloningsarbeid kan det være viktig at en bakterie hele tiden inneholder et bestemt plasmid (en
vektor). Bakteriene kan imidlertid risikere å miste plasmidet gjennom mange generasjoner. Det kan
man forhindre på f.eks. følgende måte: Man bruker en bakteriestamme som er pro, mens plasmidet
bærer genet pro (genet som gjør at cellen lager prolin). Hvis bakterien dyrkes på medium som
mangler prolin, vil bare celler med plasmid kunne vokse. Derved sikrer man seg at man hele tiden har
slike celler. Celler som har mistet plasmidet vil forsvinne.
11. BAKTERIOFAGER Til bokens kapitteloversikt
,,,
11.1 BYGNING OG LIVSLØP
Et virus er en partikkel som inneholder DNA eller RNA i et proteinskall. Viruset alene kan ikke utøve
livsfunksjoner, men det kan infisere en levende celle og derved formere seg. En bakteriofag er et
virus som infiserer bakterier. Vi sier ofte bare fag i stedet for bakteriofag. Et virus trenger alltid en
levende (aktiv) celle for å utøve sine livsfunksjoner, cellen er da vert.
Det er selvsagt også en rekke virus som infiserer ulike eukaryote celler, deriblant humane celler,
f.eks. adenovirus (se kap. 24), herpesvirus, influensavirus m.fl. Dette kapittelet omtaler bakteriofager
generelt, samt tre eksempler, nemlig l, T4 og T7. Den trådformede bakteriofagen M13 blir omtalt i
kap. 16.6 Noen eukaryote viruser blir også omtalt, retrovirus (21.2) og ulike tumor virus (24.2).
11.1.1 Oppbygning
Mange bakteriofager har et mangekantet hode, et ikosaeder, f.eks. T4, T7 og (fig. 11.1). DNA ligger
inne i hodet. Hodet har en hale (tail), og på halen kan det være festet halefibre (T4). I tillegg har halen
en krage (collar) øverst og en haleplate nederst. Hele den samlede strukturen er fagens kappe
(kapsid). Noen bakteriofager er trådformede (filamentøse). Et eksempel på dette er M13.
DNA/RNA
Både og T4 inneholder dobbelttrådet DNA. M13 inneholder enkelttrådet DNA, og noen virus inneholder RNA. En gruppe av RNA-virus kalles retrovirus. HIV-viruset (AIDS) er et retrovirus.
Virus kan ha to ulike livsløp; lytisk eller lysogent.
11.1.2 Lytisk livsløp
I et lytisk livsløp formerer viruset seg, og resultatet er mange nye viruspartikler som kommer ut av vertcellen i det denne sprenges. Et virus som bare kan gjennomføre lytisk livsløp kalles virulent.Hovedpunktene for en bakteriofag i et lytisk livsløp er (fig. 11.2):
1 Adsorbsjon. Fagpartikkelen adsorberes til reseptorer på bakteriens overflate. Her spiller haleplaten og halefibrene en rolle.
2 DNA injeksjon. Proteinskallet (kapsidet) blir igjen ute, mens DNA sprøytes inn i cellen.
3 Kontroll. Bakteriecellen forvandles til en celle i fagens tjeneste, fagens DNA tar kontroll. Dette skjer i løpet av de aller første minutter, og ulike bakteriofager kan ha noe ulik strategi for dette.
4 Produksjon. Cellens maskineri brukes til å produsere alle komponenter til nye fagpartikler, fag-DNA og fagproteiner (hode, hale, halefibre).
5 Sammensetning. Nye kapsider blir satt sammen og DNA blir pakket i hodene.
6 Lysis. Nye bakteriofager blir frigjort ved at vertcellen sprenges (lysis). Formeringen kan også skje
uten lysis (M13).
11.1.3 Lysogent livsløp
I tillegg til lytisk livsløp kan en fag også ha et lysogent livsløp (fig. 11.3). Fagen kalles datemperat. Det lysogene livsløp innebærer at fagens DNA integreres i vertens kromosom, og vertcellen fortsetter sitt liv med fagens DNA som gjest. Dette gir ingen formering av fagen som sådan. En fag som er integrert på denne måten kalles en profag. Cellen kalles en lysogen celle.
Når fagens DNA blir integrert kalles dette integrasjon eller insertion. I en lysogen celle kan fagens DNA bli kuttet ut igjen, dette kalles excision. Vi sier da at den lysogene cellen erindusert. Etter utkutting av profagen kan fagen gå inn i lytisk livsløp.
11.1.4 Kontroll av vertcellen
I løpet av de aller første minuttene etter infeksjon tar fagens DNA kontroll over cellen. De genene som blir brukt i denne tidlige fasen kalles tidlige gener og de resulterende proteiner kalles tidlige proteiner.
Fagens tidlige gener må bli lest (transkribert) av vertcellens RNA polymerase. For at dette skal skje, må disse tidlige faggenene ha en E. colipromoter. Blant de tidlige proteinene hos T4 er et enzym som modifiserer E. coli RNA polymerase slik at denne ikke lenger kan bruke vertens egne promotere eller til tidlige T4-promotere, men bare T4 sine sene promotere. I tillegg er et av de tidlige proteinene en nuklease som bryter ned vertens DNA.
Hos bakteriofag T7 blir det laget en egen T7 RNA polymerase, og E. coli RNA polymerase blir ødelagt
(se 11.6).
11.2 Å DYRKE OG TELLE BAKTERIOFAGER
11.2.1 Å telle fag
Se fig. 11.4. Vi tenker oss en suspensjon som inneholder bakteriofag , f.eks. 108 pr. mL. Vi lager en
fortynningsrekke, slik at antall fag i den siste fortynningen blir mellom 10 og 1000 pr. mL. For å telle
disse trenger vi en indikatorbakterie, dvs. en bakteriestamme som vår fag kan bruke som vertcelle. Vi
blander f.eks. 0,1 mL av den fortynnede fagsuspensjon med litt indikatorbakteriekultur. Dette kan
blandes med 3 mL softagar, flytende næringsagar ved ca. 42°C. Dette helles raskt over på en
agarskål. Softagaren med bakterier + fag vil stivne og utgjøre en toppagar. Mengden
indikatorbakterier må være slik at de vokser opp til et jevnt teppe. Der hvor det har havnet en
fagpartikkel vil det bli et klart område i det grålige bakteriteppet, en plakk. I starten vil hver fagpartikkel
på skålen infiserer én celle, og etter lysis vil ca. 100 nye fag slippe fri og infisere ca. 100 nye bakterier
ved siden av, osv. En plakk er derved et område der bakteriene er utryddet, mens det ligger mange
fagpartikler der. Når bakteriene slutter å vokse fordi næringen er brukt opp, vil plakken også slutte å
vokse. Det som i utgangspunktet er f.eks. 50 fag spredd rundt på en skål, vil bli 50 plakk.
11.2.2 MOI
Hvis vi blander 3×108 -fag med 108 E. coli-celler i 1 mL flytende medium sier vi at MOI = 3 (Multiplicity
of Infection). Vi har da: MOI = antall fag / antall bakterier = 3. Fagpartiklene vil fordele seg på
bakteriene, men ikke slik at det blir akkurat 3 fagpartikler på hver. Adsorbsjonen skjer rent tilfeldig, og
noen celler kan derved bli infisert av flere enn 3 fag, mens andre celler ikke blir infisert i det hele tatt.
Fordelingen av fagpartikler på bakterieceller i en kultur vil skje som en Poissonfordeling. Vi lar m =
MOI, P(n) er fraksjonen (andelen) av bakterier som er infisert av n fag, der n = 0,1,2,3 osv. P(0) er da
den andelen av bakterier som er uinfisert, P(1) er andelen av bakterier som blir infisert av én fag. osv.
Poissonfordelingen sier da at:
mn × e-m
P (n) = n!
Hvis MOI = 3 får vi:
P(0) = 30 × e-3/0! = 1 × 0,05/1 = 0,05
P(1) = 31 × e-3 /1! = 3 × 0,05/1 = 0,15
P(2) = 32 × e-3 /2! = 9 × 0,05/2 = 0,22
P(3) = 33 × e-3 /3! = 27 × 0,05/6 = 0,22
P(4) = 34 × e-3 /4! = 27 × 0,05/6 = 0,17
P(5) = 35 × e-3 /5! = 27 × 0,05/6 = 0,10
P(6) = 36 × e-3 /6! = 729 × 0,05/720 = 0,05
Vi ser at 5 % av cellene ikke blir infisert [(P(0) = 0,05], 15 % blir infisert av én fag [P(1) = 0,015], 22 % blir infisert av to fag osv.
Vi er ofte interessert i antall uinfiserte celler, dvs. P(0). Eksemplet over viser at med MOI=3, så får vi 5
% uinfiserte celler. Hva må MOI være for at minst 99% av cellene skal bli infisert? Dette innebærer at
1 % er uinfisert, eller atP(0) = 0,01. Vi får:
P(0) = m0 × e-m /0! = 0,01
Þ e-m = 0,01 m = 4,6
MOI må altså være 4,6 for at 99 % av cellene skal bli infisert.
11.2.3 Vekstkurve for fag
Hvis vi dyrker bakterier, vil disse etter en stund vokse eksponensielt (logfase). Vi tenker oss at vi har
1×106 celler pr. mL i logfase. Vi tilsetter 10 fag pr. mL. Vi antar at generasjonstiden er 30 min for
bakteriene og 30 min for fagen, og at det slippes fri 100 fag pr. faggenerasjon, som igjen infiserer 100
nye celler.Vi får da (meget forenklet):
Tid Fag Bakterier
0 min 10 ® 1 ×106
30 min 103 ® 2×106
60 min 105 ® 4×106
90 min 107 ® 8×106
120 min 8´108 ® 0
Antallet fag øker med 100× for hver 30 min, så lenge det er nok bakterier. I starten vil antall bakterier
være mye større enn antall fag, og antall bakterier blir lite påvirket av fagen. Antallet bakterier øker
eksponesielt, det dobles for hver 30 min. Men ved 90 min frigjøres 107fag, og de aller fleste
bakteriene blir da infisert, og 30 min senere blir de lysert. Da slippes det fri ca. 8×108 fag (pr. mL), og
det som er igjen av levende bakteriene blir infisert og utryddet.
11.3 SPESIFISITET VED INFEKSJON
11.3.1 Spesifisitet
T4 kan infisere de fleste E. coli-stammer, de fleste arter av Shigella, men ingen Pseudomonas-arter.
Denne spesifisiteten kan til en viss grad endres ved mutasjoner både hos fagen og hos verten.
Fagens haleplate eller halefibre må binde seg til et eget reseptorsete på bakteriens overflate. Begge
disse er av proteinnatur eller er avhengig av proteiner. En mutasjon hos vertcellen kan endre
reseptoren, slik at fagen ikke kan adsorbere til cellen (fig. 11.5). En slik bakterie vil være resistent mot
vedkommende fag. Men i neste omgang kan det skje en mutasjon hos bakteriofagen som endrer
haleproteinene, slik at de likevel binder seg til reseptoren.
11.3.2 Restriksjon
Bakterier beskytter seg mot inntrengning av bakteriofager også med restriksjonsenzymer.Dette er
endonukleaser som kutter over DNA-molekyler på bestemte steder. Bakteriens eget DNA er spesielt
beskyttet mot dette. Disse restriksjonsenzymene vil bli omtalt grundigere senere (14.2). Kunnskapen
om disse enzymene og isolasjonen av dem på 1970-tallet var grunnlaget for den eksplosive utvikling
av genteknologi vi har sett siden da. Ett bestemt restriksjonsenzym kutter DNA ved en bestemt
DNA-sekvens (restriksjonssete). Hver bakteriestamme kan ha ett eller flere slike enzymer.
11.3.3 Modifikasjon
Bakteriens eget DNA er beskyttet mot restriksjonsenzymene ved at DNA er blittmodifisert. Det skjer når én av basene i restriksjonssetet blir metylert i bestemte posisjoner. Dette beskytter mot kutting. Modifikasjonen (metyleringen) skjer normalt i forbindelse med DNA-syntesen, replikasjonen. I noen få tilfeller kan fremmed DNA (f.eks. fag-DNA) også bli metylert før restriksjonsenzymene får kuttet det, og derved er det beskyttet. Hvis først fag-DNA er modifisert i en bakteriestamme, vil denne fagen være beskyttet mot stammens restriksjonsenzymer ved senere infeksjoner.
Ett av restriksjonsenzymene hos E. coli, EcoRI, gjenkjenner sekvensen 5'-GAATTC-3'. Det tilsvarende modifikasjonsenzymet metylerer A i denne sekvensen slik: 5'-GAAMTTC-3'.EcoRI vil nå ikke kutte DNA ved denne sekvensen.
En -fag som er modifisert i E. coli B kallesB, en som er modifisert i E. coli K kalles K osv. (fig. 11.6).
Hvis K infiserer E. coli B, vil fagens DNA bli ødelagt når det kommer inn i cellen. Imidlertid vil vi i ca. 1
av 104 tilfeller få en modifikasjon av DNA ved hjelp av E. coliB sitt modifikasjonsenzym. Den fag som
kommer ut av den cellen vil da være B!
11.4 BAKTERIOFAG
Bakteriofag er et av de første genetiske systemer som ble grundig studert og kjent. Det er også i
meget sterk grad utnyttet innen moderne genteknologi.
er en temperat fag, den kan gjennomføre lytisk livsløp eller integreres som profag i et lysogent livsløp.
Fig. 11.7 viser oppbygningen av . Den kan infisere de fleste E. coli-stammer, men er gjerne tilpasset
en bakteriestamme, ved at den er modifisert til denne stammens restriksjonssystem. lB er tilpasset E.
coli B, osv. Det lytiske livsløp hos tar ca. 45 min ved 37 °C. Antall fagpartikler som produseres (burst
size) er 50-100.
11.4.1 DNA
-genomet er 48502 bp stort, og hele denne DNA-sekvensen (fra fermentas) ble bestemt allerede i 1982. inneholder 46 kjente gener. Genene hos er plassert slik at gener med beslektet funksjon ligger samlet (se fig. 11.9). Dette er vanlig hos mange mikroorganismer. Ett område inneholder de regulerende genene (cI, cII, cro, N), ett område inneholder gener som styrer rekombinasjonsprosesser (int, xis, red, gam), ett område har replikasjonsgener (O, P) og ett område inneholder strukturelle gener (gener for hode- og haleproteiner; W, B, C, ... K, I, J).
Legg merke til at mange gener har navn på én bokstav (N, O, P osv.) og ikke tre, slik det er vanlig hos
mikroorganismer. Dette har historiske grunner.
Ikke-essensielle gener
Av de 46 genene hos er 14 ikke-essensielle for lytisk livsløp, og 7 ikke-essensielle for både lytisk og
lysogent livsløp. Ett bestemt område av genomet til er kalt b2. En delesjon av b2-området har ingen
kjente negative konsekvenser for verken lytisk eller lysogent livsløp. Områdetb2 inneholder 13 % av
genomet (6,3 kb), og koder for sju kjente proteiner.
Cos-setet
I faghodet er DNA lineært, og det er små enkelttrådbiter i hver ende. Disse er komplementære, slik at de kan gå sammen og danne sirkulært DNA (fig. 11.8). Disse endene kalles cos(cohesive ends). Slike DNA-ender kalles oftesticky ends, klebrige ender. Når fagen infisererE. coli, og DNA er injisert, vil de to cos-endene bindes sammen, og DNA er blitt sirkulært. DNA ligase må forbinde trådene med fosfoesterbindinger.
Det sirkulære DNA vil inneholde dette cos-setet på 12 bp. Det lineære DNA har ½ cos i hver ende.
11.4.2 DNA replikasjon
Ved lytisk livsløp vil replikasjonen av eget DNA starte etter ca. 6 min. Replikasjonen kan skje både etter -måten og s-måten (7.4). Se fig 11.10.
-replikasjon skjer hovedsakelig i starten. Dette vil raskt øke antall sirkulære DNA-kopier. Vi får da flere kopier av alle -genene, og derved får vi også laget mer av genproduktene fra disse, både -enzymer og kapsidproteiner.
s-replikasjon kommer i gang senere. Dette produserer DNA til pakking i nye faghoder. Resultatet av denne replikasjonen er en lang remse (lenke) av flere fullstendige -genomer etter hverandre. Disse vil også inneholde ett cos-sete pr. genom (fig 11.11).
Etter hvert som s-replikasjon nøster ut DNA ved ledende tråd syntese, vil den komplementære tråden bli laget ved lagging strand-syntese.
OriR. Replikasjon av DNA starter i et egetoriR. For å starte replikasjonen herfra trengs to proteiner
som kodes av -genene O og P. Ellers utnytter E. colis replikasjonsenzymer under selve replikasjonen.
Et interessant poeng er også at oriR ligger inne i selve O-genet. Transkripsjon av O-genet gir ikke
bare initieringsproteinet O, men påvirker antakelig samtidig oriR slik at replikasjon herfra blir fremmet.
11.4.3 Pakking av DNA
Den lange lenken av gjentatte -genomer fra s-replikasjonen blir etter hvert kuttet i enheter på nøyaktig ett genom og pakket i ferdige faghoder. Kuttingen skjer i cos-setet, og skaper de klebrige ½ cos-endene. Kuttingen gjøres av enzymetterminase, som kodes av genet A.
Denne såkalte ter-kuttingen skjer koblet med pakkingen. Selve cos-setet blir igjen utenfor hodet,
mens resten av -DNA pakkes inn i hodet. Når hodet er fylt med ett genom, vil vi ha to cos-seter (eller
1 + ½) i åpningen. Da kuttes det ved cos-setet. Deretter kan neste hode fylles og pakkes på samme
måte. Se fig. 11.11.
To cos-seter
Ter-kuttingen krever altså to cos-seter (eller 1½) ved siden av hverandre. Dette forklarer at ett
sirkulært -genom fra q-replikasjonen normalt ikke kan pakkes i hoder. Det inneholder bare ettcos-sete.
11.4.4 Rekombinasjon ved att-setet
Ved lysogent livsløp skal -genomet integreres i E. coli-kromosomet. Begge disse er sirkulære i cellen.
Integrasjon skjer ved setespesifikkrekombinasjon. De spesifikke områdene hvor rekombinasjon skjer
kalles att-seter (attachement). Hele att-setet hos E. coli (attB) er på ca. 20 bp, mens det hos (attP) er
på ca. 250 bp. (Bokstaven B står for bakterie og P for phage). De har et kjerneområde på 15 bp som
er likt hos begge (kalt O). Se fig. 11.12. OmrådeneattB og attP finner hverandre ved hjelp av enzymet
integrase som er kodet av genet int hos, og en overkrysning skjer. Dette gir en integrert profag.
Integrase
For at integrase skal gjøre dette, må den binde seg til det 250 bp store området POP' i DNA og til
BOB' i E. coli DNA. Det lages et skjevt kutt i kjernesekvensene som gir et 7 bp stort overheng. Disse
blir så rekombinert. Resultatet er at en integrert profag omgir seg på begge kanter med att-kjernen.
På den ene siden sitter BOP', og på den andre siden POB'.
Excisionase
Når profagen skal klippes ut etter induksjon, må det skje en rekombinasjon igjen. Nå finnes det
imidlertid ingen tråd som inneholder sekvensen POP' (fig. 11.13 og 11.12). Integrase som gjenkjenner
POP' kan derved ikke binde seg. Det finnes da et annet enzym, excisionase, som gjør at integrase
binder seg til BOP' og POB'. Derved kan det skje en overkrysning inne kjernesekvensen O iatt.
Resultatet blir at profagen blir klippet ut av E. coli kromosomet (excision).
11. 5 BAKTERIOFAG T4
Studier av bakteriofag T4 har gitt oss mye av vår nåværende kunnskap om molekylær genetikk. T4 er en virulent fag. Den har noen få tidligegener som har E. coli-promotere, og som derved blir transkribert av E. coli RNA polymerase. Proteinene fra disse genene modifiserer RNA polymerase, slik at enzymet ikke lenger gjenkjenner denne promoteren. Derimot vil den gjenkjenne en promoter som sitter foran de øvrige T4-genene (sene gener). Derved er E. colis gener satt ut av funksjon, mens T4-genene blir lest og brukt av vertcellen. Bakteriofagene T2 og T6 er nesten identisk med T4 ("T-even-phages").
Av T4-genene er det 21 som trengs for å lage halen og haleplaten, 18 for hodet, og 8 for halefibrene.
T4 bruker ca. 22 minutter fra infeksjon til lysis av E. coli (37 C), og ca. 300 nye fagpartikler frigjøres da
(burst size).
T4 DNA
T4-genomet er på 173 kb ( er 48 kb, E. coli4000 kb). Fysisk sett er dette lineært, men etgenetisk kart over T4-genomet er sirkulært. Kartlegging av genomet ved rekombinasjonsanalyse gir nemlig som resultat at ingen gener kan plasseres i enden. Dette blir utdypet nedenfor.
Vi tenker oss 4 gener i denne rekkefølgen: a, b, c, d. Vi har funnet avstanden mellom disse til å være: ab: 300 mu (map units), bc: 300 mu, ac: 600 mu, cd: 400 mu og ad: 500 mu. Hvis man skal konstruere et kart ut fra disse tallene, må det bli sirkulært. Prøv selv!
Fysiske målinger av T4 DNA viser at molekylet ikke er sirkulært, men lineært. Hvordan kan det da ha seg at genkartet er sirkulært? Forklaringen på dette er følgende: Når T4 DNA er ferdig replikert, vil det foreligge som en remse av flere genomer hengt etter hverandre (se fig. 11.14). Vi tenker oss /at T4-genomet består av genene (a b c....x y z), altså hele alfabetet. Etter replikasjon vil vi ha mange alfabet etter hverandre i en remse: (a b c....x y z a b c....x y z a b c....x y z a b c.. ). T4-hodet kan inneholde litt mer enn ett helt genom, og det blir alltid pakketfullt. Ett hode kan da f.eks. motta genene (a b c ...x y z a b c). Neste hode vil da motta fortsettelsen: (d e f...z a b c d e f ). Alle fagpartiklene vil da inneholde hele genomet pluss noen få gener i dobbel dose. Hvilke gener som er i dobbel dose vil variere fra fag til fag. Et slikt DNA kalles på engelsk terminal redundant, som betyr endeoverskudd eller endegjentakelse. Denne måten å pakke DNA i faghoder kallesheadfull-mekanismen, dvs. fullt hode.
Et resultat av dette blir at ingen gener kan plasseres i enden av et genetisk kart. Genene zog a vil
f.eks. ligge nær hverandre i mange fagpartikler.
11.6 BAKTERIOFAG T7
T7 har et kromosom på ca. 40 kb (39937) og har 56 gener. Genene deles inn i klasse I (tidlige), klasse II (DNA-replikasjon o.l.) og klasse III (strukturelle gener), som ligger organisert etter hverandre (fig. 11.15). De tidlige genene utgjør de første 6-7 kb av genomet. Helt i begynnelsen av T7 DNA ligger tre sterke E.coli-promotere.Etter infeksjon vil E. coli RNA polymerase starte transkripsjon fra disse tidlige promoterene, av de tidlige T7-genene. Dette stoppes (som vanlig) av en terminator, og vi får et mRNA-transkript på ca. 7 kb. Dette koder for flere proteiner, bl.a. en egen T7 RNA polymerase (T7 RNAP). Blant de tidlige genproduktene er også et protein som angriper vertens restriksjonsenzymer.
T7 RNA polymerase vil ikke binde seg til E. coli-promotere, men til sin egen T7 promoter.Denne har en meget stabil konsensussekvens på 23 baser, fra base 17 til +6 i forhold til transkripsjonsstart. T7-promoteren har denne sekvensen:
5'-TAATACGACTCACTATAGGGAGA.
Det finnes i alt 17 slike promotere, de fleste gir transkripsjon av klasse II-gener og noen av klasse III. T7 RNA polymerase starter altså transkripsjon av klasse II-genene, og vi får laget klasse II mRNA og tilsvarende proteiner. Blant disse er et protein som ødelegger E. coli RNA polymerase. Dette skrur av transkripsjon av vertens gener, samt av T7 tidlige gener. Dette skjer etter ca. 6 min (ved 37 C). Transkripsjonen av klasse II-gener stopper også ved en egen terminator.
Klasse III-genene har fem T7 promotere. Disse er helt like og enda sterkere enn klasse
II-promoterene. Etter ca. 12 min vil klasse III-genene dominere helt når det gjelder transkripsjon og
translasjon. Disse genene koder for strukturelle proteiner (hode, hale osv).
T7 DNA polymerase
Blant klasse II-proteinene finner vi også egne T7 replikasjonsproteiner, f.eks. en egen T7 DNA polymerase, primase, helicase, ligase, m.fl. T7 DNA polymerase er et relativt enkelt enzym som mangler 5'®3' eksonuklease-aktivitet.
Både T7 RNA polymerase og dens T7-promoter, og T7 DNA polymerase blir mye brukt innen
genteknolgi. T7 RNA polymerase er blitt karakterisert som det mest effektive transkripsjonsenzymet
som er kjent.
12. FLYTTING AV GENER Til bokens kapitteloversikt
|
|
|
|
|
|
Vi skal omtale fire måter som DNA kan flyttes eller overføres på.
1 Transposoner, små DNA-biter som kan "hoppe".
2 Transformasjon, innføring av et fremmed DNA i en celle.
3 Konjugasjon, overføring av deler av et kromosom fra en bakteriecelle til en annen gjennom cellekontakt.
4 Transduksjon, overføring av DNA fra en celle til en annen ved hjelp av virus.
Under omtalen av R-plasmider ble det nevnt at genene for antibiotikaresistens kan hoppe fra ett plasmid til et annet eller til et bakteriekromosom.
Slik transposisjon innebærer at et DNA-stykke blir kuttet ut fra ett sted, og satt inn på et annet sted.
Det som flyttes kalles et transposon.
12.1.1 Oppbygning av transposoner
IS-elementer
Det enkleste transposon kalles et IS-element. IS står for innskuddssekvens (Insertional Sequence). Et IS-element inneholder vanligvis et gen som setter det i stand til å flytte seg selv. Dette genet koder for enzymet transposase.På begge sidene av transposasegenet finner vi samme DNA-sekvens, men i motsatt retning, omvendt repetert(se fig. 12.1)
Det finnes mange ulike IS-elementer i E. coli, f.eks. IS1 (768 bp, 5-8 stk. i kromosomet), IS2 (1327
bp, 5 stk. i kromosomet, 1 i F-plasmidet), IS50 (1533 bp) m.fl.
Sammensatte transposoner
Et typisk sammensatt transposon består av to like IS-elementer som omgir et resistensgen. IS-elementene inneholder som nevnt transposasegenet. Hele transposonet, inkludert de to IS-elementene kan bli kuttet ut under ett, og bli flyttet. Det finnes mange slike sammensatte transposoner i E. coli, bl.a.:
• Tn5 (5400 bp, inkl. to IS50 (a 1500 bp) og kan-r-gen (fig. 12.2).
• Tn9 (2500 bp, inkl. to IS1 (a 768 bp) og cam-r-gen).
• Tn10 (9300 bp inkl. to IS10 (a 1400 bp).
12.1.2 Flytting av transposoner MAX animasjon
Et transposon, sammensatt eller bare IS-element, kan som nevnt bli flyttet til en annen plass. Dette kan være i samme DNA-molekyl (kromosom), eller til et annet. Transposonet kan bli satt inn på bestemte målområder (target sites). Disse målområdene har normalt ikke noen sekvenslikhet med transposonet selv. Denne overføringen blir fremmet av transposase.
Som oftest er det en kopi av transposonet som blir flyttet. Resultatet blir da at vi får en kopi av
transposonet på to plasser, både der det var opprinnelig, og i det nye målområdet. Dette kalles
replikativ flytting, siden det må skje en replikasjon av transposonet under denne prosessen.
Mekanismen for denne replikative flyttingen blir ikke gjennomgått her.
12.1.3 Eksempler på flytting av gener
Bakterier
En F-bakteriestamme (A) som er kanamycinresistent (Kan-r) kan overføre denne egenskapen til en annen F-stamme (B), som er sensitiv for kanamycin (Kan-s). F-bakterier har ikke noe F-plasmid (se 10.3), slik at resistensgenet (kan-r) hos A må sitte i kromosomet (se fig. 12.3).
Først kan stammen A motta et F-plasmid fra en F+-stamme ved konjugasjon. Deretter kan selve flyttingenskje. Forutsetningen for dette er at resistensgenet er omgitt av IS-elementer, slik at det fungerer som et transposon. Da vil kan-r genet bli flyttet (replikativt) over fra kromosomet til plasmidet i A. Etter dette kan cellen A overføre dette plasmidet til cellen B ved konjugasjon. Cellen B blir da også resistent mot kanamycin.
Denne flyttingen av resistensgener er et stort medisinsk problem. En bakteriecelle som er resistent
mot et antibiotikum kan spre dette til andre celler via plasmider. Dette kan til og med skje over
artsgrensene, fra en bakterieart til en annen. Ved overdreven bruk av antibiotika vil bakterier med
resistensgener ha en stor fordel og derved lett utvikle seg og bli dominerende (seleksjon). Det har
oppstått multiresistente bakteriestammer som vanskelig kan bekjempes med noe kjent antibiotikum.
Kjønnsskifte hos gjær
Gjærceller kan ha to kjønn (mating type), nemlig a og . De er i stand til å skifte mellom disse ganske
raskt og ofte. Kjønnet avgjøres av et sett med gener (W-X-Y-Z) som må sitte i ett bestemt locus
(MAT) for å kunne uttrykkes. Disse genene er av to typer, a og . Hvis (W-X-Y-Z) av typen a sitter i
MAT-locus, så blir kjønnet a. Hvis -typen av (W-X-Y-Z)-gener sitter her, blir kjønnet (fig. 12.4). Alle
gjærceller har både a-genene og a-genene, og de er plassert i hver sine loci, HMRa og HML, hvor de
ikke kan uttrykkes, de er stumme. Ved en prosess som minner om replikativ flytting, kan a- eller
-genene flyttes fra sitt passive locus til MAT-locus. Her vil genene bli uttrykt, og derved bestemme
kjønnet. På denne måten kan kjønnet skifte ved at vekselvis a- ellera-genene flyttes til MAT-locus.
Denne mekanismen kalles gjerne kassettmodellen for kjønnsskifte.
Antigenvariasjon ved sovesyke
Sovesyke skyldes den encellede parasitten Trypanosoma. Den spres av tse-tse-flua. Kroppen kan forsvare seg mot smitte på vanlig måte ved å lage antistoffer mot Trypanosoma-cellene. Antistoffer reagerer spesifikt mot parasittcellenes antigener, dvs. bestemte overflatemolekyler. Disse overflateantigenene er glykoproteiner, altså proteiner som har påsatt bestemte oligosakkarider. Hvordan disse glykoproteiner skal lages, blir bestemt av et gen som sitter i ett bestemt locus hvor det kan bli uttrykt, et ekspresjonslocus. Cellen har imidlertid mange slike gener, som koder for enzymer som lager ulike glykoproteiner. Disse genene kalles VSG-gener (Variable Surface Glycoprotein).
Bare ett VSG-gen kan sitte i ekspresjonslocus, men dette kan byttes ut med ett av de andre
VSG-genene. Ved å bytte slik, kan Trypanosoma plutselig forandre glykoproteinene, dvs. antigenene.
Immunforsvaret til den smittede person lager antistoff mot ett antigen. Når parasitten skifter til et
annet antigen, så virker ikke antistoffene lenger. For Trypanosoma er dette kassettskiftet meget
gunstig i kampen for å overleve.
12.2 TRANSFORMASJON
12.2.1 Historisk bakgrunn
I kap. 1 ble det nevnt at Griffith i 1928 oppdaget at arvelige egenskaper kunne overføres fra døde bakterieceller til levende. Fenomenet ble kalt transformasjon. De cellene som ble genetisk forandret ble kalt transformerteceller. Ut fra disse observasjonene ble det slått fast at arv måtte skyldes et kjemisk stoff som kunne eksistere utenom levende celler. Først i 1944 fant man ut at dette stoffet var en nukleinsyre, DNA.
Griffiths forsøk ble utført med to stammer av Pneumococcus, S (smooth), kolonier med glatt overflate) og R (rough), kolonier med ujevn overflate. S-stammen forårsaket døden når den ble injisert i mus, R-stammen gjorde det ikke. R-stammen kunne en sjelden gang bli til S og omvendt. Dette måtte skyldes mutasjoner. R- og S-stammene måtte da bære ulike alleler av ett bestemt gen.
Hvis S-bakterier ble drept ved varmebehandlig, hadde de ingen effekt på mus, akkurat som levende
R-bakterier. Men når drepte S-bakterier ble blandet med R, døde musene av dem. De døde S-cellene
måtte ha overført arvestoff til noen av de levende R-cellene. R-cellene var blitt transformert til S-celler
(se fig. 12.5).
12.2.2 Kotransformasjon
For at en celle skal bli transformert må to ting skje: DNA må komme inn i cellen utenfra, og dette DNA må bli integrert i cellens kromosom ved overkrysning (fig. 12.6).
Hos enkelte bakteriearter kan man kartlegge kromosomet ved hjelp av kotransformasjon. Vi tenker oss at vi har en recipientstamme som er a- b- c- . Vi har en donorstamme som er a+ b+ c+ (se fig. 12.7). Donorstammen drepes og DNA kuttes opp i passe store biter. Dette DNA brukes til å transformere recipientceller. Hver recipientcelle vil da bli transformert av en tilfeldig bit av donorens DNA. Hvis denne biten inneholder genet a+, så kan cellen bli transformert fra a- til a+osv. Man kan undersøke hvor mange recipientceller som er blitt a+, b+osv. Spesielt undersøker vi hvor mange av de cellene som er blitt a+ som samtidig har blitt b+ eller c+. Hvis én celle er blitt transformert både til a+ og b+, sier vi at genene a og b er kotransformert. Vi undersøker da kotransformasjons-frekvensen, kf. Hvis vi teller 100 a+, og 6 av disse samtidig er b+, så er denne frekvensen 6 % (kfab = 6 %).
Hvis to gener a og b er kotransformert, betyr det at den overførte DNA-biten har inneholdt både a og
b. Jo nærmere a og b ligger hverandre, jo større sjanse er det for at de blir overført sammen, altså at
vi finner en stor verdi for kf.
Eksempel
Vi finner følgende kf-verdier: ac: 5 %, bc: 12 %, ab: 20 %. Hva er rekkefølgen av genene?
Vi ser at genene a og b er de som ligger nærmest hverandre, siden de har størst kf-verdi. Genene a
og c er de som ligger lengst fra hverandre, siden de har lavest kf-verdi. Rekkefølgen må da være (a-b-c).
12.2.3 Kunstig transformasjon
En celle som kan ta opp DNA som befinner seg i mediet rundt seg, kalles kompetent. Naturlig transformasjon (in vivo) er særlig studert hos Pneumococcus. Også hos en del andre slekter finner vi det, men ikke hos E. coli.E. coli kan imidlertid ta opp fremmed DNA hvis cellene behandles med CaCl2 og lav temperatur. Dette er en svært vanlig teknikk for å få plasmid DNA inn i E. coli-celler i forbindelse med kloningsarbeid.
CaCl2-transformasjon av E. coli har en begrenset effektivitet. Ikke mer enn 1 % av cellene tar opp plasmid DNA. Man måler gjerne effektiviteten i antall transformerte celler pr. mg tilsatt DNA. Typiske verdier kan være 107-108 celler pr. mg DNA.
Begrepet transfeksjon har en liknende mening som transformasjon. Transfeksjon betydde opprinnelig
innføring av DNA i en celle ved hjelp av virus (bakteriofag). Nå brukes også transfeksjon generelt om
innføring av DNA i celler, spesielt eukaryote celler. Dette tas opp i kap. 17.3.2.
12.3 KONJUGASJON
12.3.1 Hvordan Hfr-celler dannes MAX animasjon
Vi har tidligere omtalt F-plasmider, og hvordan disse kan overføres fra en donorcelle (F+) til en recipientcelle (F-) ved konjugasjon (10.3). Et F-plasmid kan også bli integrert i E. coli-kromosomet og bli en del av dette. En celle med F integrert i kromosomet kalles en Hfr-celle (high frequency of recombination).
F kan integreres i kromosomet ved hjelp av sine IS-elementer (transposoner). F-plasmidet og kromosomet inneholder flere av de samme IS-elementene, ofte mange kopier. Derved har F og kromosomet homologe områder. Disse kan finne hverandre, og det foregår homolog rekombinasjon. Resultatet blir et integrert F-plasmid (fig. 12.8).
E. coli-kromosomet har ca. 20 plasser hvor F-plasmidet kan bli integrert (fig. 12.9). I tillegg kan
retningenfor integrasjon variere. Dette gir oss svært mange ulike måter F kan integreres på. Vi kan få
mange ulike Hfr-stammer av E. coli.
F'-plasmider
Et F-plasmid kan kuttes ut av kromosomet og bli fritt igjen. Dette er en sjelden foreteelse. Hvis denne utkuttingen skjer litt til siden for F, kan F-plasmidet få med seg en bit av E. coli-kromosomet (fig. 12.10). Denne biten vil kunne inneholde et eller annet E. coli-gen. Et F-plasmid som har plukket opp et E. coli-gen på denne måten, kalles F' (F-merket). Vi kan f.eks. ha F'lac. Siden F kan sitte forskjellige steder i kromosomet, kan vi få mange ulike F'-plasmider. Det er samlet sett isolert F'-plasmider som dekker hele E. coli-kromosomet.
Frigjøring av F' fra Hfr er på mange måter likt med frigjøring av -DNA fra en lysogen celle ved
induksjon.
12.3.2 Hfr-overføring - konjugasjon
I kap. 10.3 beskrev vi hvordan F-plasmidet kan overføres fra én celle (F+) til en annen (F-) ved konjugasjon. F inneholder alle gener som skal til for å bli overført. Kromosomet i en Hfr-celle vil derved også inneholde disse genene. F-faktoren i en Hfr-celle kan starte konjugasjon på samme måte som et F-plasmid kan gjøre det alene. Hfr-cellen er da donor og F--cellen er recipient. Dette skjer slik (se også fig. 12.11).
1 Etter at en konjugasjonsbro er laget, starter konjugasjonen med et nick i oriT i F. Deretter starter rullende sirkel-replikasjon og den ene DNA-tråden blir overføret til recipienten.
2 I en Hfr-celle henger F sammen med kromosomet. Hvis denne prosessen får fortsette, kan hele E. coli-kromosomet bli overført til recipienten. Overføringen av hele kromosomet tar ca. 100 min, mens overføring av F bare tar 2 min.
3 Vanligvis avbrytes denne prosessen etter en viss tid, fordi konjugasjonsbroen brytes. Vi har da fått overført en bit av F og en del av kromosomet.
4 Det overførte DNA kan ikke eksistere som eget, selvstendig DNA slik F-plasmidet gjorde ved plasmid konjugasjon. Recipientcellen forblir derved F-.
5 Den overførte delen av kromosomet kan finne den homologe del av recipientens kromosom. Så kan
det skje en overkrysning, slik at en del av donorens DNA erstatter den tilsvarende delen av
recipientens DNA.
12.3.3 Genkart - "time of entry"
På et genkart av E. coli-kromosomet finner vi posisjonen av genene oppgitt i minutter, fra 0 til 100. En lengde på ett minutt betyr at det tar ett minutt å overføre denne DNA-biten ved konjugasjon.
Vi kan tenke oss følgende forsøk:
Donor: Hfr leu+ trp+ str-s
Recipient: F- leu- trp- str-r
Hfr-stammen har F integrert i posisjon 92 i E. coli-kromosomet (fig. 12.12).
1 Vi blander donor- og recipient-stammene i et flytende medium slik at konjugasjon kan starte. Kromosomet fra Hfr-stammen starter da med å bli overført til recipient-stammen. De ulike genene blir overført i tur og orden. Aller først overføres litt av F, deretter 92-93-94-95-96-97-98-99-100/0-1-2 min på kartet osv. Genetleu sitter i posisjonen ca. 3 min, og vil da bli overført etter ca. 11 min, genet trp sitter i posisjon 28 min, og vil da bli overført etter ca. 36 min.
2 Vi tar ut litt av kulturen og rister kraftig. Konjugasjonen vil da bli avbrutt. Dette gjør vi ved ulike tidspunkter etter at konjugasjon har startet, f.eks. 0, 5, 10 min osv.
3 Vi undersøker disse uttakene for å se om recipient-cellene har mottatt leu+ eller trp+-genet fra donor.
Fra ca. 11 min venter vi at leu+-genet kan være overført. For at recipientcellen skal bli Leu+, må genet fra donor også bli rekombinert inn i kromosomet. Vi vil derfor finne at antall Leu+-celler øker gradvis fra ca. 10 min og utover. Etter en viss tid flater det ut. Fra ca. 35 min vil vi også registrere celler som er blitt Trp+(fig. 13.14).
Recipient-cellene har genet str-r, som gjør at de er resistente mot streptomycin (Str-r). Dette er et markør-gen. Donorcellene er streptomycin sensitive (Str-s). Ved å dyrke cellene på medium som inneholder streptomycin, vil donorcellene bli utelukket, og kun recipientceller vokse opp. Dette kalles motseleksjon, og str-genet er en motselektiv markør (fig. 12.12).
For å registrere recipienter som er blitt Leu+, må vi bruke medium som mangler leucin (i tillegg til at det inneholder streptomycin). Her vil de opprinnelige recipienter ikke vokse, fordi de er leu-. Bare recipienter som har mottatt leu+-genet vil vokse her. Dette er positiv seleksjon, og leu-genet er den selektive markør som vi selekterer etter.
Vi kan i praksis bruke minimalmedium, som ikke inneholder noen aminosyrer. Tryptofan må da tilsettes, siden recipienten er Trp-.
Genkartet man får ved å bruke denne bestemte Hfr-stamme vil bare dekke en del av kromosomet, fra
92 min og et stykke bortover. Ved å bruke flere ulike stammer, kan man kartlegge hele kromosomet.
Avstanden mellom to bestemte gener målt i minutter er den samme uansett hvilken Hfr-stamme som
brukes. Overføringen av en viss DNA-bit skjer like raskt uansett fra hvor det har startet.
12.4 TRANSDUKSJON
Transduksjon er overføring av gener fra en bakteriecelle til en annen ved hjelp av bakteriofag.
12.4.1 Generell transduksjon
Ved generell transduksjon kan et tilfeldig DNA-stykke bli overført fra en celle til en annen. Eksempel
på en bakteriofag som gjør dette er P1.
er en temperat fag, med ca 100 kb DNA. Ved lytisk livsløp, eller ved induksjon av en lysogen celle, vil P1 degradere vertens DNA. Dette gjør også T4, men P1 gjør det meget langsomt. Når DNA skal pakkes i hodene til P1, kan det forekomme at den pakker fragmenter av vertens DNA som har riktig størrelse til å bli pakket. Disse vil da kunne bli pakket i P1-hoder (fig. 12.15).
Det er tilfeldig hvilken bit av bakteriekromosomet som plukkes opp på denne måten. Et hvilket som helst E. coli-gen kan bli pakket i et P1-hode, med omtrent samme sannsynlighet. En transduserende P1-fag, som har pakket en bit av E. coli-DNA i sitt hode, vil inneholde ca. 50 E. coli gener. Ca. 1 av 1000 P1-fag vil kunne pakke vertens DNA, og derved være en transduserende fag.
En transduserende P1-fag inneholder E. coli-DNA fra en donorcelle. Dette vil kunne injiseres i en
annenE. coli celle, recipienten. Her kan det injiserte DNA integreres i kromosomet ved homolog
rekombinasjon. Det må skje to overkrysninger for at recipienten skal motta en bit fra donoren, og
miste sin tilsvarende bit. Hvis recipientcellen var leu- og donorcellen leu+, kan vi få donorceller som er
blitt leu+. Disse cellene er transduserte.
Stor vertsbredde (broad hoast range). Bakteriofag P1 kan infisere svært mange ulike bakterier, den
har stor vertsbredde. Dette betyr at den kan overføre gener fra en bakterieart til en annen, såkalt
horisontal genoverføring.
Siden rekombinasjon er nødvendig for transduksjon, må recipientcellen være Rec+ (både A og BC)
(se 12.5).
Kotransduksjon
En E. coli-celle som er transdusert med P1-fag, vil ha mottatt ca. 50 E. coli-gener fra donoren. Disse
genene erkotransdusert. Sjansen for kotransduksjon av to gener a og b er større jo nærmere genene
a og b ligger hverandre. Hvis 30 % av de recipientene som har mottatt a, samtidig har mottatt b, så er
kotransduksjons-frekvensen,kf (ab) = 30 %. Jo høyere kf, jo nærmere er genene hverandre. Dette er
for øvrig helt parallelt med kotransformasjon, som er behandlet tidligere. Kotransduksjon er også en
mulig måte å kartlegge genene i en celle på.
12.4.2 Spesiell transduksjon med l
Ved spesiell transduksjon er det bare visse gener som kan flyttes fra en celle til en annen. Hos
bakteriofag lfinner vi dette.
Dannelse av transduserende fag
Dannelse av transduserende l starter med en E. coli-celle som er lysogen for l. Ved induksjon av denne vil l-genomet bli kuttet ut (se 11.4.4).
Når l blir integrert i E. coli-kromosomet, skjer dette alltid ved att-setet i E. Coli og i l. Til venstre for att-setet i E. coli finner vi gal-genet, og til høyre finner vi bio-genet. Gal koder for et enzym som er nødvendig for å utnytte (bryte ned) galaktose, mens bio koder for et enzym som trengs for å syntetisere biotin.
Til sidene for att-setet i l finner vi på den ene siden int, xis og N. På den andre siden finner vi området b2. Når l-genomet skal kuttes ut ved induksjon, skjer dette normalt også ved att-setene (av enzymene integrase/excisionase, se fig. 11.12). Men det kan hende at disse enzymene foretar utkuttingen litt til siden for det normale. Vi får da kuttet ut et DNA-stykke som mangler litt av l DNA, men som i stedet har en bit av E. coliDNA (fig. 12.16). Denne forskyvningen kan skje til den ene eller andre siden, og vi kan få:
1. l gal. Vi mister b2 og evt. noen halegener av , og får med gal-genet fra E. coli.
2. l bio. Vi mister int, xis og N av l, og får med bio fra E. coli.
Denne feil utkuttede l vil replikeres på vanlig måte. Alle l-gener er jo til stede i cellen, selv om noen er
blitt igjen på vertens kromosom. Etter replikasjon vil vi også få pakking i hoder. Dette forutsetter at det
utkuttede DNA har en størrelse som er mellom 79 % og 106 % av det normale (38-52 kb).
Integrasjon, transduksjon
Når l gal har injisert sitt DNA i en ny vertcelle, kan genet gal bli integrert i cellens kromosom ved
homolog rekombinasjon, med overkrysninger til begge siden for gal-genet (fig. 12.17). Hvis vertcellen
er gal-, kan den da bli endret til gal+. Dette forutsetter selvsagt at den transduserende l-fag plukket opp
genet fra en celle som var gal+. På tilsvarende kan en celle som er bio- bli transdusert til bio+ av en l bio-fag.
Lytisk livsløp med transduserende
Det er også mulig for en gal eller bio-fag å gå inn i et lytisk livsløp i en ny vertcelle. Dette forutsetter at
ikke har mistet noen gener som er nødvendig for lytisk livsløp, f.eks. halegener. En gal kan f.eks. ha
mistet slike halegener.
12.5 REKOMBINASJON
I dette kapittelet har vi sett at ett stykke av DNA kan bli satt sammen med et annet. Dette skjer både
med transposoner, ved transformasjon og ved konjugasjon. Vi har også møtt det ved meiosen, der
kromosomer blir rekombinert. Begrepet rekombinant DNA knyttes gjerne til genteknologi, der vi
klipper og limer DNA-molekyler ved hjelp av enzymer (kap. 15). Men rekombinasjon av DNA er en av
de måtene naturen selv skaper variasjon og fornyelse på. Forenklet kan vi skille mellom to typer
rekombinasjon i naturen: Generell homolog rekombinasjon (som ved meiosen) og stedsspesifikk
rekombinasjon (som ved att-setet i bakteriofag l).
12.5.1 Homolog rekombinasjon
Dette krever to DNA-molekyler som er like eller nesten like over et relativt stort område. Slike DNA-molekyler kalles homologe. De to DNA-molekylene har da tråder som er komplementære med hverandre.
De to trådene som er komplementære har motsatt polaritet.
De homologe DNA-molekylene må finne hverandre, og legge seg parallelt. Deretter må det skje en
overkrysning. På engelsk brukes begrepene breakage and reunion, brudd og gjenforening.
Mekanismen for dette blir nærmere beskrevet i 12.6. I E. coli spiller proteinene RecA og RecBC en
rolle her.
Vi finner homolog rekombinasjon bl.a. ved konjugasjon, transformasjon, meiose og DNA-reparasjon.
12.5.2 Sete-spesifikk rekombinasjon
Dette krever ikke nødvendigvis at de to DNA-molekylene har homologe områder. Poenget her er at rekombinasjonen skjer på en helt bestemt plass i DNA-molekylene. Homolog rekombinasjon skjer gjerne på et tilfeldig sted langs de to homologe molekylene. Ved sete-spesifikk rekombinasjon er det spesielle enzymer som gjenkjenner det aktuelle sted i DNA der hvor overkrysning skal skje, og medvirker til dette.
Ett eksempel på dette er når bakteriofag blir integrert i E. coli-kromosomet. Både og E. coli-DNA har
egne seter (att), der overkrysningen skjer, og det er egne enzymer som må til: integrase og
excisionase (11.4.4). De to DNA-trådene er her homologe, men bare over et kort område.
12.6 MEKANISME, HOMOLOG REKOMBINASJON
RecA - RecBC
Genene recB og recC i E. coli koder for to proteiner som utgjør ett enzymkompleks, RecBC-enzymet. Dette kan bevege seg langs en DNA-tråd, og åpne denne (avtvinne den). Mens enzymet beveger seg langs DNA-molekylet, vil det tvinne de to trådene fra hverandre i forkant, og sammen igjen i bakkant. Sammentvinningen går imidlertid litt senere, slik at det oppstår sløyfer av enkeltrådet DNA (ssDNA) (fig. 12.18).
RecBC-enzymet har også nukleaseaktivitet, evnen til å lage et kutt i enkeltrådet DNA. Dette kan enzymet gjøre i den sløyfen av ssDNA som oppstår. Det skjer imidlertid bare enkelte steder langs DNA-tråden. Disse stedene er spesielle DNA-sekvenser som kalles chi. (5'-GCTGGTGG-3'). E. coli kromosomet har ca. 1000 slikechi-sekvenser.
Genet recA koder for RecA-proteinet som binder enkeltrådet DNA, ett RecA-protein pr. fem nukleotider. RecBC-enzymet har skapt slike enkeltrådbiter der den har laget kutt i DNA, og RecA-proteinet kan binde seg til dette. Når RecA er bundet slik til ssDNA, kan det også bidra til at denne DNA-tråden finner og binder seg til en annen DNA-tråd, hvis denne er komplementær. Dette er utgangspunktet for homolog rekombinasjon. RecA medvirker til at ett DNA-molekyl finner sin homolog.
Mekanismen for homolog rekombinasjon er ikke helt klar. Det er vanlig å bruke en modell fra 1964 som kalles Holliday-modellen. Vi kaller de to DNA-molekylene 1 og 2, og trådene A og B. 1A har samme polaritet som 2A, 1A og 2B er da komplementære (fig. 12.19).
1. Det lages et enkelttrådbrudd i DNA-tråden 1A (jf. RecBC).
2. RecA binder seg til enkeltrådbiten av 1A som oppstår, og hjelper med å finne det homologe området i DNA-2. Det kan skje binding mellom de komplementære trådene 1A og 2B over et område.
3. Det lages et nick i tråden 2A på samme sted som det skjedde i 1A, og en bit av 2A binder seg til 1B, i samme område som 1A og 2B.
4. Det lages nick på samme plass i begge B-trådene, bortenfor det området som er rekombinert. Det
skjer ligering av trådene ved alle bruddstedene: (1B®2B), (1A®2A), (2A®1A) og (2B®1B).
Resultat
Vi har nå fått DNA1 bundet til DNA2. Vi ser at over et lite område vil de to nye (rekombinerte)
DNA-molekylene bestå av én tråd fra hver av de opprinnelige DNA (1A-2B) og (1B-2A). DNA1 og
DNA2 behøver ikke å være identiske. De kan f.eks. være ulike i ett basepar og reperesentere to ulike
alleler av et gen. I så fall har vi etheterodupleks som inneholder en feil baseparing (mismatch).
Reparasjon
Et slikt heterodupleks kan få en av to mulige skjebner, reparasjon eller ikke reparasjon. Hvis
heteroduplekset blir reparert (feilparingsreparasjon) kan den ene tråden bli gjort lik den andre (se fig.
12.20). Feilparingen AC kan bli reparert til AT og feilparingen GT kan også bli reparert til AT.
Resultatet av denne rekombinasjonsprosessen blir da at DNA-trådene med GC er blitt forvandlet til
AT. Hvis dette var to alleler av et gen, betyr det at det ene allelet er blitt forvandlet til det andre, og
derved eliminert. Det at et allel blir gjort om kalles også gene conversion, genforvandling.
13. DET HUMANE GENOM Til bokens kapitteloversikt
I 2001 var det human genom så godt som ferdig sekvensert . Rekkefølgen av A-, T-, G- og C-er i alle kromosomene er stort sett kjent. Men vi kjenner likevel ikke alle genene og deres funksjoner. Fig. 13.2 og 13.5 gir en oversikt over hvilke typer DNA-sekvenser vårt genom består av. Tallene må tas med forbehold. I dette kapittelet omtaler vi hovedsakelig vårt DNA, altså vårt genom. Hvis vi er interessert i alt mRNA som blir laget fra våre gener, heter det transkriptom, og hvis vi er interessert i alle proteinproduktene er det proteom .
GC-innholdet i vårt DNA er ca. 41 %, dvs. 59 % AT. Det er altså ikke like mye av de 4 basene, slik vi
av og til kalkulerer med. Basesammensetningen er dessuten ganske variabel. Hvis vi ser på
segmenter på 20 kb, vil GC-innholdet i slike segmenter variere fra ca. 30 % til 65 %, noe som betyr at
vi finner store områder som er GC-rike og andre som er AT-rike.
Tallene som er gjengitt i dette kapittelet når det gjelder det humane genom er hentet fra
spesialnummeret av Nature 15. Feb 2001 (the Human Genome) (se fig. 13.1).
Nature 2004:Ferdig sekvensert
13.1 GENER
OMIM (omtale av alle kjente gener, søk på navn, egenskap osv.)
Vi har ca. 3,2 milliarder baser (3200000 kb) DNA i vårt haploide genom (se kap. 8.2). Av dette er ca.
20 % gener eller genliknende deler, altså DNA som kan gi et eller annet funksjonelt produkt
(RNA/protein). Av dette gen-DNA er det mindre enn 10 % som er direkte proteinkodende DNA, altså
eksoner. Det betyr at bare 2 % av alt DNA er proteinkodende, dette utgjør 60000 kb. Man regner i dag
med at vårt DNA inneholder ca. 25000 gener. For noen år siden var dette estimatet litt høyere,
50-60000. Oppbygningen av et typisk humant gen er vist i fig. 13.3. Det er likt med eukaryote gener
generelt og ble gjennomgått i kap. 8
13.1.1 Genstørrelse
Størrelsen på ett enkelt gen varierer sterk, fra noen hundre til noen millioner baser. Antall introner varierer også sterkt, fra 0 til over 50. Insulingenet har en størrelse på 1,4 kb, med tre eksoner som utgjør 33 % av genet. Genet for serum albumin er 18 kb, med 14 eksoner som utgjør 12 % av genet. Dystrofingenet er på 2400 kb og har 79 eksoner som utgjør 0,6 %. Se kap. 8.4, tabell 8.1.
Tabell 13.1 viser noen nøkkeltall for humane gener. Legg merke til at gjennomsnittet for genstørrelse er mye høyere enn medianen, særlig for introner, der snittet er 3365 og medianen 1023. Det betyr at noen få gener og noen få introner er ekstremt store, og trekker snittet opp. Medianen er derved bedre enngjennomsnittet til å illustrere det "typiske gen".
Et typisk gen er 14000 baser stort. Det har 7 eksoner som utgjør 1100 baser kodende DNA, som gir et protein på 367 aminosyrer.
Vi minner om at en rekke gener ikke er proteinkodende, dette gjelder genene for tRNA, rRNA,
snRNA, snoRNA m.fl., ofte kalt ncRNA-gener (noncoding RNA), se kap. 8.5 og 13.1.4.
13.1.2 Gentetthet
Et samlet antall på 25000 gener vil gi oss en gentetthet på ett gen pr. 100 kb DNA. I virkeligheten er det en enorm variasjon i gentetthet. Kromosom 4 og 18 har f.eks. meget lav gentetthet, mens kromosomene 19 og 22 er genrike. Tettheten varierer også mellom ulike områder av samme kromosom.
Det er en klar sammenheng mellom gentetthet og GC-innhold. Det er flere gener i GC-rike områder
enn i AT-rike. Hvis vi setter gentettheten = 1 (relativ skala) i områder med 35 % GC-innhold, vil 45 %
GC-innhold ha gentetthet 2, områder med 55 % GC ha gentetthet 8 og 65 % GC ha gentetthet 15. Det
er relativt få gener i AT-rike områder, og de er gjerne store, spesielt intronene.
13.1.3 Genfamilier
En genfamilie er et sett av gener som har mer eller mindre grad av likhet i basesekvens, de er homologe. De vil derved gi proteiner med stor grad av likhet i aminosyresekvens. Disse proteinene utgjør en tilsvarende proteinfamilie. Utviklingen av genfamilier er en del av den biologiske evolusjon, som blir omtalt i kap. 13.5.
Et godt eksempel på en genfamilie er ß-globin-familien . Vi finner i alt 6 gener for ß-globin samlet på kromosom 11 i et 65 kb langt område (fig. 13.4). De 6 genene kalles e (HBE), Gg (HBG2), Ag (HBG1), b,d (HBD) og b (HBB). ( OMIM ) Disse har varierende grad av homologi (se fig. 13.17). Genet e (epsilon) brukes bare de første uker etter befruktning, de to genene g brukes vesentlig gjennom fosterstadiet. Etter fødsel er det to av genene som brukes, nemlig d og ß. Genet (psi) brukes ikke i det hele tatt, og dette kalles etpseudogen (liksomgen). Graden av likhet mellom disse genvariantene gjenspeiler at de stammer fra en felles gensekvens for lenge siden. Noen genfamilier
Blant de største genfamiliene er immunapparatets gener, blant disse finner vi genene for antistoffer, immunglobuliner. Dette blir omtalt i kap. 23.
Det er anslått at det finnes ca. 3000 genfamilier i vårt genom. I 2000 av disse er det bare 2
medlemmer (gener), mens den største genfamilien har over 100 medlemmer. Disse tallene er basert
på datanalyser av hele den humane DNA-sekvens. Tallene vil avhenge av definisjonen av en
genfamilie, dvs. hvor stor grad av homologi som kreves for å tilhøre samme familie.
Pseudogener
I familieklyngen av 6 b-globingener var det ett pseudogen. Det kan ha stor likhet med resten av
genfamilien, men det gir ikke noe funksjonelt produkt.
Samlet/spredt
Når en genfamilie ligger samlet innen et avgrenset område på et kromosom, kalles det en genklynge
(genecluster). b-globinfamilien utgjør en slik genklynge. Et annet eksempel på en genfamilie i klynge
er genet for veksthormon. Vi finner 5 kopier av dette genet samlet på kromosom 17. Andre
genfamilier kan finnes spredt på mange kromosomer. Genet for aldolase finnes i 5 kopier på 5 ulike
kromosomer ( OMIM ). Av disse er tre funksjonelle og to pseudogener. Vi finner over 100 kopier av
histongenene, fordelt på tre kromosomer. Men la oss presisere at de aller fleste proteinkodende
gener finnes i bare ett eksemplar (single copy) pr. haploid genom.
Isoformer, isozymer
Enzymet aldehyd dehydrogenase (ALDH) ( ALDH.org ) er med på å oksidere etanol til eddiksyre (fra acetaldehyd) i leveren. Men cellene har én form av ALDH i cytosol og en annen i mitokondriene. Disse kalles isoformer av samme enzym, isoenzymer eller bare isozymer , og de har 68 % homologi. Enzymet i cytosol kodes av genet ALDH1 ( OMIM ) som finnes på kromosom 9q, mens mitokondrieenzymet kodes av genet ALDH2 ( OMIM ) som finnes på kromosom 12q.
For enzymet alkalisk fosfatase har vi 4 ulike gener (ALP) fordelt på to kromosomer, og disse blir
uttrykt i ulike organer. Et av disse uttrykkes bare i placenta ( OMIM ), et annet bare i tarmen ( OMIM
)). Disse to genene har 90 % homologi (i eksonene) og begge ligger på kromosom 2q.
Proteindomener, gensegmenter
Proteiner kan bestå av ulike domener, strukturelle eller funksjonelle enheter, "moduler" (se kap. 4.6).
Vi kan finne ett og samme domene i mange ulike proteiner, f.eks. et DNA-bindende domene, et
transmembrandomene, et ATP-bindende domene osv. Ett slikt proteindomene vil tilsvare ett
DNA-segment, og ofte vil dette tilsvare et bestemt ekson. Vi kan anvende familiebegrepet også på
domener. Vi finner nesten 2000 ulike typer domener i vårt genom. 28 % av proteinene har mer enn ett
domene. Det er funnet ett bestemt protein som har totalt 130 domener, blant disse er det 9 ulike typer.
13.1.4 ncRNA-gener (noncoding RNA)
ncRNA betyr ikke-kodende RNA, altså ikke proteinkodende, ikke mRNA. Vi kan dele ncRNA i 6
grupper, og deres funksjon ble omtalt i 8.5. ( database )
tRNA-gener
Det er funnet ca. 500 tRNA-gener fordelt på mange kromosomer. Kromosom 6 har spesielt mange
tRNA-gener, ca.140, som er samlet i ett område. Vi har sett at det trengs 45 ulike tRNA-er (kap. 8.6).
Noen av disse har 4-5 genkopier, noen har over 30.
rRNA-gener
Genene for våre 4 varianter av rRNA finnes også i meget stort antall, fordelt på flere kromosomer.
Genene for 28S,18S og 5,8S rRNA ligger samlet og blir transkribert under ett, som en enhet på 44 kb.
Vi finner i alt ca. 200 slike enheter samlet i klynger på 5 ulike kromosomer. Man bruker betegnelsen
rDNA om dette. Cellen lager meget store mengder av rRNA for å bygge opp ribosomene, ca. 80 % av
cellens totale RNA er rRNA. Dette forklarer at det trengs et stort antall kopier av disse genene. Også
5S-rRNA-genet finnes i ca. 200 kopier, samt 2000 kopier som passive pseudogener.
13.2 IKKE-GEN DNA
Mesteparten av vårt DNA, kanskje 80 %, inneholder som nevnt ikke gener. En stor del av dette er
såkalt repetert DNA, dvs. at vi finner lange eller korte sekvenser som gjentas mange ganger.
13.2.1 Tandem repetert ( satellitt) DNA
De repeterte sekvensene kan ligge tett etter hverandre og i samme retning. De kalles da tandem repetert. Den repeterte enheten kan være fra 1-2 bp og opp til flere tusen bp lang. Hvis den repeterte enheten er kort kalles den mikrosatellitt DNA (1-8 bp) eller minisatellitt DNA (9-100 bp).
Navnet satellitt DNA kommer fra den gang dette ble oppdaget. Etter oppkutting av DNA fra eukaryote celler, og ultrasentrifugering i CsCl tetthetsgradient, fant man noen bånd som skilte seg fra det øvrige DNA ved mindre tetthet, noe som skyldtes et høyere AT- innhold. Det ble kalt satellitt DNA. Det må ikke forveksles med kromosomsatellitt, enden av enkelte kromosomarmer som synes adskilt fra det øvrige kromosom.
Vi finner mye tandemrepetert DNA i kromosomenes telomer (TTAGGG) og sentromer, men også
ellers overalt i kromosomene.
En liten minisatellittenhet kan f.eks. være:
..(ACGGATTACTAAACAAGACCT)n.
En mikrosatellitt kan være (CA)-repetisjoner, (CA)n:
....CACACACACACACACACACA...
VNTR
I mange slike satellitter finner vi at antallet repeterte enheter i ett bestemt locus kan variere fra person
til person (dvs. fra kromosom til kromosom), de er hypervariable. Ett kromosom kan ha 13 repeterte
enheter, et annet 16 eller 18, osv. Dette fenomenet kalles VNTR (variable number of tandem
repeats). Det er disse sekvensene som utnyttes når man lager en såkalt DNA-profil, som brukes til
identifikasjon i kriminalsaker m.m. Vi kan også finne variasjon av selve den repeterte sekvensen,
f.eks. GGGCAGGAXG, der X varierer fra en repetisjon til neste.
STR NIST om STR
Man bruker nå stort sett begrepet STR (Short Tandem Repeats) om mikrosatellitter, altså repetisjon
av korte sekvenser. Begrepet VNTR brukes vanligvis om de lengre minisatellittene. Du finner mer om
STR og analyse av dem i kap. 18.3. STR-er brukt i analyse
13.2.2 Spredt repetert DNA
Dette er bestemte DNA-sekvenser som det finnes masse kopier av, men kopiene ligger spredt på ulike kromosomer og kromosomdeler. Vi kaller det spredt repetert, eller innskutt repetert DNA. Dette kan deles i fire klasser: SINE, LINE, LTR og DNA transposoner. Samlet utgjør dette ca. 40 % av alt DNA! Se tabell 13.2. Opprinnelsen til disse og spredningen av dem blir omtalt i 13.4.2 og 13.5.9.
SINE (Short Interspersed Nuclear Elements)
Alu-familien tilhører gruppen SINE, og er en DNA-sekvens på ca. 300 bp som vi finner overalt i våre kromosomer. Totalt er det over en million av denne sekvensen, det finnes da en slik for hver 3 kb. De utgjør ca. 10 % av vårt genom! De finnes hovedsakelig utenom gener, men også i introner, og unntaksvis også i eksoner. Alu-sekvenser kan ha mindre variasjoner seg imellom, men inneholder alltid sekvensen AGCT. Navnet Alu kommer fra restriksjonsenzymet av samme navn, som gjenkjenner sekvensen AGCT. Dette enzymet kutter derved i alle Alu-sekvenser. Alu-sekvensen er spesifikk for primater, og den kan derved brukes til å gjenkjenne humant DNA fra annet DNA.
Alu-elementene inneholder en promoter for RNA polymerase III, og kan bli transkribert, men ikke translatert.
LINE (Long Interspersed Nuclear Elements)
Den mest utbredte av disse er L1 (LINE-1). Disse sekvensene er lenger enn Alu, opp til 6000 bp, og
det finnes flere hundre tusen av dem. De inneholder to åpne leserammer (ORF) og RNA polymerase
II-promotere. Disse kan bli transkribert og translatert, og dette har bidratt til at de har blitt kopiert og
spredt rundt i vårt genom. Se 13.4.2 og 13.5.9.
LTR (long terminal repeats) og DNA transposoner finnes det også flere hundre tusen av.
13.2.3 Unikt DNA
En stor del av vårt DNA er ikke gener og heller ikke repetert DNA. Det er da DNA med en eller annen
sekvens som er ulik annet DNA; det er unikt. Det blir hevdet at dette kan være tidligere gener eller
repeterte sekvenser som har forandret seg så mye at det ikke kan gjenkjennes lenger.
Ikke-gener = junk DNA ?
Mesteparten av vårt DNA er altså ikke gener. Foreløpig kjenner vi ingen spesiell funksjon for dette
utenomgeniske DNA. Er det bare søppel - junk, eller finner forskerne en mening eller funksjon for
dette DNA også? Inntil videre er det mange som bruker betegnelsen junk-DNA, men det kan hende at
de må slutte med det en gang i framtida.
13.3 mtDNA og her
mitomap - database for mtDNA
I våre mitokondrier finner vi et sirkulært DNA-molekyl på 16569 bp, dvs. 1/200000 av kjernens
haploide DNA. Til gjengjeld har de fleste celler 100-vis eller 1000-vis av mitokondrier, men bare én
kjerne. Mitokondrie-DNA (mtDNA) arver vi kun fra vår mor. Sædcellen avgir nemlig svært få eller
ingen mitokondrier til eggcellen ved befruktningen. MtDNA føres derved videre fra generasjon til
generasjon nesten utelukkende fra mor til datter, til datters datter osv. Guttene får også mitokondrier
fra sin mor, men gir dem som nevnt ikke videre til sine barn.
Mitokondrie-DNA har 13 proteinkodende gener, og disse 13 proteinene er med på å bygge opp enzymene for den oksidative fosforylering. Disse enzymene utøver sin funksjon i mitokondriene. I tillegg har mtDNA 22 gener for tRNA og 2 for rRNA. Mitokondriene har egne ribosomer og proteinsyntese, men det er bare mitokondrienes egne 13 gener (mRNA) som blir translatert her. Mitokondriene har sine "egne" 22 tRNA-typer, og klarer seg med dem. Ved proteinsyntesen i mitokondriene blir det brukt en litt annen genetisk kode enn i kjernen.
Hele 93 % av mtDNA er kodende, vi finner bare ett større sammenhengende område som ikke er
kodende. Mitokondriegenene blir transkribert av en egen RNA polymerase, som blir kodet av kjerne-DNA.
Mitokondriegenomet har mange likhetstrekk med bakterienes kromosomer.
1 Det er sirkulært.
2 Genene har ikke introner.
3 Genene sitter meget tett, dels overlappende.
4 Flere gener transkriberes samlet (det er bare en promoter i hver retning).
På nettsiden http://www.mitomap.org/ finner du informasjon om mtDNA. Mer om mtDNA og analyse
av det i 13.5.5.
13.4 POLYMORFISME
13.4.1 Hva er polymorfisme?
DNA fra to mennesker er i hovedsak identisk. I en DNA-sekvens på 500 basepar vil to tilfeldige
mennesker kanskje ha 499 like baser, og bare én ulikhet. Et menneske har ca. 3×109 bp DNA
(haploid), og vi skulle da finne ca. 6 mill. ulikheter mellom to tilfeldige mennesker. Tallet 1 av 500 må
ikke oppfattes som sikkert eller nøyaktig.
Polymorfisme
Når det forekommer to eller flere varianter av DNA i ett bestemt locus innen en populasjon, kalles det
polymorfisme. For å kunne kalles polymorfisme, må en slik variant forekomme med en hyppighet på
minimum 1 %. Hvis hyppigheten er lavere enn dette, kalles det en mutant eller en sjelden variant. Vi
finner selvsagt polymorfisme både i genenes eksoner og introner, og utenom gener.
SNP (WIKI) Basics fra NCBI SNP-consortium SNP Fact Sheet (HGP) DbSNP (NCBI)
Hvis en polymorfisme bare dreier seg om at én base er ulik, bruker man betegnelsen SNP ("snipp", single nucleotide polymorphism). En SNP kan ha oppstått ved en enkel punktmutasjon, og forekommer hvor som helst i kromosomene, både i gener og utenfor. I et ekson kan en SNP innebære en aminosyreforskjell, der den ene varianten er skadelig. Det er derfor mindre tetthet av SNP-er i kodende DNA enn ikke-kodende.
Som en del av det humane genomprosjektet har forskere sammenliknet DNA-sekvenser fra ulike
individer for å finne SNP-er. I februar 2001 var tallet på slike kjente SNP-er 1,42 mill, i 2005 har det
passert 4 mill. Det blir anslått at antallet SNP-er er 10 mill, dvs. en for hver 300 base. Det foregår et
utstrakt internasjonalt samarbeid for å kartlegge alle disse SNP-ene og andre polymorfismer i det
humane genom. Se kap. 18.8.2 og 18.7.5. dbSNP fra NCBI
VNTR / STR STR-database NIST om STR
En annen hovedgruppe av polymorfismer kan vi kalle lengde polymorfisme, LP. VNTR/STR er
eksempler på dette, og vi har allerede beskrevet hva disse begrepene står for (13.2.1).
Alleler
Hvis det finnes flere varianter (polymorfismer) av et gen snakker vi om flere alleler. De fleste
polymorfe gener har (fenotypisk sett) bare to eller evt. litt flere alleler, men det forekommer gener med
langt flere allelevarianter. Blodtypesystemet ABO har tre alleler. Når det gjelder genet for HLA-A finner
vi ca. 40 ulike alleler. Begrepet alleler brukes også om ulike varianter utenom gener, f.eks. SNP-er og
STR-varianter.
Ulik kromosomstruktur
Hvis vi sammenlikner ulike arter, vil vi finne stor grad av likhet (homologi) mellom gener som har en
liknende funksjon, men denne likheten er mindre jo fjernere slektninger vi snakker om. Mellom arter
vil vi også finne store ulikheter i hvordan genene er plassert og organisert, dvs. i hele kromosomstrukturen.
13.4.2 Hvordan forandres kromosomene?
I kap. 13.5 skal vi se på evolusjonen av det humane genom og andre genomer. La oss først se på
noen mekanismer for hvordan genene og kromosomene kan forandre seg, slik at polymorfismer kan
oppstå, nemlig enkle mutasjoner, replikasjonsglidning, ulik rekombinasjon og transposoner.
Enkle mutasjoner
Vi har sett at små mutasjoner skjer spontant og tilfeldig, særlig i forbindelse med feil under DNA
replikasjonen (kap. 9.1). Dette er punktmutasjoner som gir SNP-er, og dessuten små delesjoner og
insersjoner. Vi har tidligere diskutert mulige konsekvenser av dette.
Replikasjonsglidning ( replication slippage)
Dette er et fenomen som forekommer særlig ved replikasjon av mikrosatellitter, altså små
tandemrepeterte sekvenser. Den nye DNA-tråden som blir laget, kan da bli forskjøvet litt forover eller
bakover langs templaten under replikasjonen, den vil likevel passe til templaten (fig. 13.7). Resultatet
blir at antall repeterte enheter blir større eller mindre enn det var.
Ulik rekombinasjon
Under meiosen skjer det overkrysning og rekombinasjon mellom to homologe kromosomer. Denne prosessen er normalt meget presis, slik at den skjer ved samme locus i de to kromatidene som deltar. Hvis det er repetert DNA (satellitt eller repeterte gener), kan den ene kromatiden forskyve seg fra en repetert enhet til den neste. Hvis det skjer overkrysning nå, så vil det ene kromosomet miste et segment, og det andre vinne et segment (fig. 13.8).
Dette fenomenet er spesielt aktuelt for Alu-sekvenser, som er spredt repetert. Vi finner en Alu-sekvens for hver 3 kb DNA. Hvis vi får overkrysning mellom to ulike Alu-sekvenser (ikke-alleliske), vil det ene kromosomet miste biten mellom dem, og det andre få dobbelt opp av samme bit. Denne biten kan godt inneholde et gen. På denne måten kan Alu-elementene bidra til store forandringer i kromosomene.
(Tidsskriftet/Rune Andreassen om Alu og sykdom)
Transposoner
I kap. 12 omtalte vi transposoner, DNA-områder som kan kopieres og flyttes, spesielt i bakterier. Dette kan også skje med vårt DNA. Det er noe av bakgrunnen for den store mengden av spredt repetert DNA, f.eks. Alu, og for at noen gener finnes i flere kopier. Dette er en viktig mekanisme for evolusjonen av ulike genomer.
Både LINE og SINE (bl.a. Alu) har blitt spredt ved at det først lages et RNA-transkript av dem, deretter
DNA som blir satt inn i et kromosom. Det kalles da et retrotransposon . Dette blir omtalt nærmere i
kap. 13.5.9.
Duplikasjon, translokasjon og stokking
Det kan tenkes at både replikasjonsglidning, ulik rekombinasjon og transposisjon kan skje over større avstander, også mellom ulike kromosomer. Vi kan da få kopiert og flyttet hele gener eller flere gener. Resultatet kan bli en genduplikasjon . Hvis en ny genkopi havner på et annet kromosom kalles detgentranslokasjon (fig. 13.9). Det samme kan skje med en del av et gen, f.eks. et ekson. Et ekson kan flyttes fra ett gen over til et annet. Hvis rekkefølgen eller sammensetningen av eksoner blir endret kalles det eksonstokking (exon shuffling) . På proteinnivå får vi da få stokking av domener.
Etter en slik genduplikasjon vil vi ha to eller flere kopier av ett gen. Disse to kopiene vil kunne utvikle seg mer eller mindre ulikt pga. mutasjoner (fig. 13.10). Vi kan da få to gener med samme funksjon eller beslektet funksjon. Hvis den ene genkopien muterer slik at den ikke lenger gir noe funksjonelt protein, kalles det et pseudogen, som ofte betegnes med bokstaven psi (y).
Et prosessert pseudogen ( artikkel ) har oppstått på en annen måte. Cellen har da laget DNA fra et
vanlig mRNA ved hjelp av enzymet revers transkriptase. Deretter har dette DNA blitt integrert i et
kromosom. Dette er et retrotransposon . Et slikt "gen" vil mangle introner og promoterområdet, og vil
ikke være funksjonelt (fig. 13.11). ( LINE og pseudogener )
Det kan også forekomme at DNA (et gen) kan blir overført fra en art til en annen, f.eks. fra bakterie til
pattedyr. Slik overføring mellom arter kalles horisontal genoverføring .
13.5 EVOLUSJON gen-sentrert evolusjonsteori
Linker til human evolusjon: |
|
|
|
|
|
13.5.1 Naturlig utvalg, seleksjon
Vitenskapen om den biologiske evolusjonen startet da Charles Darwin utga sitt hovedverk "artenes opprinnelse" (The Origin of Species by Means of natural Selection) i 1859. Grunnlaget for den biologiske evolusjonen er naturlig utvalg eller seleksjon (natural selection) , dvs. utvalg/seleksjon av de best tilpassede. Teorien sier at de best tilpassede individer får flere avkom enn de andre. Det medfører at deres alleler vil bli ført videre i større grad enn andre, og derved vil disse allelene øke sin hyppighet (frekvens). Mutasjoner som gir dårlig tilpasning, vil ikke bli ført videre i stor grad, de utsettes for negativt seleksjonspress.
Grunnlaget for en slik seleksjon er at det finnes en variasjon av alleler innen populasjonen. Denne variasjonen skyldes mutasjoner, men lokalt kan også innvandring (migrasjon) gi økt variasjon.
I små populasjoner kan tilfeldigheter føre til både en rask og annerledes utvikling enn naturlig seleksjon tilsier. Da kan noen alleler forsvinne fra én generasjon til neste, og andre alleler bli dominerende, uavhengig av om de er "gode eller dårlige". Vi kaller dette genetisk drift. Slike små populasjoner kan oppstå på flere måter, f.eks. manglende ressurser over lang tid (mat, plass m.m), store naturkatastrofer, overdreven jakt m.m. Dette fenomenet kalles en genetisk flaskehals (bottle neck ). Bare noen få individer kommer gjennom flaskehalsen (overlever), og deres gener vil dominere fra da av.
Noe liknende kan skje hvis en liten gruppe individer forlater en populasjon og starter en ny. Denne lille gruppen kan "ta med seg" bare et spesielt utvalg av alleler, som da blir dominerende i den nye populasjonen. Dette kalles foundereffekt (founder = grunnlegger).
Det motsatte av genetisk evolusjon er genetisk likevekt, at frekvensen av alleler holder seg konstant
over tid. Forutsetningene for dette ble satt opp i 5 punkter i kap. 1.6 (populasjonsgenetikk,
Hardy-Weinbergs lov).
13.5.2 Molekylær evolusjon
Tradisjonelt har man studert evolusjon av fenotyper , men nå kan vi studere den molekylære evolusjon, utviklingen av DNA og proteiner. Moderne analysemetoder har gitt oss helt nye muligheter til dette. Ved å sammenlikne både DNA-sekvenser og hele genomstrukturer kan vi tegne et meget detaljert bilde av livets utvikling på jorda. Å studere molekylær evolusjon gir store muligheter og har store fordeler framfor tradisjonelle studier av fenotype:
1. Molekylære data er genetiske. Man unngår å blande inn egenskaper som ikke er genetisk basert, men miljøbestemt.
2. Man kan studere alle organismer, siden DNA er likt for alle. Mange fenotyper kan være vanskelig å definere og observere.
3. Den genetiske variasjon er enorm, mye større enn den er for fenotyper. Det er mange varianter av ett gen, og vi kan dessuten studere variasjoner utenom genene.
4. Vi kan sammenlikne ulike arter, siden DNA er likt, og mange gener er felles.
5. Molekylære data er kvantitative, vi kan måle ulikheter i DNA kvantitativt.
6. Moderne DNA-analyser har gitt oss enorme datamengder til å studere og sammenlikne genomer.
13.5.3 Homologe sekvenser
Vi kan sammenlikne ett bestemt gen fra to ulike arter for å finne ut hvor nære eller fjerne slektninger de er. Vi tenker oss da at de to artene har en felles forhistorisk stamfar. Når det så ble et skille til to arter, har disse genene utviklet seg hver for seg og derved ulikt. En slik ulik utvikling i hver sin retning, kalles divergent. En divergent utvikling vil medføre mindre og mindre grad av homologi, jo lenger tid som går. På tilsvarende måte kan vi tenke oss ett gen som blir duplisert til to kopier hos en art. Disse to genkopiene vil også utvikle seg ulikt fra da av (se fig. 13.10). Denne sammenlikningen av sekvenser kan gjøres på proteinnivå eller DNA-nivå, og vi kan også bruke ikke-kodende DNA.
To homologe sekvenser fra ulike arter kalles ortologe, f.eks. b-utgaven av hemoglobin hos menneske
og mus. To homologe sekvenser hos samme art kalles paraloge , f.eks. b- og e-utgaven av
hemoglobingenet hos mennesker.
Proteiner, aminosyrer
Hvis to aminosyresekvenser er relativt like, kan man enkelt telle antall ulike aminosyrer. Her ser du en
liten bit av b-globinkjeden hos menneske og kylling:
MVHLTPEEKSAVTALWGKVNVDEVGGEALGRLL
MVHWTAEEKQLITGLWGKVNVAECGAEALARLL
Vi kan se at sekvensene er like, bortsett fra 9 av 33 aminosyrer.
I fig. 13.11 ser vi 4 sekvenser av cyt C fra 4 ulike arter. Det er fullt mulig å telle ulikhetene mellom menneske og gris, men hvis vi prøver på menneske og mais er det ikke så lett. Dette skyldes at det ikke bare har skjedd substitusjoner, men også delesjoner.
Hvis vi skal sammenlikne to sekvenser, må vi sammenstille dem på den best mulige måten, slik at likhetene kommer fram. Dette kalles alignment på engelsk (svensk: linjering). Her trenger vi datamaskiner og dertil egnede dataprogrammer.
La oss se på et par enklere eksempler for å illustrere problemstillingen.
Vi har to aminosyresekvenser
1 QLVEASAGESTTFEHLKSSD og
2 SLVSASEGESAKSEDDKESS
Hvor stor likhet er det mellom disse? Vi kan sammenstille dem slik de står, og finner da 9 like
aminosyrer, markert grønt.
1 QLVEASAGESTTFEHLKSSD
2 SLVSASEGESAKSEDDKESS 9/20
Men vi kan også lage et mellomrom (gap) i sekvens 2, noe som kan skyldes en delesjon i
evolusjonen. Vi får da større likhet, nemlig 11. Men vi har innført et gap, noe som også reperesenterer
en forskjell.
2 QLVEASAGESTTFEHLKSED
3 SLVSASEGESA-----KSEDDKESS 11/20
Dataprogrammer kan lage den best mulige sammenstilling av slike sekvenser, og regner ut graden av
homologi. Man må da legge visse premisser for hvordan dette gjøres og hvordan homologi regnes ut.
DNA, baser
La oss også ta med et enkelt eksempel på sammenstilling av DNA-sekvenser. Vi har to
DNA-sekvenser på 10 baser:
1 ACCTGGCCAG
2 ACTGCGCCCG 6/10
Vi ser at 6 av 10 baser er like. Men hvis vi forskyver sekvensene litt kan vi få 8 av 10 like baser. Vi må
da innføre ett mellomrom i begge sekvenser. Dette vil tilsvare en liten delesjon/ insersjon i evolusjonen.
1 ACCTG-GCCAG
2 AC-TGCGCCCG 8/10
13.5.4 Fylogentiske trær (fra 16SrRNA
På grunnlag av homologi i aminosyre- eller basesekvens kan man konstruere et fylogenetisk tre eller stamtre over utviklingen og slektskapet for disse artene. Figur 13.14 viser et stamtre som bygger på aminosyreulikheter i hemoglobinets -kjede. Vi har da sammenliknet -globin hos menneske og noen andre nærstående pattedyr. Forskjellene fra menneske er: Gorilla-1, gris-17, hest-26.
Et fylogenetisk tre har vanligvis en rot, dvs. et startpunkt der alle artene hadde felles stamfar. Fra roten vil treet dele seg i to, noe som representerer et skille til to arter. Dette kalles grenpunkt (node). Vi får så flere grenpunkter, slik at hver art ender opp på enden av en gren. Slike trær kan ha ulike strukturer, og artene kan plasseres i ulike slektskapsforhold. Med tre arter har vi bare en grenstruktur, men tre mulige slektskapsforhold (se fig. 13.15). Med 4 arter har vi to ulike grenstrukturer og 15 mulige slektskapsforhold. Man kan velge om treet skal tegnes med loddrette grener eller med skrå grener, evt. vannrett grener, som i fig. 13.16. For å avgjøre hvilket av disse bildene som er riktig, kan vi studere homologi i proteiner eller DNA. Med mange arter krever dette dataanalyse, og det er en del av moderne bioinformatikk. Man må da sammenstille sekvenser fra en lang rekke arter og analysere dette, gjøre en såkalt multippel sekvenssammenstilling ( multiple sequence alignment) .
Vi tenker oss at vi har 3 arter (A, B, C), og graden av homologi er funnet å være slik: AB 70 %, AC 90 %, BC 65 %. Da må A og C være nærmest i slekt av disse, og ha skilt lag senest i evolusjonen, mens B ble skilt ut som egen gren først. Dette alternativet er vist med blått i figuren, rekkefølge ACB. Hvis vi skriver CAB, så er det samme tre og samme slektskap. Vi tenker oss så at vi har 4 arter (A, B, C, D) der homologien er slik: AB 70 %, AC 50 %, AD 70 % og DB 90 %. Disse resultatene stemmer med det røde alternativet i figuren. Disse tallene er enkle og idealisert for å være illustrerende. I praksis er selvsagt slike data ikke like entydige og lette å tolke, og det er en av de store utfordringene innen bioinformatikk.
Melcher om trestruktur
Figur 13.16 viser to ulike teorier for slektskapet mellom menneske, sjimpanse og gorilla. Analyse av
mtDNA har vist at sjimpansen er nærmere i slekt med gorilla enn med oss (B). Men grundigere
analyse av en rekke utvalgte gener og DNA-sekvenser viser at sjimpansen er mer i slekt med oss enn
med gorilla (A).
Gentrær
Vi kan også sette opp et stamtre for en genfamilie hos en art, f.eks. globingenene hos mennesker. Mennesket har 5 aktive kopier av genet for -kjeden i hemoglobin: , G, A, og . Disse 5 genene har varierende grad av homologi. På grunnlag av dette har man laget et stamtre for denne genfamilien, et gentre (fig. 13.17). Også genet for -kjeden i hemoglobin og myoglobin har stor likhet med disse, og er med i samme familie. Vi tenker oss at det opprinnelig var bare ett globin-gen, dette genet ble så duplisert, slik at det ble to kopier av det. Disse kopiene har deretter utviklet seg ulikt. Siden har det skjedd flere genduplikasjoner.
Gentre/fylogenetisk tre (fra Genomes-2)
Gen og art
Vi kan også sammenlikne ulikhetene innen en art med ulikhetene mellom arter. Det er f.eks. større likhet mellom -genene hos menneske og mus (82%) enn mellom - og -genet hos menneske (72%). Det kan tyde på at disse to genene ( og ) skilte lag før menneske og mus ble adskilt som separate utviklingsveier (se fig. 13.18). Hvis vi kan tidfeste utviklingen (se 13.5.5), blir dette tydeligere. - og -genene skilte lag for 200 mill.år siden. Menneske og mus skilte lag for 80 mill.år siden. Dette understøtter framstillingen i fig. 13.18.
Amphioxus (niøye) er den nærmeste slektningen til virveldyrene, som ikke selv er virveldyr (den er
etryggstrengdyr). Den har bare ett hemoglobin-gen. Det betyr at utviklingslinjen til menneske og niøye
har skilt lag før hemoglobingenet ble skilt i - og -globin. Dette var for ca. 500 mill. år siden. I
Amphioxuslinjen har det da ikke skjedd noen genduplikasjon, slik det har i linjen til mennesket.
13.5.5 Evolusjonshastighet (rate)
DNA
Hvor lang tid tar det før vi får byttet ut (substituert) en base i et gen, altså har fått en punktmutasjon, slik at den blir dominerende i hele populasjonen? Vi kaller denne størrelsen for substitusjonsraten. Vi kan måle den i antall substitusjoner pr. base pr. år (subst / base år). Vi tenker oss et gen på 1000 bp, og at det har skjedd 5 basesubstitusjoner på 1 mill. år.
Raten er da (5/1000) / 106 = 5×10-9. En rate på 1×10-9 betyr én substitusjon pr. 1000 baser pr. mill.år. I
engelsk litteratur brukes enheten Myr = million years.
Genområder
Substitusjonsraten er forskjellig for ulike deler av et gen. Dette er vist i tabell 13.3. Vi ser at raten for
ikke-synonyme substitusjoner (dvs. aminosyrebytte) er mye lavere enn for synonyme og for
ikke-kodende DNA. En forandring av en aminosyre kan medføre en endring av fenotype. Denne
forandringen vil normalt være negativ, og derved vil det være et seleksjonspress mot slike mutanter.
De blir eliminert ved naturlig seleksjon. Mutasjoner som ikke har noen fenotypisk virkning vil ikke ha
noe slik press mot seg, og kan lettere bli etablert i populasjonen.
Aminosyrer
Vi kan også se på substitusjonsraten for aminosyrer i proteiner. Dette tilsvarer ikke-synonyme substitusjoner på DNA-nivå. Tabell 13.4 viser hvor stor ulikhet det er mellom a-kjeden i hemoglobin hos noen ulike arter. Dette proteinet er 141 aminosyrer langt. Menneske og mus har 16 ulike aminosyrer, dvs. en andel på 16/141 =0,113 (ulikheter pr. aminosyre). Vi vet at vi (dvs. våre forgjengere) skilte lag i evolusjonen for 80 mill. år siden. Vi har utviklet oss hver for oss i 80 mill. år. Det har skjedd forandringer både i mus og menneske, altså i 2×80 = 160 mill. år totalt. Antall forandringer pr. år blir da: 0,113/160×106 = 0,71×10-9. Menneske og kylling har en ulikhet på 35 aminosyrer. Vi kan da beregne når mennesker og kylling en gang hadde felles opphav, hvis vi antar samme substitusjonsrate. Det blir:
(80 mill.år /16) × 35 = 175 mill. år Eller slik:
(35/141) / (0,71´10-9 ´2) = 175 mill. år.
Ulrich Melcher (Protein Evolution)
I eksempelet foran brukte vi aminosyreforskjeller som en molekylær klokke. Vi måtte da anta at
substitusjonsraten var konstant i ulike arter og til ulike tider. For ett og samme protein kan dette være
tilnærmet riktig. Ved å studerer forskjellen i aminosyresekvens kan vi da anslå hvor lenge det er siden
de hadde felles opphav. Vi kan gjøre det samme med DNA-sekvenser. Men den molekylære klokke
er meget ulik for ulike proteiner, for ulike gener og for ulike DNA-områder, som vi skal se.
Konserverte gener og seleksjonspress
Det er som nevnt stor forskjell i substitusjonsraten mellom ulike gener. Gener eller genområder som har lav rate forandrer seg meget lite over tid. Vi sier at de er konserverte. Dette gjelder da både på DNA- og proteinnivå. Det kan komme av at proteinproduktet spiller en sentral rolle i dyrets utvikling. Eventuelle endringer vil ha stor konsekvens, og vil bli sterkt selektert mot. Det er da et seleksjonspress mot forandring. Blant de mest konserverte genene finner vi genene for histoner og ribosomale proteiner, og regulerende proteiner generelt. Blant de mindre konserverte er mange enzymgener. Dette framgår av tabell 13.6 som sammenlikner muse- og menneskegener.Stor grad av homologi indikerer konserverte sekvenser.
For hemoglobin er det beregnet at det har tatt ca. 10 mill. år for å skje ett aminosyrebytte pr. 100
aminosyrer. For cytokrom C har det tatt ca. 20 mill.år, og for histon H4 200 mill.år. For sterkt
konserverte gener går den molekylære klokke meget langsomt.
Introner og UTS
Tabell 13.5 viser hvor stor likhet (homologi) det er mellom ulike deler av b-globingenet mellom ulike arter. Vi ser at det er størst likhet i kodende DNA (eksoner), litt mindre likhet i UTR-områder (UTS), og enda mindre i introner. Intronene er mindre konservert enn eksonene fordi forandringer her ikke har så stor negativ virkning som i eksonene.
Vi kan også analysere og sammenlikne DNA utenom genene. Her er seleksjonspresset enda mindre, og dette medfører at det skjer en raskere endring, vi får enda mindre grad av homologi mellom ulike arter.
For å studere evolusjon over lang tid, helt tilbake mot livets opprinnelse, er det en fordel å se på gener
som er sterkt konserverte.
mtDNA
Linker til human evolusjon og mtDNA: http://evolutsioon.ut.ee/links.html
blir mye brukt i evolusjonsstudier. En befruktet eggcelle (zygote) kan inneholde rundt 100000 mitokondrier, og alle disse kommer fra eggcellen, ingen fra sædcellen. Hver mitokondrie har 2-10 DNA-molekyler. Normalt er så å si alle mtDNA i en celle like, det kalles homoplasmi.
Det skjer oftere mutasjoner i mtDNA enn i kjerne-DNA. Dette kan bl.a. komme av at DNA reparasjonssystemet i mitokondriene er dårligere enn i kjernen, og at det oksiderende miljøet i mitokondriene er skadelig for DNA. Men selv om ett mtDNA-molekyl får en mutasjon, vil ikke de andre få den samme mutasjonen. Det skal derved mye til for at en slik mutasjon blir fiksert, dvs. blir dominerende.
Vi tenker oss et mutert mtDNA i en zygote. Det muterte mtDNA vil også replikeres, så cellen vil etter hvert inneholde en del av disse. En zygote vil dele seg gjennom en rekke mitoser og bl.a danne nye eggcelleanlegg (kimbanen). Disse cellene vil etter hvert ha relativt få mitokondrier, fordi cellene deler seg raskere enn de vokser. Ved hver deling blir mitokondriene fordelt tilfeldig på dattercellene. Derved kan tilfeldighetene gjøre at en eggcelle får en høy andel av mutert mtDNA Hvis denne cellen blir befruktet vil barnet arve mye av et mutert mtDNA (en flaskehalseffekt). Forskjellen i mtDNA-sekvens fra generasjon til generasjon skyldes da mutasjoner som har skjedd i kvinnenes kimbane.
Alt dette gjør at mtDNA egner seg spesielt godt til å studerer slektskap. Forskjell i mtDNA-sekvensen kan brukes til å påvise slektskap over kort tid, faktisk fra generasjon til generasjon. Det er særlig ett område av mtDNA, som ikke er kodende ("D-loop") som blir brukt til slik studier. Her er substitusjonsraten ekstra høy, slik at den molekylære klokke går fort. Menneskets "opprinnelse" og evolusjon er blitt grundig studert og belyst gjennom slike studier. Se 13.5.10.
Analyse av mtDNA blir også brukt til å finne slektskap mellom ulike raser/stammer av ville dyr eller
husdyr. Man kan finne ut hvilken populasjon eller stamme en bestemt torsk tilhører ved å ta en bit fra
en middagstallerken og analysere DNA fra denne. Man kan finne ut hvilken rase en katt tilhører bare
ved å analysere et kattehår, osv.
Også Y-kromosomet nedarves uten rekombinasjon, og kan utnyttes på liknende måte som mtDNA.
Men Y-kromosomet nedarves kun fra far til sønn til sønn osv, mens mtDNA nedarves fra mor til datter
til datter.
13.5.6 Opprinnelsen til eukaryote celler
I kap. 8 ble det nevnt at man kan dele levende organismer i tre grupper: eukaryote, eubakterier og
urbakterier (archaea). Det er klare ulikheter mellom disse tre gruppene når det gjelder organiseringen
av DNA. La oss se litt på hvordan eukaryote celler kan ha oppstått.
Timeline (from the beginning..)
Eukaryote har mesteparten av sitt DNA i kjernen, og litt mitokondrie-DNA i tillegg. Vi har sett at
mtDNA har mange likhetstrekk med prokaryot DNA (kap. 13.3). Man antar nå at mitokondriene er
rester etter en prokaryot celle som ble oppslukt av en "protoeukaryot" celle, ved endocytose (fig.
13.19). Denne protoeukaryote cellen kan ha vært anaerob, mens den prokaryote var aerob, den
inneholdt altså gener for oksidativ fosforylering m.m. Derved ble den protoeukaryote cellen aerob.
Dette må ha vært en fordel, siden jordkloden på den tiden begynte å inneholde oksygen. Etter dette
antar man at deler av det prokaryote DNA ble overført til cellens kjerne-DNA, og resten av den
oppslukte bakterien ble en mitokondrie. Noen få gener har blitt igjen i mitokondriene, som også har
beholdt sitt eget apparat for proteinsyntese.
13.5.7 Utviklingen av eukaryote genom Fra HMG-2 Fra Genomes-2
Kjerne-DNA har altså sitt opphav fra en protoeukaryot celle og litt fra en prokaryot bakteriecelle. I tidens løp har DNA-segmenter blitt kopiert, flyttet, stokket om, til og med hele genomer kan ha blitt duplisert. Ett resultat av dette er at DNA-mengden i kjernen har økt betydelig. Dette gjelder antall gener, men i enda større grad repetert DNA.
Gener eller gensegmenter kan også bli overført fra en art til en annen, jf. den tidlige utviklingen av
eukaryote celler. Dette kalles horisiontal (eller lateral) genoverføring. Dette kan f.eks. skje ved hjelp av
virus som kan overføre og integrere DNA i våre kromosomer.
HOX-genene og kromosomduplikasjoner
homeobox page
HOX-genene ( OMIM ) er med på å styre den tidlige foster-utviklingen hos dyr, deres funksjon er helt
avgjørende for å overleve. Disse genene er derfor meget konserverte, altså nokså like fra art til art.
Studier av disse genene kan tyde på at det har skjedd to runder med store genduplikasjoner tidlig i
utviklingen av virveldyrene.
Hos mennesket finner vi 4 klynger av HOX-gener, klynge A på kromosom 7, B på 17, C på 12 og D på kromosom 2. Disse klyngene inneholder 9-11 HOX-gener, A1, A2..., B1, B2 osv. (se fig. 13.20). Det er større likhet mellom genene A4, B4, C4 og D4, som ligger i hver sin klynge, enn det er mellom A1, A2, A3 og A4 i samme klynge. Det tyder på at hele sett av disse genene må ha blitt duplisert og flyttet sammen relativt sent i utviklingen. Ett sett (A1, A2, A3 osv.) har eksistert sammen i lang tid og utviklet en viss ulikhet. Så har hele settet blitt duplisert og translokert, men ikke rukket å utvikle noen særlig ulikhet (mellom A1, B, C1 osv). Man antar at det har vært 13 HOX-gener i starten av virveldyrenes utvikling, og at noen senere har blitt mistet fra enkelte av genklyngene. Fra HMG-2
Hos Amphioxus (se 13.5.5) finner vi bare ett sett av HOX-gener, med 12 av disse genene. Disse har også stor likhet med våre (og andre virveldyrs) HOX-gener. Dette underbygger at det har skjedd to runder med duplisering av hele HOX-genklyngen tidlig i virveldyrenes utvikling, slik at de fikk 2×2 = 4 sett av disse genene. Det hevdes også at det har skjedd andre store genduplikasjoner i samme periode, noe som kan ha lagt grunnlag for virveldyrenes enorme utvikling på jorden.
Også hos bananflue finner vi mange HOX-gener som ligger i en klynge. HOX-genklyngen antas å ha oppstått ved duplikasjon fra ett "ur-gen" for kanskje 1000 mill.år siden.
HOX-genene styrer som nevnt viktige trinn i tidlig forsterutvikling. De koder for transkripsjonsfaktorer
som regulerer genekspresjonen. Alle disse genene inneholder en DNA-sekvens på ca. 180 baser
som kalles homeoboks. Homeoboksen koder for et DNA-bindende domene på 60 aminosyrer, som
kalles homeodomenet, og dette er et sinkfingermotiv (se fig. 4.10). Homeoboksen finnes i en lang
rekke regulerende gener.
Hvorfor har vi introner?
Prokaryote har ikke introner, eukaryote har, og pattedyr har aller mest. Intronene hos pattedyr er mye større enn hos f.eks. fisk. Mange vil nok mene at intronene er en ulempe, og at det derfor er rart at de har oppstått og utviklet seg mer og mer. Intronene har antakelig utviklet seg særlig sterkt i en sen periode av livets utvikling, nemlig "patterdyrenes tidsalder", for noen få 100 mill.år siden. De fleste intronene er ikke godt konserverte, de har utviklet seg ulikt hos ulike arter. Noen introner viser imidlertid større grad av homologi mellom arter, f.eks. enkelte introner i b-globinfamilien. Dette kan tyde på at disse intronene har en funksjon, f.eks. i genregulering.
Oppsplittingen av genene i eksoner og introner kan ha gitt større muligheter for å utvikle nye
proteiner. Avgrensede proteindomener kan settes sammen på nye måter og gi et nytt mangfold av
proteiner. Alle de "unyttige" repeterte sekvensene, som vi har så mange av, kan også ha bidratt til at
gener og gensegmenter har blitt kopiert og flyttet.
Horisontal genoverføring
Analyse av humane DNA-sekvenser tyder på gener må ha blitt overført fra bakterier til virveldyr for
relativt kort tid siden. Disse genene viser stor likhet med bakteriegener, men ikke med gener hos
virvelløse dyr. Dette kalles horisontal genoverføring, og det dreier seg om hundre gener eller mer.
13.5.8 Artsforskjeller
To tilfeldige mennesker er kanskje er 99,9 % like i sitt DNA. Menneske og sjimpanse er ca. 98 % like,
menneske og gris 90 % like. Dette kan kanskje virke urovekkende for noen, som vil tolke dette slik at
mennesker er 90 % gris? Men disse tallene viser bare likheten i avgrensede DNA-sekvenser som har
samme funksjon, f.eks. genet for ett bestemt enzym. Det er ikke ved å sammenlikne slike sekvenser
at vi kan forklare artsforskjellene. Da må vi se på hele strukturen av kromosomene, hvor genene er
plassert i forhold til hverandre, hvordan de kontrolleres, og hvordan de påvirker hverandre. Da blir
summen av forskjeller så stor at vi får delt opp dyr og planter i ulike arter . I følge den klassiske
definisjonen av art kan to individer av ulik art ikke få (fruktbart) avkom sammen. Dette har bl.a.
sammenheng med store ulikheter i kromosomstruktur.
Blokker og segmenter
Alle pattedyr har omtrent samme mengde DNA og de samme genene. Men organiseringen av alt dette kan være svært ulik. Fig. 13.21 sammenlikner kromosomene hos mus og menneske. Vi finner de samme kromosomsegmentene (eller blokkene), men de er plassert på ulike kromosomer. Dette skyldes store rearrangeringer som har skjedd siden vi hadde felles stamfar med mus for ca. 80 millioner år siden, dvs. genduplikasjon, translokasjon, eksonstokking m.m., se kap. 13.4.2.
Vi ser at et musekromosom inneholder store blokker som tilsvarer en del av et bestemt menneskekromosom. En slik kromosomblokk som finnes hos to arter inneholder omtrent det samme sett med gener. Hvis genene i en slik blokk hos to arter har samme rekkefølge, kalles det gjerne et segment. Man bruker begrepet synteny om to eller flere gener som ligger på samme kromosom. Segmenter eller blokker representerer da en konservert synteny. Det er en gruppe med gener som har blitt flyttet rundt, men holdt sammen i evolusjonens løp. På X-kromosomet finner vi stor grad av konservert synteny mellom mus og menneske. De inneholder i stor grad de samme genene og delvis i samme rekkefølge.
Mus og menn Fra NCBI Fra HMG-2 Fra Sanger
Figur av homologi hos menneske- og musekromosomene
Vi er spesielt interessert i å sammenlikne vårt genom med musegenomet. Dette skyldes at mus
brukes som forsøksdyr i medisinsk forskning. Det er derfor viktig å kjenne til likheter og ulikheter i
hvordan genene blir uttrykt og kontrollert. Figur 13.21 viser at vi kan finne store kromosomblokker
som tilsvarer hverandre, men de er fordelt på ulike kromosomer. Totalt kan vi dele opp våre genom i
ca. 200 blokker som kan finnes hos begge arter, men på ulike steder. Her er noen viktige likheter og ulikheter.
•Vi har omtrent samme mengde DNA, 3,2×109 bp (mus har 14 % mindre).
•Mus har 20 par kromosomer, vi har 23.
•Proteinkodende gener (ortologe) viser typisk 80-95 % homologi. Men det finnes ikke ortologer til alle våre gener.
•Vi har antakelig litt flere gener enn mus, vurdert ut fra bl.a antall CpG-øyer, men begge har ca. 25000 gener.
•Genenes rekkefølge er bare delvis lik, og bare innen små segmenter av kromosomene.
•Små introner kan ha noe homologi, men dette er vanskeligere å finne hos store.
•Telomer minisatellitten er lik, TTAGGG.
•Repetetivt ikke-gen DNA er meget ulikt.
NCBI om musegenomet
Tabell 13.6 viser at graden av likhet (homologi) mellom ulike typer proteiner hos menneske og mus
varierer fra 98 til 66 %. Ulikheten mellom disse proteinene er en god illustrasjon på hvilke
gener/proteiner som er konserverte.
Mennesker og og aper Fra HMG-2 New Scientist
Vi er selvsagt også interessert i sammenlikne oss selv med våre nærmeste slektninger,
menneskeapene, dvs. sjimpanse , orangutang og gorilla. Av disse er sjimpansen vår aller nærmeste
slektning, med felles opphav for ca. 5 mill. år siden, de andre 7-8 mill.år. En sammenlikning med
sjimpansen viser ca. 99 % likhet i kodende DNA, og stor likhet også i ikke-kodende. Størst forskjell
finner vi i repetert DNA, f.eks. mikro- og minisatellitter. Den repeterte Alu-sekvensen finnes også hos
de andre apene, men ikke andre pattedyr.
Noen benekter fremdeles evolusjonen (kreasjonistene)
FOXP2 og språket
Språket er ett av de trekk som skiller oss fra sjimpansen og alle andre dyr. La oss derfor ta med
historien omFOXP2-genet ( OMIM ).Dette er et gen som er avgjørende for utvikling av talespråket
(hos mennesker). Genet finnes også hos andre dyr, og det er et av de mest konserverte man har
funnet. Genet koder for et protein (en transkripsjonsfaktor) på 715 aminosyrer. Forskjellen mellom
menneske og mus er tre aminosyrer, sjimpanse og mus én aminosyre, menneske og sjimpanse to
aminosyrer. I utviklingslinjen mot sjimpanse/menneske fra mus, på 100 mill.år, har det bare skjedd ett
aminosyrebytte. Det har så skjedd to aminsoyrebytter på linjen mot mennesker fra sjimpanse, på fem
mill. år, antakelig for bare 200000 år siden. Det blir spekulert på om disse mutasjonene har vært
avgjørende for utviklingen av talespråk hos mennesker. Museforsøk har vist at genet påvirker enkelte
trekk i hjernens utvikling. Dette genet ble "oppdaget" gjennom familien "KE" i England, der en lang
rekke individer ikke hadde normal taleevne, og arvemønsteret for denne defekten var vanlig enkelt
autosomal dominant. Familien KE hadde en enkel mutasjon i FOXP2-genet.
13.5.9 Repeterte sekvenser
LINE-elementer inneholder en promoter for RNA polymerase II, samt to åpne leserammer (ORF) (se fig. 13.6). Sekvensen kan derved bli transkribert til RNA som kan bli translatert til protein, det ene av disse kan være revers transkriptase (RT). Både RNA-produktet og proteinet kan gå inn i cellekjernen. Der blir RNA gjort om til DNA ved hjelp av revers transkriptase, og kan bli satt inn i et kromosom. Man mener at disse elementene kom inn i kromosomene for 150 millioner år (Myr) siden, og nå er det over en mill. kopier av dem. De siste 50 Myr har det ikke vært noen særlig spredning av LINE-elementer.
Også SINE (bl.a. Alu-elementene) har spredd seg på en liknende måte. De har en polymerase III-promoter, men lager ikke noe protein. Den må "låne" RT fra LINE. Alu-elementene har fremdeles en viss spredningsaktivitet.
Vi finner LINE i genfattige og GC-fattige områder, mens Alu er i GC-rike områder, ofte med mye gener. Vi har sett at Alu-elementer kan spres både som transposoner og ved ulik rekombinasjon. Disse elementene vil kunne forstyrre ekspresjonen av vanlige gener, og det er rapportert om en rekke genetiske sykdommer som skyldes dette. ( LINE og pseudogener )
Alu-elementene har altså spredd seg enormt i vårt genom opp gjennom evolusjonen , tilsynelatende uten noen fenotypisk virkning eller "nytte" for oss. Det er derfor blitt kalt selfish DNA - egoistisk DNA og parasittiskDNA. Siden Alu i tillegg må låne enzymene fra andre for å spre seg, er det blitt kalt parasittenes parasitt.
Det er også en teori går ut på at noen Alu-elementer kan bli transkribert til et RNA som binder seg til et protein, og hindrer dette i å hemme transkripsjon. Derved kan Alu-RNA stimulere transkripsjon.
Spørsmålet etter dette er da om ikke Alu og andre liknende elementer kan defineres som gener?
13.5.10 Genetisk diversitet Prosjektet Fra Stanford
Vi har omtalt ulike typer polymorfisme hos mennesker. Graden av genetisk ulikhet mellom individer av samme art kalles også diversitet. Dette kan måles både langs kodende DNA og ikke-kodende, og vi kan bruke mitokondrie-DNA. Ett av de store internasjonale genomprosjektene er nettopp human diversity.
Det viser seg at den genetiske diversiteten blant mennesker er meget liten. Vi finner større diversitet
blant f.eks. sjimpanser. En forklaringen på den lave diversiteten hos mennesker kan være en
"flaskehals". På et tidspunkt meget tidlig i utviklingen av det moderne mennesket har bare noen få
individer overlevd, i betydningen ført avkommet videre, og arten videre. Derved mistet vi noe av det
genetiske mangfold som eksisterte den gangen. Denne hendelsen er det mulig å spore opp ved å
analysere forskjellene i mtDNA. Forskjellen mellom mtDNA i ulike populasjoner i dag skyldes
mutasjoner fra flaskehalsen. Det samme gjelder Y-kromosomet, som også brukes til denne type
analyser. Man har prøvd å lage en molekylær klokke basert på substitusjonsraten i mtDNA. Ved å
telle ulikheter i mtDNA kan man beregne når disse hadde et felles opphav.
Menneskets opprinnelse Homo-slekten
Den sterkeste teorien om menneskets begynnelse kalles out of Africa . Man mener at den nevnte flaskehalshendelsen skjedde i Afrika for ca. 150000 år siden. Populært har man operert med "Eva" om det eller de individene som kom gjennom flaskehalsen, og førte genene videre (Eva fordi man bygger på analyse av mtDNA, vi har nok både stammor og stamfar). Denne populasjonen har så delt seg i flere og spredd seg. Etter hvert har noen av disse gruppene beveget seg over til de andre kontinentene Europa og Asia, mye senere også til Amerika. Et argument for at dette startet i Afrika er at den genetiske diversiteten der er mye større enn på de andre kontintentene. Dette tilsier en lengre periode med genetisk evolusjon.
I 1997 klarte forskere å analysere DNA fra neandertalere . Dette var mennesker som levde i Europa
for 30-100000 år siden, antakelig parallelt med moderne mennesker, våre forfedre. Det ble analysert
en sekvens på 379 bp, og det var 28 ulikheter mellom neandertaleren og moderne mennesker.
Forskjellen mellom ulike mennesker er ca. 8 bp i dette området. De fant altså at forskjellen mellom
mtDNA fra neandertalere og mennesker er 3,5 ganger større enn forskjellen mellom mennesker. Etter
dette er det analysert mtDNA fra flere neandertalere, som bekrefter de første resultatene. De er
derved neppe våre forfedre. Men deres DNA er mer likt menneskets DNA enn sjimpansens. De er
derfor mer i slekt med oss enn med apene. Neandertalerne levde antakelig samtidig med våre
forfedre for ca. 50000 år siden, uten særlig samkvem. De døde ut, våre forfedre døde ikke ut.
Explore your Y-DNA Paternal (Male) Ancestry Today (kommersiell DNA hjemme-test)
13.6 BLODTYPER Blodbanken i Oslo Blodtypesystemer
I kap. 1 brukte vi blodtypene ABO og RhD som eksempel for å illustrere en del begreper innen genetikken (genotype, fenotype, dominant osv.). Vi kan også bruke dette som eksempel på polymorfisme i gener hos mennesker.
13.6.1 ABO-systemet Fra RMIT Fra UTAH
Genet som bestemmer denne blodtypen er plassert på kromosom 9, og det er tre vanlige alleler, som vi kan kalleA, B og O. Selve genet har fått navnet ABO.
Enzym
På overflaten av de røde blodlegemene (og andre celler) finner vi et oligosakkarid som kalles H-antigen (se fig. 13.22). Genet ABO ( OMIM ) koder for et enzym (en glykosyl transferase ), som henger en ekstra karbohydratenhet til dette oligosakkaridet. B-allelet gir et enzym som henger på galaktose (GAL), A-allelet gir et enzym som henger på N-acetyl-galaktosamin (NAG), mens O gir et ikke-funksjonelt enzym, slik at H-antigenet forblir uforandret.
Antigen-antistoff
Et antigen er en kjemisk gruppe som fører til at kroppen lager et bestemt antistoff rettet mot antigenet. I ABO-systemet er det de nevnte karbohydratene som er antigenet, enten med NAG eller GAL eller bare H. Disse kjemiske gruppene kaller vi A-antigen, B-antigen eller ikke noe antigen. Generelt er det slik at en person vil lage antistoff mot de antigener hun ikke har selv. En person med genotype AO vil ha A-antigen, og lager derfor antistoff mot B-antigen. En heterozygot AB vil ha begge antigener, og lager ikke noen av disse antistoffene. Disse antistoffene forkommer naturlig hos alle, selv uten at vi har mottatt blodoverføring e.l. Dette blodtypesystemet har derfor stor klinisk betydning.
DNA
A og B-allelene skiller seg fra hverandre i sju nukleotidposisjoner, men bare fire av disse medfører ulikheter i aminosyrer. Dette gir enzymer med noe ulik aktivitet, som nevnt. O-allelet har en én-base delesjon. Dette gir en forskjøvet leseramme, og derved et protein uten aktivitet. Det blir bare 115 aminosyrer langt, i stedet for det normale 1062, pga. et stoppkodon i den nye leserammen.
Blodtyping
I dag utføres blodtyping ved hjelp av blodlegemer og de aktuelle antistoffer. Siden man nå kjenner forskjellen også på DNA-nivå, er det mulig å foreta ABO-typing ved DNA-analyse. Man behøver da ikke blod, men hvilket som helst kjerneholdig cellevev. Denne genanalysen blir gjennomgått i kap. 18.1, fig. 18.3.
Hyppighet
De tre allelene A, B og O forekommer med ulik hyppighet hos ulike folkeslag, og er et enkelt eksempel på begrepet allelefrekvens (tabell 1.4).
13.6.2 Rh D og CE
Rh kommer av "rhesus" og navnet skyldes at man oppdaget dette blodtypesystemet i forbindelse med rhesusaper. Rh-typen avgjøres av to genloci på kromosom 1. Det ene av disse er RhD og det andre er RhCE. Ofte er bare det RhD som omtales. Forenklet har vi to fenotyper: RhD(+)pos, som har D-antigen og RhD(-)neg, som ikke har D-antigen. Dette antigenet utgjøres av bestemte aminosyrer i et membranprotein i de røde blodlegemer.
Arv
Allelet D, som gir personen RhD-antigen, er dominant over d, som ikke gir antigen. En mor som er RhD(-) (dd) og far er som er RhD(+) (DD eller Dd) kan få barn som er RhD(+).
Uforlikelighet Fra doktoronline
En person som er RhD(-) kan danne antistoff mot blod fra en som er RhD(+) (mot D-antigenet). Dette er spesielt alvorlig ved graviditet, da et barn kan være RhD(+), selv om moren er RhD(-). Moren kan motta blodlegemer fra fosteret, spesielt i forbindelse med fødselen. Hun vil danne antistoffer mot disse (anti-D), og disse antistoffene kan i løpet av svangerskapet komme inn i barnets egen blodbane. Dette kan føre til hemolyse, noe som kan være livsfarlig for fosteret. Dette er normalt ikke så farlig ved første svangerskap, men kan være det ved neste. Moren laget "hukommelsesceller" ved første svangerskap, særlig etter fødselen. Ved et evt. nytt svangerskap vil hennes antistoffproduksjon være mye kraftigere og mye raskere enn første gang, og fosteret kan motta disse antistoffene. Problemet kan løses ved å gi moren anti-D like etter første fødsel. Dette vil gjøre at Rh(+)-blodlegemene fra fosteret i moren blir eliminert før moren selv får laget antistoffer mot dem. Hennes antistoffproduksjon blir da sterkt nedsatt.
Genene Fra NCBI Fra GeneCards Review fra BLOOD
for Rhesus-blodtype sitter på kromosom 1 (1p34-36). Her sitter det to gener som er ca. 96 % homologe, nemlig RhD ( OMIM ) og RhCE ( OMIM ) (fig. 13.23). De utgjør altså en genfamilie, og de har oppstått ved genduplikasjon, kanskje for ca. 10 mill.år siden.
Begge genene er ca.75 kb store, har 10 eksoner og gir et protein på 417 aminosyrer. RhD-proteinet er et transmembranprotein som krysser membranen 12 ganger (fig. 13.23). De ulike eksonene tilsvarer hver sine membrankryssende domener. Det er 40 baser som er ulike i de to genene, og 36 aminosyrer i proteinene.
I dette systemet er det selve genproduktet, altså proteinet som fungerer som antigen, og som fører til antistoffreaksjoner. Det er bestemte aminosyrer i proteinet som utgjør epitopen, den kjemiske gruppen som gir antistoffreaksjonen. Dette er klarest for RhD-proteinet (D-antigenet) og det er dette vi normalt mener når vi snakker om rhesus + og -.
En person som er Rh(D)+ har D-allelet og lager selv D-antigenet (proteinet). En som er Rh(D)- mangler rett og slett D-genet. Vi kaller allelene D og d, selv om d egentlig er fraværet av et gen.RhCE
RhCE-systemet er mye mer komplisert. Også her har vi 10 eksoner. Hvis alle 10 eksonene blir spleiset og uttrykt som protein, får vi E-antigenet. Dette proteinet kan ha to ulike former, som kalles E og e. Forskjellen mellom disse ligger i nukleotid 676 (C eller G), som gir aminosyre 226 (pro eller ala). Både E og e-proteinet har antigenegenskaper, men de er ulike. Allelene E og e er derved kodominante, vi har fenotypene E, Ee og e.
For RhCE-genet kan vi i tillegg til spleising av alle 10 eksonene ha to alternative spleisinger; enten ekson 1-2-3-7-8-9-10 eller 1-2-3-6-7-9-10. De to ulike mRNA-molekylene vi får gir litt ulike proteiner, men de har de samme antigene egenskapene. Vi får dannet C-antigenet, som er forskjellig fra E-antigenet. C-antigenet kan også ha to ulike former, C og c. Denne forskjellen kan knyttes til fire aminosyreforskjeller. Det er én forskjell som er spesielt avgjørende, nemlig nukleotid 307 (T eller C), som gir aminosyre 103 (ser eller pro). De to alternative spleisemåtene er altså ikke avgjørende for antigenegenskapene. Allelene C og c er også kodominante, vi har fenotypene C, Cc og c.
Hvilken funksjon har disse proteinene i cellen? En teori går ut på at RhD- og RhCE-proteinene sammen danner en form for ionekanal, som utgjør en ammoniumtransportør.
Samlet kan vi si at vi har 3 sett med gener: D/d, E/e og C/c. D er dominant over d, mens E/e og C/c er kodominante. Vi kan f.eks. ha:
Genotype Fenotype:
Dd, EE, Cc: RhD(+), E, Cc
dd, Ee, cc RhD(-), Ee, c
dd, ee, CC RhD(-), e, C
Genene D og CE ligger så nær hverandre at sjansen for overkrysning er meget liten. Det betyr at perosoner som har en bestemt kombinasjon av D og CE-alleler vil gi denne kombinasjonen videre. En slik kombinasjon av alleler på ett kromosom kalles haplotype. En kvinne kan f.eks. ha haplotype (DcE/Dce). Fenotypen hennes vil da være (D c Ee). Barna vil da arve enten haplotypen (DcE) eller (Dce) fra henne.
afyme
M og N er alleler som koder for membranproteinet glycophorin A. De to allelene gir proteinprodukter som skiller seg i to aminosyrer. Begge disse variantene vil fungere som antigener. En person med genotype (MN) vil lage to antigener, både M og N. En person som er homozygot (MM) vil bare ha antigen M. Vi får da tre fenotyper: M, N og MN. Allelene sies å være kodominante, fordi den heterozygote genotypen (MN) gir en egen fenotype, verken M eller N.
14. DNA-TEKNIKKER Til bokens kapitteloversikt
DNA-teknikker/DNA-analyser/genteknologi
Dette kapittelet tar opp de mest grunnleggende teknikker og metoder som brukes i arbeid med DNA
og RNA. Det blir lagt vekt på å presentere prinsippetbak de enkelte teknikkene, for å kunne forstå
dem. Vi kunne godt ha brukt overskriften DNA-teknologi eller genteknologi. Begrepene teknikk og
teknologi brukes ofte om hverandre. Med DNA-teknikk/ genteknikk tenker vi først og fremst på den
enkelte metode som brukes. Med DNA-teknologi/ genteknologi tenker vi på at en eller flere slike
teknikker er satt i et system for masseproduksjon av resultater eller produkter.
Dette kapittelet tar opp de grunnleggende teknikkene
DNA-isolering ( 14.1 )
Restriksjonsenzymer ( 14.2 )
Elektroforese av DNA ( 14.3 )
cDNA-syntese (14.5 )
Merking av DNA ( 14.7 )
DNA-sekvensering ( 14.8 )
DNA-blotting (overføring) (14.9 )
Hybridisering (14.10 )
DNA-kloningsteknikker (rekombinant DNA-teknikk) blir tatt opp kapitlene 15-17.
DNA-analyser som anvender flere teknikker samtidig for å oppnå ett bestemt resultat (DNA-profiler
innen rettsmedisin, gentester m.m.) blir spesielt tatt opp i kap. 18, f.eks.:
RFLP-analyse (18.1)
ASO-prober (18.2)
VNTR-analyse, DNA-profiler (18.3)
Mutasjonsdeteksjon (18.6)
Realtime PCR (18.7)
DNA-brikker (18.8)
Medisinsk bruk av genteknologi bli videre behandlet i kap. 21, og anvendelsen innen industri og landbrukblir tatt opp i kap. 22.
DNA-enzymer i genteknologi Oversikt fra Colorado Invitrogen
I genteknologi brukes en rekke enzymer som påvirker og forandrer DNA. Mange av disse enzymene
har vi møtt i kapitlene 2-7, og vi vil møte dem i de kommende kapitlene. Her er en kort oversikt over
de viktigste.
Nukleaser kan bryte fosfoesterbindinger i ryggraden til DNA eller RNA (DNaser og RNaser).
Eksonukleaser kutter bort ett nukleotid i enden av en tråd.
Endonukleaser bryter ryggraden et sted langs selve tråden, enten én eller begge. Hvis begge trådene blir brutt er DNA-molekylet delt i to.
DNAase I er en endonuklease som kutter enkelt- og dobbelttrådet DNA i små biter, uspesifikt.
Restriksjonsenzymer er endonukleaser som kutter DNA i biter på bestemte steder.
S1 nuklease kutter enkelttrådet DNA og RNA i biter.
RNase H kutter RNA som er hybridisert til DNA.
DNA ligaser lager en fosfoesterbinding som mangler mellom to nukleotider i en ryggrad, jf. Okazakifragmenter i kap. 7. Vi utnytter dette enzymet til å binde sammen DNA-molekyler og reparere en usammenhengende ryggrad.
Topoisomerase I kan både bryte fosfoesterbindinger i ryggraden (endonuklease) og lage den samme bindingen på ny (ligase), jf. sirkulært DNA (kap. 2.4).
DNA polymeraser kan forlenge en DNA-tråd, altså lage nytt DNA (jf. replikasjon, kap 7). Disse trenger normalt en templat og en primer med en fri 3'-ende. Flere DNA polymeraser har også eksonukleaseaktivitet. Tabell 14.3 oppsummerer egenskapene til noen ulike DNA polymeraser.
RNA polymeraser kan lage RNA med DNA som templat. De trenger ikke primer, men en spesifikk promotersekvens. De mest brukte er fra E. coli, bakteriofag T7 og SP6.
Terminal transferase er en DNA polymerase som kan henge nukleotider på 3'-enden av en DNA-tråd uten at det er noen templat.
Alkalisk fosfatase fjerner en fosfatgruppe fra 5'-enden på DNA, mens polynukleotid kinase setter
på en fosfatgruppe.
14.1 DNA ISOLERING
Det er beskrevet en lang rekke metoder for å isolere og rense DNA. Hvilken metode man bruker vil
avhenge av mange faktorer, f.eks.:
Hva er kilden for DNA ?
Hvor mye DNA har du i utgangspunktet?
Hvor rent DNA trenger du?
Hva skal du bruke det til?
Som kilde for DNA kan vi tenke oss:
Virus (f.eks. bakteriofager), bakterier, gjærceller, cellevev fra dyr (f.eks. fra lever), blod (DNA i hvite blodlegemer),plantedeler.
Vi skal kort omtale noen av de trinnene som normalt inngår i isolering av rensing av DNA.
Samle celler
Cellene vil ofte foreligge som en suspensjon, f.eks. en bakteriekultur eller cellevev som er knust og
homogenisert. Ved sentrifugering kan man samle cellene i bunnen av et rør, og deretter kan de
resuspenderes i en passende bufferløsning.
Åpne (lysere) celler
Cellenes vegg eller membran må ødelegges slik at celleinnholdet frigjøres. Her kan det brukes ulike midler, gjerne flere av dem sammen.
Lysozym er et enzym som ødelegger et bestemt sjikt i bakteriers cellevegg .
SDS er en detergent som løser opp cellemembranens fosfolipider (mer om SDS, se kap. 4.7). Sammen med NaOH vil det også denaturere proteiner. En annen detergent som brukes er Triton X-100. Denne vil løse opp membraner, men ikke denaturere proteiner.
Proteinase K er et enzym som meget effektivt bryter ned proteiner, både de i cellemembraner, i kromosomene og ulike enzymer i cellen. Den bidrar derved både til å løse opp cellemembranen og ødelegge proteinene i cellen.
RNase kan brukes for å bryte ned RNA til mindre fragmenter.
Celler kan også lyseres med sterkt alkalisk løsning (NaOH).
Ved sentrifugering av lyserte celler vil store celleorganeller, rester av cellevegger og membraner gå
raskt ned (sedimentere), mens oppløste DNA- og proteinmolekyler går mindre raskt. Man må velge
en passe stor hastighet(omdreininger pr. minutt, rpm) og en passe lang tid ved sentrifugeringen ut fra
hva man ønsker å få sedimentert, og hva man ikke ønsker å få sedimentert. Man utfører da
differensiell sentriguering.
Sentrifugering med tetthetsgradient er noe annet. Her inneholder sentrifugerøret et oppløst stoff som
gir løsningen stor tetthet (sukrose eller CsCl). Ved ultrasentrifugering (stor hastighet) vil selve
løsningen etter en tid få større tetthet mot bunnen av røret, og mindre på toppen, f.eks. fra 1,6 til 1,8
g/mL. Dette er en tetthetsgradient. Store molekyler som DNA og proteiner vil da plassere seg i denne
gradienten der hvor tettheten er lik seg selv. DNA har normalt tetthet ca. 1,7 g/mL. Stoffer med større
tetthet vil befinne seg lenger ned i røret.
Ekstrahere proteiner m.m.
Etter behandling med SDS, proteinase mm., vil proteinene være fragmentert. DNA er derimot uforandret, og fremdeles løselig i vann. Man tilsetter da fenol eller en blanding av fenol og kloroform. DNA vil fortsatt holde seg i vannfasen, mens proteinene, som da er denaturert, vil være i fenol/kloroformfasen. Man kan også ha isoamylalkohol til stede, noe som feller ut evt. gjenværende proteiner fra vannfasen. Man pipetterer av og beholder vannfasen, som inneholder DNA.
Etanol, ca. 70 %, vil gjøre DNA uløselig, altså felle ut DNA . Det må da være høy konsentrasjon av K+ eller Na+-ioner. Man kan da tilsette 96 % etanol til DNA felles ut, og fiske det opp med en glassstav eller man kan sentrifugere det ned. Man løser så DNA opp i en egnet buffer. Denne DNA-løsningen kan holde seg i kjøleskap over svært lang tid.
Å isolere og rense RNA er mye vanskeligere enn DNA. Dette skyldes at RNA svært lett vil bli brutt ned
av enzymet RNase. En egen teknikk for å isolere mRNA blir beskrevet i kap. 14.5.
Felle med isopropanol (Qiagen)
Rensing
Hvis man ønsker å rense DNA ytterligere er det flere muligheter, f.eks.:
- Gjentatte utfellinger og resuspenderinger med alkohol.
- Ultrasentrifugering med tetthetsgradient. DNA har en annen tetthet enn RNA og proteiner.
- Gel elektroforese (se 14.3 ).
Plasmid DNA Fra Qiagen
Plasmider brukes som verktøy ved kloning av DNA (kap. 15). Vi er derfor ofte interessert i å isolere
plasmid DNA, og skille dette fra det kromosomale DNA i en celle.
Plasmid DNA er mye mindre enn kromosomalt DNA. Mens det kromosomale DNA blir sentrifugert
ned i et rør, vil plasmid DNA ikke bli det. Man må da behandle cellene forsiktig under prepareringen,
slik at ikke det kromosomale DNA blir kuttet opp i små biter. Dette innebærer bl.a. bruk av en mild
detergent (Triton X-100, ikke SDS).
Plasmid DNA er supervridd (se kap. 2.4 ). Det blir derfor ikke denaturert like lett som lineært DNA.
Med NaOH ved pH 12 vil lineært (kromosomalt) DNA bli denaturert, men ikke plasmid DNA.
Denaturert DNA vil deretter ha en tendens til å samles i store aggregater som kan bli sentrifugert ned.
Etidiumbromid (EtBr) bundet til DNA (se fig. 9.8) vil generelt gi DNA lavere tetthet. Men supervridd
plasmid-DNA vil binde mindre EtBr enn lineært DNA. Derved vil lineært DNA med EtBr få redusert
tettheten mer enn supervridd. Dette kan utnyttes til å skille supervridd plasmid DNA fra lineært
plasmid DNA av samme størrelse. Man bruker da ultrasentrfugering med tetthetsgradient. Supervridd
plasmid DNA vil legge seg i et bestemt skikt i gradienten, mens annet DNA vil ha mindre tetthet, og
ligge i et skikt høyere opp.
Kvantitere
Vi kan måle konsentrasjonen av DNA i en løsning ved hjelp av et spektrofotometer . DNA absorberer UV-lys med bølgelengde 260 nm, og en absorbans eller OD (optical density) på 1,0 tilsvarer da ca. 50 g/mL DNA. Wikipedia Protokoll
I tillegg måler man gjerne OD også ved 280 nm. Forholdet mellom OD (260 nm) og OD (280 nm) sier noe om renheten av DNA-løsningen. Dette forholdet bør være større enn 1,8. En lavere verdi indikerer for stort innhold av fenol eller proteiner.
For mer nøyaktige målinger og måling av mindre mengder DNA kan man bruke et fluorescerende stoff som binder DNA, og deretter måle fluorescens ved en gitt bølgelengde. Slike stoffer er kommersielt tilgjengelig (se 14.7.5 og 18.6). Med fluorescerende merking kan man detektere DNA-mengder ned i 25 pg/mL. Fra Invitrogen
Molmassen (molekylvekten) til DNA er ca. 300 g/mol pr. nukleotid, for dsDNA 600 pr. basepar. Hvis
DNA-molekylet er 1000 bp langt, er molmassen 1000 × 600 = 6×105 (g/mol). Da har vi at 1 mg =
1×10-6g / 6×105 (g/mol) = 1,7×10-12mol = 1,6 pmol.
14.2 RESTRIKSJONSENZYMER(WIKI) Fra ACCESS Alfabetiske lister Fra Fermentas Guide fra
Promega
Det var oppdagelsen og isolasjonen av restriksjonsenzymer omkring 1970 som satte i gang den
genteknologiske revolusjonen. Disse enzymene ga mulighet for å kutte opp store DNA-molekyler og
sette dem sammen på en ny måte (rekombinant DNA-teknikk, kap. 15).
14.2.1 Bakgrunn
Restriksonsenzymer er endonukleaser, de kutter DNA på bestemte steder, restriksjonsseter.Det er
bakterier som lager disse enzymene, og de gjør det for å beskytte seg mot fremmed DNA, f.eks.
virus. Bakteriens eget DNA er beskyttet mot dette ved at restriksjonssetene er modifisert ved
metylering av bestemte baser (se kap. 11.3.3).
14.2.2 Klasser (WIKI)
Den type restriksjonsenzymer som er i vanlig bruk, tilhører klasse II. De gjenkjenner en bestemt DNA-sekvens (restriksjonssetet), og kutter DNA-tråden i denne sekvensen.
Klasse I restriksjonsenzymer er den typen som ble oppdaget og karakterisert først (1968). Disse
enzymene gjenkjenner en bestemt basesekvens, men kutter DNA-tråden uspesifikt på et annet sted,
100-1000 bp fra gjenkjenningsstedet. Type III restriksjonsenzymer kutter ca. 25 bp fra
gjenkjenningsstedet. Disse enzymene er samtidig modifikasjonsenzymer.
14.2.3 Navn (WIKI)
Navnet på et restriksjonsenzym tar utgangspunkt i den bakterien enzymet er isolert fra. Man skriver første bokstav i slektsnavnet og to bokstaver fra artsnavnet, f.eks:
Eco = Eschericia coli
Sau = Staphylococcus aureus
Bam = Bacillus amyloliquefaciens
Hae = Haemophilius aegyptius
En ekstra bokstav henviser til stamme av bakterien; Hind,BamH osv. Til slutt kan det komme et
romertall, der I betyr det første, II det andre av evt. flere isolerte enzymer fra samme organisme.
HindIII er fra Haemophilius influenza, stamme Rd, og er det tredje enzymet som ble isolert fra denne.
14.2.4 Restriksjonsseter (WIKI) Finn ønsket enzym (rebase)
Tabell 14.1 gir noen eksempler på restriksjonsseter. Vi skriver som vanlig sekvensen fra 5'-enden. En
pil indikerer hvor enzymet kutter, dvs. mellom hvilke baser. Et restriksjonssete er vanligvis på 6
(EcoRI: GAATTC) eller 4 baser (Sau3A: GATC), unntaksvis 8 eller høyere tall. Det kan også tenkes at
gjenkjenningssekvensen ikke er kontinuerlig, men avbrutt av et bestemt antall baser som kan være
hva som helst, N (DdeI: CTNAG).
Palindrom (WIKI) et palindrom på 17 259 bokstaver!
Restriksjonssetene er alltid palindromer, dvs. at de to trådene er like, når begge leses i retningen 5'®3':
® 5'-GAATTC-3' ®
¬ 3'-CTTAAG-5'¬
Sekvensen AGGT kan f.eks. ikke være noe restriksjonssete, fordi den andre tråden da er ACCT, som
ikke er likt. Det er ikke noe palindrom.
14.2.5 Kutting (hydrolyse)
Restriksjonsenzymene er endonukleaser. De bryter en fosfoesterbinding mellom sukker og fosfat i
begge trådene (fig. 14.2). Det oppstår da en fri 3'-OH-ende og en fri 5'-P-ende i begge tråder. Ett slikt
brudd i DNA-ryggraden kalles et nick (et hakk).
Kuttestedene i de to DNA-trådene kan være litt til siden for hverandre, f.eks. fire baser (EcoRI). Når
begge trådene er brutt i sin ryggrad nesten på samme sted, så er i praksis hele DNA-tråden delt i to,
det er bare H-bindingene mellom de fire baseparene som holder den sammen. De to nye
DNA-fragmentene får da en liten enkelttrådet bit i enden, etoverheng (se fig. 14.2 og 14.3A). Alle
fragmentene fra ett bestemt enzym får samme overheng. Alle overhengene er dessuten
komplementære med hverandre, de passer altså sammen. Derfor kalles det sticky ends (klebrige
ender). De fleste enzymene gir et overheng med en utstikkende 5'-P-ende. EcoRI gir sticky end:
TTAA-5'P, eller bedre skrevet slik: 5P'-AATT. Men noen enzymer kutter slik at overhenget har fri
3'-ende. Enzymet PstI har kuttsete CTGCA¯G, og gir stickyend: TGCA-3'-OH.
Samme overheng
To ulike enzymer kan gjenkjenne ulike sekvenser, men gi samme overheng, de gir da kompatible
ender. Dette kan være nyttig, siden DNA-fragmenter med samme overheng også kan kobles (ligeres)
sammen (se kap. 15).
Sau3A: ¯GATC BamHI: G ¯GATCC
Begge disse gir overhenget 5'P-GATC. Det er flere andre enzymer som også gir dette overhenget.
Blunt ends
Noen restriksjonsenzymer kutter de to trådene rett overfor hverandre. Vi får da ikke noe enkelttrådet
bit, men en butt ende (blunt end). Da vil enzymet kutte midt i restriksjonsetet (StuI: AGG¯CCT). Se
fig. 14.3 B.
Isoschizomere (WIKI) er enzymer som har samme gjenkjenningssekvens, men de behøver ikke
kutte likt.
SmaI:CCC¯GGG XmaI: C¯CCGGG
Her ser vi at SmaI gir blunt ends, mens XmaI gir sticky ends. To isoschizomere kan også reagere ulikt
på metylering (modifikasjon).
HpaII: C¯CGG MspI: C¯CGG
Denne sekvensen kan metyleres av et HpaII-modifikasjonsenzym til CCMGG. Restriksjonsenzymet HpaII kutter da ikke, mens MspII fremdeles vil gjøre det.
Hvis inkuberingsbetingelsene ved bruk av restriksjonsenzymer ikke er optimal, vil de kunne kutte mer
uspesifikt. EcoRI vil f.eks.kunne kutte ved ¯AATT, ikke bare G¯AATTC. Dette kalles star aktivitet.
14.2.6 Restriksjonsfragmentenes lengde
Sjansen for å støte på en bestemt base, f.eks. Ai en DNA-tråd er 1/4 (1:4). Dette er ikke alltid riktig, men vi forenkler litt. Sjansen for å treffe en bestemt sekvens på 4 baser, f.eks. GATC er da (1/4)4 = 1/256. Et enzym med gjenkjenningssekvens på 4 bp (f.eks. Sau3A) vil derved finne sitt kuttested gjennomsnittlig for hver 256 base langs en DNA-tråd. Det betyr også at fragmentene med dette enzymet får en gjennomsnittlig lengde på 256 bp.
Sjansen for å finne en bestemt sekvens på 6 baser, f.eks.GAATTC er (1/4)6 = 1/4096.
Gjennomsnittslengden på fragmentene fra et slikt enzym (f.eks. EcoRI ) blir da ca. 4000 bp, 4 kbp.
Tilfeldighetene vil selvsagt gjøre at dette varierer sterkt.
Antall restriksjonsfragmenter
Bakteriofag har et DNA på ca. 48 kbp. En 6-kuttersom EcoRI, som kutter gjennomsnittlig for hver 4
kbp, vil da forventes å gi 12 fragmenter. I praksis gir EcoRI 6 fragmenter. Det betyr at sekvensen
GAATTC forekommer mer sjelden i enn den statistisk sett, rent tilfeldig, skulle gjøre.
Restriksjonskart Fra Colorado
Når man kjøper DNA, f.eks. plasmidvektorer eller DNA, får man oppgitt hvor de ulike
restriksjons-enzymer vil kutte. Dette kalles et restriksjonskart. Se fig. 14.4. Lambda DNA blir kuttet (
Fra Fermentas ) av EcoRI i 6 fragmenter med eksakt størrelse 21226, 7421, 5804, 5643, 4878 og
3530 bp. HindIII kutter DNA i 8 biter med størrelse 23130, 9416, 6557, 4361, 2322, 2027, 564 og 124
bp. Disse kan brukes som størrelsesmarkører ved gel elektroforese av DNA (kap. 14.3).
14.2.7 Metylerte baser
E. coli inneholder to generelle enzymsystemer som metylerer DNA. Dam metylase metylerer basen Ai sekvensen GATC (til GAMTC). Dette enzymsystemet er omtalt tidligere i forbindelse med mismatch repair av DNA (kap. 9.4.2). Dcm metylase metylerer indre C i CCAGG og CCTGG. Slik metylering kan hemme aktiviteten til restriksjonsenzymer som gjenkjenner disse sekvensene.
Et eksempel på dette er BamHI som gjenkjenner GGATCC. A i denne sekvensen blir metylert av dam
metylase i E. coli. DNA fra E. coli vil derved være beskyttet mot BamHI. Hvis vi ønsker å bruke dette
enzymet på E. coli DNA, har vi et problem. Vi kan da bruke en E. coli-stamme som er dam. Denne
kan ikke lage dammetylase, og vil ikke metylere GATC.
14.3 GEL ELEKTROFORESE (WIKI) Colorado
14.3.1 Generelt
DNA-molekyler kan separeres ved bruk av (DNA)-elektroforese(WIKI) . Prøven plasseres da i et elektrisk felt. DNA-molekylene har en jevn negativ elektrisk ladning på sin overflate pga. fosfatgruppene, og vil derfor vandre mot (+)-polen (anoden) (fig. 14.5).
Elektroforesen foregår i en gel. Dette er et geléaktig medium, og er bygget opp av et nettverk av
organiske polymerer. Nettverket i gelen hindrer prøven i å bevege seg alt for fritt ved f.eks.
strømninger i væsken, og det gir en viss motstand mot bevegelse, slik at prøven vandrer passe fort i
det elektriske feltet. Det finnes to hovedtyper av gelmateriale som brukes ved separasjon av DNA,
polyakrylamid (fig. 14.6) og agarose (fig. 14.7).
PAGE (Poly-Akrylamid-Gel-Elektroforese).
Til små DNA-fragmenter brukes gjerne polyakrylamid (WIKI) ( Sigma om akrylamid) . (Datablad fra
VWR) . (PubChem -NCBI) Slike geler har et relativt tett nettverk. Når man skal lage en gel, kan man
bruke ulik konsentrasjon av stoffene som skal polymerisere, og jo høyere konsentrasjon, jo tettere blir
nettverket i gelen. Jo mindre DNA-fragmenter man skal separere, jo høyere konsentrasjon av polymer
må man bruke. Man kan f.eks. bruke 15 % gel til DNA-fragmenter på 25-150 bp, og 5 % gel på
DNA-fragmenter på 100-500 bp. Ved DNA sekvensering (kap. 14.8) brukes gjerne PAGE.
Agarose (Fra Graz) Fra PubChem (NCBI)
er et polysakkarid som er isolert fra alger. Også med agarosegeler brukes lav konsentrasjon til å
separere store DNA-fragmenter, og omvendt. 2 % agarose kan separere DNA av størrelse 100-2000
bp. 1 % gel kan brukes til å separere DNA av størrelse 500-6000 bp. Fra Colorado
DNA størrelse (Fra Sigma) Fra Promega Fra NEB
Vi plasserer (appliserer) DNA-prøven i en liten fordypning (brønn) i gelen. Store DNA-molekyler vil
bevege seg langsommere enn små, fordi de blir bremset mer av nettverket i gelen (fig. 14.5). For å
finne størrelsen av DNA-fragmentene, kjører vi samtidig enstørrelsesmarkør (molecular weight
marker). Dette er en blanding av DNA-molekyler med kjent størrelse, og slike kan kjøpes. Man kan
f.eks. bruke bakteriofag lDNA som er kuttet med ett bestemt restriksjonsenzym (se fig. 14.8).Man får
også kjøpt en type markører som kalles en DNA-stige (ladder). Denne består av syntetiske
DNA-fragmenter med faste sprang i størrelsen, f.eks. 50, 100, 150, 200, ... , 700, 750 bp.
14.3.2 Synliggjøring
For å se DNA-båndene i en gel kan man tilsette etidiumbromid (EtBr) W, som vil binde seg inne i DNA-molekylet, mellom to basepar (interkalere) (se fig. 9.8). EtBr er et fluorescerende stoff. Ved UV-belysning vil DNA med EtBr være synlig for øyet. EtBr er kreftfremkallende, og må behandles med forsiktighet.
Det er nå utviklet ultrasensitive fluorescerende stoffer som binder seg sterkt til DNA (bl.a. SYBR
Green (Invitrogen) og Gold ) ( Spektrum fir SYBR Green). Disse har en følsomhet som er 25 ganger
så stor som EtBr, og kan detektere DNA-bånd som inneholder bare 25 pg DNA.
Ved kapillær elektroforese (WIKI) CE and CE
blir DNA-prøven kjørt gjennom tynne rør som er mindre enn 0,1 mm i diameter, som også kan
separere DNA etter størrelse. Ved enden av røret kan DNA bli detektert automatisk, ofte på grunnlag
av fluorescensmerking av DNA i prøven. Denne teknikken egner seg for automatisering og brukes
f.eks. ved sekvensering av DNA og når man finner DNA-profiler i ved identifiseringsarbeid.
14.3.3 Spesielle forhold
DNA-konformasjon. Ved kloning av DNA arbeider man ofte med små sirkulære plasmidvektorer (kap. 16). Plasmid DNA kan ha tre ulike konformasjoner, supervridd sirkulær (supercoil), åpen sirkulær og lineær. Normalt vil supervridd DNA bevege seg raskest (lengst) av disse fordi den har mest kompakt form, og blir minst hindret i sin bevegelse. Den lineære formen går saktere, og den åpne sirkulære formen enda saktere (forutsatt samme størrelse).
Hvis det er etidiumbromid i gelen under elektroforesen, vil det påvirke bevegeligheten av DNA. EtBr vil gjøre DNA-spiralen noe mer utstrakt enn vanlig. Dette vil påvirke bevegeligheten i en gel. Så lenge alle DNA-molekylene, inklusive markørene, er lineære, betyr ikke dette noe. Men sirkulært supervridd plasmid-DNA vil bli påvirket på en annenmåte enn lineært DNA. EtBr i supervridd DNA vil kunne gjøre at supervridningen blir redusert. Hele DNA-molekylet får da en mer og mer åpen rund form, og bevegeligheten vil avta kraftig. Se WIKI og Colorado
Preparativ gel
Når DNA-fragmentene er separert på en gel, og størrelsen er kjent, kan man skjære ut en bit av gelen med det ønskede DNA-fragment, og isolere dette DNA fra gelen.
Denaturerende gel
Ved elektroforese av enkelttrådet DNA eller RNA, bruker man gjerne denaturerende betingelser.
Dette vil hindre renaturering til dobbelttrådet DNA, og det vil hindre enkelttrådene i å danne
sekundærstrukturer med seg selv (hårnåler m.m.) eller med hverandre. I så fall ville de beveget seg
helt annerledes i gelen. Denaturerende betingelser brukes f.eks. ved DNA-sekvensering (14.8). For å
oppnå denaturerende betingelser kan man bruke urea, formamid, NaOH(alkalisk, basisk miljø), høy
temperatur eller en kombinasjon av disse.
14.4 PCR (WIKI) Animasjon PCR-station
PCR står for Polymerase Chain Reaction. Noen har oversatt dette til PKR (polymerase kjedereaksjon). Man bruker også betegnelsen in vitro amplifisering av DNA. Å amplifisere betyr å forsterke.
PCR-teknikken ble tatt i bruk fra 1985, da den ble publisert i tidsskriftet Science av amerikaneren Kary
B. Mullis. Han fikk nobelprisen i kjemi i 1993. Nordmannen Kjell Kleppe beskrev denne muligheten i
en artikkel alt i 1971 (WIKI) Med PCR kan vi lage et enormt antall kopier av én bestemt DNA-sekvens
fra f.eks. et kromosom. Teknikken har revolusjonert både DNA-forskning og genteknologi. I
begynnelsen klarte man å produsere (amplifisere) DNA-fragmenter på 200 baser med PCR, nå klarer
man å lage PCR-produkter på 20-40000 baser.
14.4.1 Generelt
Til PCR trenger vi følgende reaksjonsblanding:
• Templat DNA
• To primere
• Enzym (DNA polymerase)
• Byggesteinene, dNTP (N=A, T, G, C)
Standard PCR gjennomføres i 3 trinn (se fig. 14.9 og 14.10).
1 Denaturering (ca. 95 °C)
2 Hybridisering (ca. 50 °C)
3 Polymerisering (ca. 70 °C)
Termosykler WIKI)
Man har reaksjonsblandingen i et lite plastrør. Dette settes i en egen PCR-maskin (termosykler), som
er en varmeblokk av metall. Her vil temperaturen raskt kunne heves og senkes til den ønskede
temperatur. Termosykleren kan programmeres slik at man kan bestemme nøyaktig temperatur i hvert
trinn, og hvor lenge hvert trinn skal vare.
Templat
Som DNA-modell (templat) er det i prinsippet nok med ett eneste DNA-molekyl som inneholder den
sekvensen man ønsker å amplifisere. Én celle fra en person, eller én viruspartikkel kan f.eks. være
utgangspunktet. Materialet kan godt inneholde andre DNA-molekyler i tillegg, og DNA-materialet
behøver ikke være spesielt godt renset. Det kan være nok å bruke et cellelysat.
1 Denaturering (ca. 95 °C)
PCR-røret varmes først opp til ca. 95 °C i ca. 1 min. Da vil DNA i røret (templaten) bli denaturert, slik
at den blir enkelttrådet. Hvis DNA-templaten er meget stor, kan man velge litt høyere temperatur. Det
er også mulig å øke varigheten av dette aller første denatureringstrinnet til f.eks. 15 min, for å være
sikker på at templaten er denaturert.
2 Hybridisering (ca. 50 °C)
Røret blir så avkjølt til ca. 50 °C (40-70 °C). Da vil primer-DNA, som er enkelttrådet, binde seg til
templat-DNA. Dette trinnet kan vare 1 min eller mindre. På engelsk brukes ofte begrepet primer
annealingom dette trinnet.
Primere Primer design (Cape Town)
For å designe primere til PCR må man kjenne DNA-sekvensen på hver side (flankerende DNA) av det DNA-området som skal amplifiseres (mål-DNA). Primer I skal hybridisere til flankerende DNA på den éne siden, og primer II skal hybridisere til flankerende DNA på den andre siden av mål-DNA. Men primer I og II skal hybridisere til hver sin tråd, slik at deres 3'-ender peker mot mål-DNA (se fig. 14.11). Begge primere er til stede i reaksjonsblandingen fra starten.
Størrelsen på en primer er normalt 20-30 baser. Temperaturen for dette trinnet må tilpasses hvert
enkelt forsøk. For at en primer skal feste seg til sin templat, må temperaturen være godt under
smeltepunktet tm. Dette kan estimeres slik:
tm = 4 × (G + C) + 2 × (A + T)
Vi ser at smeltepunktet for en primer øker med størrelsen og med mengden G/C-par. For en primer på 24 baser med 14 G/C og 10 A/T har vi da:
tm = 4 × 14 + 2 × 10 = 76 °C.
Mer om hybridisering og smeltepunkt i kap. 14.10.
3 Polymerisering (ca. 72 °C)
Primer I og II, som er bundet til hver sin templattråd, er utgangspunktet for DNA-syntesen. Til dette
trenger vi DNA polymerase.
Taq polymerase (WIKI) Fra Colorado
PCR innebærer oppvarming til ca. 95 °C. Dette medfører ødeleggelse av de fleste enzymer, inklusive DNA polymerase fra E. coli.Helt i starten av PCR-historien måtte man tilsette nytt enzym etter hver oppvarming til 95 °C, noe som var ganske tungvint. Gjennombruddet for PCR kom da man klarte å isolere en varmestabil DNA polymerase fraThermus aqaticus (WIKI) , en bakterie som finnes i naturlige varme kilder ( Artikkel fra 1976 ) Man kan tilsette enzymet i reaksjonsblandingen i starten, og det tåler gjentatte oppvarminger til 95 °C. Det blir utviklet stadig nye og bedre DNA polymeraser til PCR. Mer om ulike DNA polymeraser i kap. 14.4.6.
72 °C er den optimale temperaturen for Taq DNA polymerase. DNA-syntesen foregår da fra den fri 3'-OH-enden på begge primere, med dNTP som byggesteiner (dATP, dTTP, dCTP og dGTP). De produktene vi får ut fra den opprinnelige DNA-templaten er halvlange, fordi templaten er lang, og syntesen kan fortsette så lenge det er templat (se fig. 14.11).
Taq polymerase er avhengig av Mg2+-ioner (fra MgCl2), og det er meget viktig å tilpasse
konsentrasjonen av disse ionene til hver enkelt PCR-reaksjon.
2. runde
Når polymeriseringen ved 72 °C er ferdig (1-2 min), er første runde (syklus) ferdig. Man gjennomfører så en ny runde med trinnene 1-2-3. I trinn 1 skilles alle doble DNA-tråder, dvs. nylaget halvlang DNA fra templat. Ved avkjøling hybridiserer igjen primer I og II til sine komplementære områder, både til de to opprinnelige templattrådene, og til de halvlange produktene fra første runde. I trinn 3 får vi da syntese av fire nye DNA-tråder. Av disse blir to halvlange (fra opprinnelig templat) og to korte (fra nylaget DNA som templat). De korte produktene inneholder bare mål-DNA, samt primersekvensene.
I tredje runde får vi åtte enkelttråder ved denaturering: de to opprinnelige templattrådene, fire halvlange tråder, og to korte. Nye primere vil hybridisere til alle disse, og vi får laget åtte nye tråder. Vi får her for første gang dobbelttrådet kort produkt. I fjerde runde får vi laget 16 nye tråder, osv.
I hver ny runde av PCR lages det to halvlange produkter (fra opprinnelig templat). Resten er produktene blir korte. De korte produktene vil derved etter hvert dominere. Se tabell 14.2.
Man kan gjenta PCR-syklusen f.eks. 30 ganger. For hver runde dobles antall DNA-tråder. Etter 30 runder har man da fått ca. 2×109DNA-tråder, dvs. ca. 1×109dobbelttrådete DNA-molekyler. Hver runde tar 4-5 minutter, slik at hele PCR-reaksjonen tar 2-3 timer.
Når en PCR-reaksjon er fullført, kan man kontrollereresultatet, dvs. PCR-produktet. Man kjører da gel
elektroforese med størrelsesmarkører. Man skal da ha ett klart bånd, dvs. ett DNA-produkt, med en
gitt størrelse.
14.4.2 Varianter av PCR
•Multiplex PCR, dvs. mange PCR-reaksjoner samtidig i samme rør blir omtalt under STR-analyser (kap. 18.3 ).
•Realtime PCR (sanntids PCR) blir omtalt i kap. 18.6.
•QPCR, kvantitativ PCR blir også omtalt i kap 18.6.
•PCR med hale (tag)
Et PCR-produkt skal brukes til ulike formål, det skal kanskje settes inn i en vektor, eller vi ønsker at det skal bli uttrykt(transkribert og translatert). Da kan vi lage en primer som har en "hale" i 5'-enden. Primeren har da en sekvens som binder seg til templaten, som vanlig. Halen kommer i tillegg, og vil ikke binde seg til den opprinnelige templaten (se fig.14.13). Ved senere runder av PCR vil halen bli replikert sammen med mål-DNA, og blir en del av PCR-produktet.
Denne halen kan være et restriksjonssete for ligering i en vektor (fig. 14.13), det kan være en
promoter for transkripsjon (fig. 18.4), det kan være et probesekvenes (fig. 18.23) osv. I fig. 14.13
inneholder halen et BamHI-sete (GGATCC).
•To-trinns PCR
Det kan i noen tilfeller være mulig å slå sammen trinn 2 og 3, slik at hybridisering og polymerisering
skjer ved samme temperatur, f.eks. 60 °C.
Hvis man kjenner en bestemt DNA-sekvens, er det også mulig å amplifisere områdene til sidene for
dette (X og Y på fig. 14.14). Man må da ha restriksjonsenzymer som kutter i X og Y, men ikke i det
kjente området. Den biten som er kuttet ut, kan ligeres sammen til et sirkulært DNA. Man kan da
bruke et primersett som binder seg i det kjente området, og som peker fra dette, mot henholdsvis X
og Y. Ved PCR av dette sirkulære DNA vil vi få amplifisert X og Y.
Man kan også anvende PCR for å oppformere RNA-sekvenser, f.eks. mRNA i celler. For å komme i gang med PCR, må man da først bruke enzymet revers transkriptase (RT) for å lage én DNA-tråd (cDNA). Mer om cDNA i kap. 14.5 .
Det kan være forvirrende at noen bruker RT-PCR om realtime PCR ( kap. 18.6 ).
•Asymmetrisk PCR
Man kan tilsette primer I i vanlig mengde, og primer II i svært liten mengde. I de første runder av PCR
vil vi da få PCR-produkter fra begge templattrådene, som vanlig, også korte produkter. Men etter
noen runder vil primer II være oppbrukt. Resultatet blir da at vi bare får laget den ene DNA-tråden, vi
får altså enkelttrådet DNA. Dette kan være nyttig når man skal sekvensere DNA ved hjelp av PCR.
•Nested primer PCR (WIKI)
Se fig. 14.15. Man gjennomfører først vanlig PCR, f.eks. 20 runder, og får en viss mengde av
PCR-produkt 1. Man kan så ta ut litt av denne reaksjonsblandingen, og tilsette et nytt primersett, som
fester seg "innenfor" det første settet. Man får da et PCR-produkt 2, som er noe mindre enn nr. 1.
Man utfører altså PCR på PCR-produktet. Dette vil øke både sensitiviteten (man får mer produkt) og
spesifisiteten (mindre risiko for feil produkt).
14.4.3 Anvendelse av PCR (WIKI)
PCR har raskt fått en enorm anvendelse. Man kan meget raskt skaffe seg en stor mengde DNA fra en opprinnelig minimal mengde. Det er brukt følgende beskrivelse av PCR:
Først finner man ei nål i en høystakk - deretter lager man en høystakk av nåla.
Siden primerene er spesifikke, kan man også bruke PCR til å påviseom en bestemt sekvens finnes eller ikke i en prøve. Hvis man får et PCR-produkt, betyr det at primersekvensen finnes i prøven, og omvendt. PCR er en viktig del av nesten alle slags DNA-analyser (kap.18), f.eks.
•Påvisning av sykdomsgener
•Påvisning av virus og bakterier
•Identifikasjon av personer
•Mutasjonsanalyser, å finne ukjente mutasjoner
•Analyser på DNA-brikker
14.4.4 Feilkilder ved PCR
Ved DNA polymerisering kan det skje feil, gal base blir satt inn. Dette skjer oftere ved PCR enn ved in vivo metoder, slik som DNA-kloning (kap.15).
På engelsk brukes ordet fidelity (pålitelighet) om DNA polymerase sin evne til ikke å gjøre feil. Det er
stor konkurranse mellom produsentene om å tilby varmestabile DNA polymeraser med stor
pålitelighet (high fidelity). Man har tatt i bruk enzymer fra ulike naturlige varme kilder, og forbedret
disse ved hjelp av genteknologi, og gitt dem egne navn ("Easy-A", "Platinum" osv).
Falsk negativ
Hvis man ikke får et PCR-produkt, tror man gjerne at primeren ikke passer noe sted i templat-DNA,
og trekker konklusjoner ut fra dette. Men manglende PCR-produkt kan ha andre årsaker også, f.eks.
gal temperatur, gal konsentrasjon av MgCl2, primer-primer-hybridisering m.m. Man må derfor være
nøye med å kontrollere at de betingelser man arbeider under er optimale.
Falsk positiv
En primer skal normalt være spesifikk for ett bestemt DNA-område i det DNA man starter med. Hvis
primeren er uheldig valgt, kan det tenkes at den hybridiserer til flere steder, og dette kan gi flere
PCR-produkter. Det samme kan skje hvis man velger temperaturen galt, f.eks. for lav
hybridiseringstemperatur. I slike tilfeller tror man kanskje at man har fått det PCR-produkt man er ute
etter, mens det egentlig er noe annet.
14.4.5 Design av PCR-primere Primer design (Cape Town)
Hvis man kjenner DNA-sekvensen som skal amplifiseres, kan man selv designe to PCR-primere. Da må man bl.a. ta med disse momentene
• Avstand
Avstanden mellom primernes bindingssted avgjør størrelsen på PCR-produktet. Husk at primerne selv også blir en del av produktet. Hvis avstanden er 100 b og begge primerne er 25 b, så blir PCR-produktet 150 bp.
• Lengde
Lengden av en PCR-primer er typisk 20-30 baser, men kan være større eller mindre. En liten primer vil ha større risiko for å være uspesifikk, binde seg andre steder i kromosomene enn der den skal.
• Smeltepunkt
Smeltepunktet for en primer er viktig, og de to primerne bør f.eks. ha noenlunde likt smeltepunkt. Spesielt viktig er 3'-enden, fordi det er denne enden som er startpunktet for DNA-syntesen. Se også kap. 14.10.
•Sekundærstrukturer
Man bør unngå et en primer danner sekundærstrukturer (hårnåler) med seg selv, eller at den kan
hybridisere med den andre primeren.
Det finnes dataprogrammer som kan designe best mulig primere ut fra gitte betingelser (jf.
bioinformatikk, kap. 19.4). Når man har bestemt hvilke primerne man skal ha, dvs. DNA-sekvensen,
kan de bestilles fra et firma som lager syntetisk DNA.
14.4.6 DNA polymeraser
Gjennom PCR-teknikken lager vi DNA in vitro, og enzymet som gjør jobben er "Taq polymerase". I andre DNA-teknikker brukes andre varianter av DNA polymeraseenzymer. Vi møter det allerede i neste punkt, om DNA sekvensering. La oss derfor gi en liten oversikt over noen DNA polymeraser som er tilgjengelig, og hva de gjør.
I kap. 7 om replikasjon omtalte vi 2 ulike DNA polymeraser i E. coli, pol I og pol III. Disse enzymene
kan ha 3 ulike enzymatiske aktiviteter:
•5'®3' (fem til tre) polymerase-aktivitet
Dette betyr å forlenge en påbegynt DNA-tråd med flere nukleotider. Enzymene trenger da en templat, de trenger en fri 3'-OH-ende å starte på (en primer), og de trenger byggesteinene (dNTP).
•5'®3' (fem til tre) eksonuklease-aktivitet
Dette betyr å fjerne et nukleotid i 5'-enden på en DNA-tråd, ved å bryte en fosfoesterbinding. Det betyr at en DNA-tråd blir "spist opp", og det skjer i samme retning som polymerase-aktiviteten.
•3'®5' (tre til fem) eksonuklease-aktivitet
Her fjernes et nukleotid i 3'-enden. Denne aktiviteten har vi kalt "proofreading", fordi den basen som fjernes er den siste som ble satt inn (se kap. 8.3).
Disse tre aktivitetene er illustrert i fig. 14.16.
Noen DNA polymeraser
Tabell 14.3 viser noen DNA polymeraser som er mye brukt i laboratoriearbeid. Her er en kort omtale
av noen.
DNA polymerase I (holoenzym) har alle tre aktiviteter. "Klenow fragment " er en del av
DNA-polymerase I (76 kD av totalt 109 kD) som mangler 5'®3'-eksonuklease-aktivitet. Dette var det
første enzymet som ble brukt i PCR, før de varmestabile enzymene ble tatt i bruk. Det er også laget
en egen Klenow-variant som mangler 3'®5'-eksonuklease-aktivitet.
T7 DNA polymerase har in vivo 3'®5' eksonukleaseaktivitet (proofreading). Men gjennom kjemisk behandling er denne aktiviteten fjernet, slik at enzymet bare har polymerase-aktivitet. Dette er velegnet ved DNA sekvensering, og det modifiserte enzymet har fått det kommersielle navnet Sequenase.
Taq polymerase er, som vi har sett, varmestabil,og brukes i PCR. Den tåler temperaturer opp til 100 °C. Det er isolert en rekke andre termostabile DNA polymeraser, fra en rekke ulike organismer.
Revers transkriptase lager en DNA-tråd med RNA som templat, og er isolert fra retrovirus. Dette brukes til å lage cDNA (kap. 14.5).
Til slutt tar vi med et enzym som kan forlenge en DNA-tråd fra dens 3'-ende uten templat, altså "ut i
lufta", nemlig terminal (nukleotidyl) transferase . Hvis vi da bare bruker dTTP som byggestein, får vi
laget en oligo-dT-hale på 3'-enden av DNA (se fig. 15.5).
14.5 cDNA (WIKI) MAX animasjon
Bokstaven c i cDNA står for complementary. Forutsetningen for cDNA-teknikken var oppdagelsen og
isolasjonen av enzymet revers transkriptase. Dette enzymet bruker RNA som templat til å lage en
komplementær DNA-tråd. Enzymet kodes av bl.a. retrovirus,f.eks. RSV eller ASV (Rous eller Avian
Sarcoma Virus), og har blitt isolert fra celler som er infisert med sistnevnte.
DNA fra eukaryote celler inneholder ikke-kodende introner mellom de kodende eksonene. Dessuten er mesteparten av eukaryot DNA ikke-gener. Kutting av slikt DNA med restriksjonsenzymer vil gi fragmenter der mesteparten er ikke-kodende sekvenser, og de kodende sekvensene i genene vil være avbrutt av introner. Slikt naturlig DNA kalles genomisk (gDNA), siden det er en del av cellens naturlige genom. Men ofte er vi interessert i bare den kodende delen av DNA, altså eksonene, og da kan vi bruke cDNA.
cDNA er laget med mRNA som templat, og vil derved inneholde de samme sekvensene, dvs. 5'-UTR,
kodende DNA (eksonene) og 3'-UTR.
14.5.1 mRNA
For å lage cDNA trenger man en egnet kilde for mRNA, og en måte å isolere mRNA på. Det er utviklet meget raske og enkle teknikker for å isolere mRNA. En av disse utnytter små magnetiske kuler, Ugelstad kuler eller Dynabeads (se fig. 14.17). Man får kjøpt slike magnetkuler der det er festet oligo(T)-tråder på, f.eks. 25 T-baser, eller mer presist oligo(dT)25. Slike kuler settes til et cellelysat. Poly(A)-halen på mRNA fester seg til oligo(T)-tråden på kulene. Kulene kan holdes fast i røret med en magnet, mens resten av løsningen (lysatet) helles ut. Etterpå kan betingelsene endres slik at mRNA løsner fra kulene. Det er også mulig å feste oligo(dT)-molekyler på cellulosemateriale som er pakket i kolonner. mRNA fra prøvematerialet vil feste seg til kolonnen, og kan deretter elueres ut.
mRNA m.m. isolering fra invitrogen
Alle celler i en organisme inneholder samme DNA, men de inneholder ikkesamme mRNA. Vi vet at mRNA kommer fra transkripsjonen av gener som aktivt blir uttrykt. En organisme har tusenvis av gener, men det er bare noen som blir uttrykt. Hvilke gener som blir uttrykt, og i hvilket omfang, vil variere fra organ til organ, fra vev til vev. Det er også slik at noen gener blir sterkt uttrykt, slik at vi får mye mRNA, andre gener blir bare uttrykt i liten grad.
Fra BODYMAP (genekspresjon database) Fra Biocompare (mRNA fra ulike vev)
I kap. 15.3.2 blir dette utdypet med et talleksempel som viser fordelingen av ulike mRNA i en levercelle.
14.5.2 cDNA-syntese, 1. tråd
For å lage cDNA trenger vi RNA som templat og enzymet revers transkriptase . Dette enzymet trenger en primer for å starte sin DNA-syntese. Også her kan vi utnytte det forhold at all mRNA har en poly(A)-hale.
Vi kan tilsette et oligo(dT) på ca. 15 b. Denne vil hybridisere til 3'-poly(A)-halen på mRNA og fungere
som primer (legg merke til at en får riktig retning for syntese) (se fig. 14.18). Revers transkriptase
katalyserer så syntese av 1. tråd cDNA. Resultatet blir et hybrid av mRNA og 1. tråd av cDNA.
14.5.3 cDNA-syntese, 2. tråd
Den andre DNA-tråden kan lages på flere ulike måter, vi gjennomgår 3 (A, B, C). Vi bruker her flere
ulike varianter av DNA polymerase-enzymer.
A. Selvpriming
Se fig. 14.19. Hybridet av mRNA og 1.tråd av cDNA blir adskilt ved denaturering (varme eller OH). Av
uklare årsaker vil 3'-enden av 1. cDNA-tråd danne en hårnål. Enden av denne hårnålen vil fungere
som primer for syntese av 2. tråd.Her brukes DNA polymerase I, eller en mindre del av denne som er
tilstrekkelig for polymerisering ("Klenow fragment"). Hårnålen blir til slutt fjernet av en egen nuklease.
Man mister på denne måten litt av det som tilsvarer 5'-enden den opprinnelige mRNA-tråden.
Se fig. 14.20. Hybridet av mRNA og 1. cDNA-tråd blir behandlet med RNaseH. Dette er et enzym som
lager mange nick (enkelttrådbrudd) i RNA-tråden i RNA/ DNA hybrider. Ved et slikt bruddsted får vi en
fri 3'-OH-ende. Vi har lært at dette kan være startsted for DNA-syntese. Man kan også her bruke
Klenow-fragmentet av DNA polymerase I, som har 5'®3' eksonuklease-aktivitet i tillegg til
polymerase-aktivitet. Det vil derfor fjerne de gamle RNA-nukleotidene, og sette inn nye
deoksynukleotider. Dette minner om det som skjer ved DNA-replikasjonen, da RNA-primere blir
erstattet med DNA. Denne måten å lage DNA på kalles noen ganger nick translasjon. Vi mister også
her noe 5'-enden av mRNA.
C. Terminal transferase
Se fig. 14.21. Man starter med å skille hybridet av mRNA og 1. cDNA-tråd ved denaturering. Deretter bruker man enzymet terminal transferase (terminal deoksynukleotidyl transferase). Dette enzymet kan forlenge en enkel DNA tråd i 3'-enden, uten noen templat. Ved å tilsette utelukkende dCTP som byggestein, får vi forlenget tråden med bare C-er. Vi får en 3'-oligo(dC)-hale på 1. tråd. Vi tilsetter deretter en ferdiglaget oligo(dG). Denne vil hybridisere til oligo(dC)-halen, og kan fungere som primer for syntese av 2. tråd av cDNA.
På denne måten mister vi ikke noe av mRNA-sekvensene, vi får cDNA av full lengde. Dette er et stort
pluss ved denne metoden.
14.6 SYNTETISK DNA
Syntetisk DNA vil si DNA-molekyler som er laget i laboratoriet, uten noen DNA-templat. Man kan da få
laget DNA med den baserekkefølge man selv ønsker seg. Man kan bestille oligonukleotider med
ønsket sekvens fra egne laboratorier både i Norge og utlandet. På internett finner du
bestillingsskjema fra en rekke laboratorier over hele verden. Syntetiske oligonukleotider kan f.eks.
være aktuelt i følgende situasjoner:
Kjøp av DNA/gener: GeneArt Kjøp fra Cape Town GenScript
A Lage PCR-primere ( 14.4 )
B Lage sekvenseringsprimere ( 14.8 )
C Lage prober (oligoprober) ( 14.9 , 15.4 )
D Lage linkere og adaptere ( 15.2 )
E Lage hele gener ( 15.1 )
F Lage stedsspesifikke mutasjonsprimere ( 17.6 )
I et av de klassiske forsøk innen genteknologi ble genet for somatostatin klonet i pBR322 og uttrykt i
E. coli. ( Fra PubMed )Dette genet besto av 51 bp og var laget syntetisk.
DNA-syntese
Oligonukleotider lages nå i egne syntesemaskiner. Det er flere typer av slike, som bygger på noe ulike
kjemiske prinsipper. Dette skal ikke gjennomgås her. Det må først skje en forankring av ett molekyl til
et fast underlag (glass eller gel). Deretter adderes base nr. 1 og fester seg til anker-molekylet.
Deretter adderes base nr. 2, og fester seg til nr. 1. Slik adderes basene en og en, mens den
voksende DNA-tråden er festet til sitt faste underlag. Ved slik syntese vokser DNA-tråden i 3'®5'
retning, altså motsatt retning av naturens. Det er også mulig å lage syntetisk RNA på tilsvarende måte.
Design
Når man skal bestemme sekvensen av et oligonukleotid som man vil ha laget, så avhenger det
selvsagt av hva det skal brukes til. Design av PCR-primere er omtalt i kap. 20.3.5. Konstruksjon av
prober eller hele gener er diskutert i kap. 24.3.2.
14.7 Å MERKE DNA
14.7.1 En oversikt
Vi vet at DNA generelt kan gjøres synlig med etidiumbromid (EtBr), evt. andre og mer sensitive
DNA-bindende stoffer, se 14.3.2. Men vi ønsker ofte å oppspore ett bestemt DNA-molekyl, f.eks. en
probe. Vi må da merke dette DNA-molekylet spesielt.
Hvilken type merking?
Vi kan skille mellom flere hovedtyper av merking (se fig. 14.22):
• Radioaktiv merking (14.7.2),
f.eks. 32P-merkede nukleotider.
• Direkte enzymmerking (14.7.3),
f.eks. alkalisk fosfatase, peroksidase.
• Indirekte enzymmerking (14.7.4),
f.eks. med biotin.
• Fluorescensmerking (14.7.5).
Det er ønskelig å unngå bruk av radioaktiv stråling i et laboratorium. Særlig 32P kan ha skadelig
virkning. Dessuten har radioaktive isotoper begrenset holdbarhet, avhengig av deres halveringstid.
Hvordan foreta merkingen?
Vi kan foreta selve merkingen av DNA på flere ulike måter (se fig. 14.23):
• Endemerking
• DNA-syntese med merkede nukleotider
• Direkte merking
Disse metodene vil bli omtalt i tilknytning til de enkelte typermerking. Det samme gjelder deteksjon av merkingen.
14.7.2 Radioaktiv merking
Tradisjonelt har det vært mest vanlig å merke DNA med radioaktive isotoper. Tabell 14.4 viser noen
isotoper som er i bruk, og deres halveringstid er. Mest vanlig har vært 32P. Denne isotopen kan brukes
både til endemerking og merking ved DNA-syntese.
Liste over isotoper (WIKI) Fra Berkeley (US gov)
Endemerking
Man kan henge en 32P-merket fosfatgruppe på enden av et ferdiglaget DNA-molekyl. Man fjerner da først den eksisterende 5'-P-gruppen med enzymet alkalisk fosfatase. Deretter kan man henge på en ny fosfatgruppe ved å inkubere med 32P-merket ATP og enzymet polynukleotid kinase. Noen fordeler med endemerking kan være:
• Både DNA og RNA kan merkes slik.
• Kan brukes på meget små molekyler.
• Alle molekyler blir like sterkt merket.
• Kan brukes på en blanding av mange ulike DNA-fragmenter.
En ulempe med endemerking er at merkingen blir svak, med bare ett 32P-atom pr. fragment.
Merking ved DNA-syntese
Man kan også merke en DNA-probe ved å lage nyttDNA. Man trenger da selve probesekvensen som templat, en egnet DNA polymerase og radioaktivt merket dNTP. Man trenger også primere e.l. som starter DNA-syntesen på rett sted. Det er flere måter å løse dette på.
Selve probesekvensen kan på forhånd sitte i en vektormed kjente flankerende sekvenser. Man kan
også bruke PCR-teknikk for å lage merkede prober.
Detektering, autoradiografi
Å synliggjøre en radioaktivt merket probe kalles autoradiografi. Man bruker da en film som er følsom
for radioaktiv stråling, normalt en røntgenfilm (X-ray). Selve proben er gjerne bundet til en membran
av nylon eller nitrocellulose. Filmen legges på membranen, der den blir eksponert. Etter dette må
filmen framkalles. Filmen vil da vise hvor på membranen det var radioaktiv probe. Dette kalles autoradiografi.
Fra Protocol Online (merkemetoder)
14.7.3 Enzymmerking
Man kan få enzymer til å binde seg direkte til DNA. DNA er negativt ladd, mens de enzymene som brukes er positivt ladd. Man bruker i tillegg ulike reagenser for at bindingen skal bli sterk. To enzymer som er mye brukt til DNA-merking er alkalisk fosfatase og peroksidase.
Alkalisk fosfatase (AP) kan detekteres ved å tilsette et substrat for AP, som omdannes til et farget produkt. I så fall får vi en synlig farge der hvor det AP- merkede DNA befinner seg.
Peroksidase som brukes til DNA-merking er isolert fra pepperrot (horse raddish) , og kalles HRP
(horse raddish peroxidase). Dette enzymet kan bindes direkte til DNA, eller indirekte, gjennom f.eks.
biotin. Med hydrogenperoksid (H2O2) til stede kan HRP oksidere mange ulike substrater , f.eks.
luminol (se under), og vi får kjemiluminescens.
Kjemiluminescens
vil si at energien fra en kjemisk reaksjon blir avgitt i form av lys, som kan detekteres. I slike reaksjoner
dannes det gjerne først et eksitert og ustabilt mellomprodukt (intermediat), som deretter avgir lysenegi
når det går over til til et stabilt produkt. Som substrat for HRP kan man bruke stoffet luminol.I
reaksjonen som skjer, blir det avgitt lys med bølgelengde 420 nm . Dette lyset kan bli detektert av en
film. For alkalisk fosfatase er det også utviklet flere substrater som gir kjemiluminescens. Ett av disse
går under navnet AMPPD (adamantyl methoxy phosphoryloxy phenyl dioxetane). Når dette reagerer,
blir det avgitt lys med bølgelengde 477 nm. ( PubMed ) (Fra Devicelink)
14.7.4 Indirekte enzymmerking
Biotin (WIKI) ( Chemfinder )
Man kan merke DNA med biotin ved å bruke biotinmerket dUTP (Perkin-Elmer) ( Ambion) mens man lagernytt DNA. Biotinylert U vil da gå inn i DNA på plassen til T, og vi får laget en DNA-tråd som er jevnt merket med biotin. Alternativt er det også mulig å merke ferdige oligonukleotider direkte med biotin. (Fra AllExperts)
Biotinmolekylet i DNA kan senere bli detektert indirekte. Man tilsetter da først stoffet avidin eller
streptavidin (WIKI) .Dette er et glykoprotein med en ekstrem affinitet til biotin. Det vil binde seg til
biotin på probene. Deretter tilsetter man et nytt biotinmolekyl som har et enzym bundet til seg, f.eks.
alkalisk fosfatase, AP. Dette komplekset av biotin og enzym kalles gjerne et konjugat.
AP-biotin-konjugatet vil binde seg til streptavidin, og derved har vi fått enzymet AP bundet til proben
(se fig. 14.26). Deteksjonen av dette enzymet kan gjøres som tidligere beskrevet, ved farge- eller
lysreaksjon. En slik metode kalles ofte sandwichmetode, fordi man legger ett lag med molekyler på et
annet, gjerne i flere lag.
Fluorescein (FL) (WIKI) (Chemfinder) er et annet stoff som kan inkorporeres i DNA på samme måte
som biotin (se fig. 14.27). Fluorescein er i seg selv fluorescerende (lyser ved UV-bestråling). Dette
kan utnyttes ved selve merkingen, i det man lett kan se om proben har mottatt fluorescein. Men det er
ikke dette som normalt utnyttes når man detekterer proben etter hybridisering. Da bruker man et
antistoff mot fluorescein som er bundet til et enzym. Antistoffet vil binde seg til fluorescein, og derved
er enzymet også bundet her. Som enzym kan brukes AP eller HRP, som kan detekteres ved farge
eller kjemiluminescens.
Digoxigenin (WIKI) (DIG) er et stoff som brukes på tilsvarende måte som fluorescein. Proben blir
merket med DIG, og man tilsetter da et anti-DIG-enzym-kompleks (se fig. 24.23).
Fra JHC
14.7.5 Fluorescenesmerking Fra Invitrogen Tutorial - Introduksjon Se spektra
Fluorescens-W innebærer at et stoff kan ta opp (absorbere) lysenergi ved én bølgelengde, og avgi (emittere) lys ved en større (mer energifattig) bølgelengde. Det vanlige er at stoffet absorberer UV-lysog avgir synlig lys. Bruken av ethidiumbromid for å synliggjøre DNA generelt er et eksempel på fluorescens. Vi bruker UV-lys, og EtBr, bundet til DNA, blir synlig for vårt øye.
Det er utviklet en rekke fluorescerende stoffer som kan festes spesifikt til DNA. Den kjemiske gruppen som er ansvarlig for fluorescensen kalles en fluorofor. Figur 14.27 viser hvordan fluoresceiner bundet til dUTP, som kan inkorporeres i DNA. Ved moderne DNA-sekvensering merker man de fire ulike nukleotidene med fire ulike fluoroforer, slik at de får hver sin farge (se kap. 14.8.6, fig. 14.31).
FRET, Fluorescense Resonance Energy Transfer og andre avanserte teknikker blir tatt opp i kap.
18.7 .3.
FISH (WIKI) Fra Access Fra NHGRI Fra Pasteur
står for fluorescens in situ hybridisering. Man bruker da en fluorescensmerket probe som hybridiserer
til DNA i en celle eller i et preparat (in situ). Ved å bruke fluorescensmikroskop kan man da se hvor
proben er bundet, og fotografere dette. Man kan f.eks. lokalisere en DNA-sekvens til ett bestemt
kromosom i cellen, og til en bestemt plass i kromosomet. Man kan også utføre in situ hybridisering
med andre typer merking, f.eks. med enzym. Også da kan proben gjøres synlig.
14.8 DNA SEKVENSERING (WIKI) Fra HGP-info Firma
Det er to "klassiske" metoder til å bestemme baserekkefølgen i et DNA-molekyl, til
DNA-sekvensering. Den ene er utviklet av m og Gilbert (WIKI) , den andre av Sanger (WIKI) , begge i
1977. I den første brytes DNA-molekylet ned i små biter, i den andre lages det små biter av nytt DNA.
I begge metodene analyseres disse små bitene etterpå med gel elektroforese. Vi skal bare
gjennomgå Sangers dideoksymetode, fordi denne er enklest å forstå, og den er mest brukt. I denne
metoden utfører man DNA-syntese i reagensrør, og det har derfor visse likhetstrekk med PCR.
Fra Lodish Fra Davidson Fra Miami
Templat og primer
Den ukjente DNA-sekvensen må befinne seg ved siden av en kjent sekvens (se fig. 14.28). Man kan da tilsette en ferdiglaget primer som binder seg til den kjente sekvensen. Denne primeren er normalt ca. 20 baser lang, og skal binde seg med sin 3'-OH-ende mot den ukjente sekvensen. Den kan derved være primer for DNA-syntese der en ukjente er templat. Denne primeren kalles en sekvenseringsprimer.
En måte å gjøre dette på er å sette det ukjente DNA inn i en M13 kloningsvektor (fig. 4.29). Da vil sekvensen ved siden være kjent. En annen fordel med M13-vektor er at dette er enkelttrådet DNA. For å få DNA-syntese må templaten være enkelttrådet. Men man kan også koble ukjent DNA sammen med kjent dobbelttrådet DNA-vektor. Da må man denaturere dette DNA for å få DNA-syntesen i gang (som ved PCR). Ved å koble ukjent DNA inn i en vektor oppnår man også å få tilstrekkelig mye av det DNA man skal sekvensere, siden slikt vektor-DNA kan replikeres i levende celler.
Ved sekvensering får man laget små DNA-biter, og disse må være merketfor å kunne detekteres etterpå. Og man kan velge mellom å bruke primere som er merket på forhånd, eller bruke merkede nukleotider ved selve DNA-syntesen. I moderne sekvensering er det dideoksynukleotidet som kommer i enden som er fluorescensmerket (kap. 14.8.6).
I tillegg til templat-DNA og primer, må reaksjonsblandingen inneholde DNA polymerase og de nødvendige byggesteiner for DNA syntese (dNTP). Det vil da foregå syntese fra primeren, og vi får laget DNA som er komplementær til det ukjente DNA som skal sekvenseres.
Det er flere ulike DNA polymeraser som brukes ved sekvensering, f.eks. Klenow fragment fra E. coli
DNA polymerase I og T7 DNA polymerase (se tabell 14.3). Begge disse mangler 3' ® 5' eksonuklease
aktivitet, dvs. at den ikke spiser opp eksisterende DNA-tråd foran seg. Sequenase er en kommersielt
utviklet form av T7 DNA polymerase hvor denne aktiviteten er spesielt eliminert.
ddNTP
Samtidig med tilsetting av enzym og de 4 vanlige deoksynukleotider (dNTP) tilsettes ett dideoksynukleotid,f.eks. ddGTP. Dette mangler 3'-OH-gruppe, men har vanlig 5'-trifosfat (se fig. 14.30). ddGTP kan bli satt inn i DNA på samme måte som dGTP. Men i så fall vil videre DNA-syntese bli avbrutt! ddGTP har ingen fri 3'-OH-gruppe som neste nukleotid kan binde seg til. ( Chime )
Reaksjonsblandingen inneholder både ddGTP og dGTP, f.eks. i forholdet 1:10. For hver gang en G
skal settes inn, er det derved 10 % sjanse for at syntesen stopper opp. Vi har i utgangspunktet
mangemolekyler av den ukjente DNA-templat, slik at syntesen stopper på 10 % av disse, men
fortsetter på 90 %. For noen av disse 90 % vil syntesen kunne stoppe ved neste G osv. På denne
måten vil vi få noen nye DNA-molekyler som er laget til og med første G, noen til andreG, noen til
tredje osv. Der hvor nylaget DNA har en G, vil templaten, som skal bestemmes, inneholde en C (se
fig. 14.30).
Alle fire ddNTP
Den reaksjonen som er beskrevet med ddGTP utføres også med andre tre dideoksynukleotidene, altså ddATP, ddCTP og ddTTP. Tidligere ble dette gjort i fire separate rør, ett for hver ddNTP. Nå er det vanlig å gjøre alt i ett rør, og ha ulik fargemerke på de fire ddNTP-ene. For å forstå prinsippet kan det være best å tenke oss fire separate rør først.
I røret med ddATP vil DNA-syntesen kunne stoppe hver gang A skal settes inn, dvs. hvert sted
templaten inneholder T. Noen stopper ved første A, noen ved andre, osv. I røret med ddCTP vil
syntesen kunne stoppe der templaten har G osv. (se fig 14.30).
Analyse
Alle de fire reaksjonsblandingene analyseres ved gel elektroforese, og DNA-båndene synliggjøres. Husk at den nylagde DNA er merket. Det nederste båndet, det DNA-fragmentet som har vandret lengst, er det minste av DNA-molekylene. Dette må tilsvare at DNA-syntesen stoppet ved første base etter primeren. På fig. 14.30 ser vi at dette har skjedd i røret med ddCTP. Base nr. 1 i det ukjente DNA må da være G, altså 3'-G. Husk at templaten lese i retningen 3' ®5'.
Nest nederste bånd er det nest minste DNA, og representerer stopp etter to baser. Dette har skjedd i røret med ddATP. Base nr. 2 må da være T. Slik kan vi fortsette med å lese basesekvensen fra båndene i gelen, slik figuren viser. Det nylagde DNA har sekvensen som kan leses fra gelen nedenfra:
5'-CATGAATGCCAG-3'. Denne er komplementær med den ukjente templaten, som da er:
3'-GTACTTACGGTC-5'.
Ved tradisjonell DNA sekvensering brukte man polyakrylamidgeler, og de er meget store og meget
tynne (f.eks. 0,2 mm tykke, og 10×50 cm store). Gelene står loddrett under kjøringen. Siden man
kjører enkelttrådet DNA, bruker man denaturerende betingelser. Båndene kan ligge ganske tett,
særlig øverst (de største DNA-fragmentene), og det kan være vanskelig å plassere dem i riktig
rekkefølge. Det kan likevel være mulig å lese av noen hundre basers sekvens fra ett forsøk, dvs. på
én gel.
Automatisering
I moderne automatisert sekvensering kan man utføre hele denne analysen i ett rør. Man har da alle
de 4 ddNTP-er i samme reaksjonsblanding, og disse er merket på forskjellig måte, gjerne med 4 ulike
fluorescerendeforbindelser. Siden det er dideoksynukleotidene (ddNTP) som er merket, så kalles
dette dye terminator. Denne merkingen kan være slik at de fire ddNTP-ene gir hver sin farge når de
synliggjøres. Alle fragmenter som skyldes ddATP-terminering vil da få én farge, alle som skyldes
ddGTP en annen farge osv. Når reaksjonen er ferdig, kan man applisere og kjøre hele
reaksjonsblandingen på én gel. Gelen kan leses optisk, slik at hvert bånd kommer fram som en topp
på et kromatogram. Moderne sekvensering bruker kapillær elektroforese til separasjon av
fragmentene. Fragmentene kommer ut av en kapillær kolonne i samme rekkefølge som ellers, de
minste først. Der blir de detektert, og hvert fragment gir en topp, der fargen viser hvilken base det er.
Topper som inneholder ddATP har én farge, ddGTP en annen farge osv. Derved kan sekvensen
leses automatisk ut fra toppene på kromatogrammet (se fig. 14.31). Kromatogram
Automatisk sekvensering Automatisert sekvensering med DNA-brikker, Fra Arizona
14.9 SOUTHERN BLOTTING (WIKI) MAX animasjon
Denne metoden er oppkalt etter den som beskrev den først, E. M. Southern (1975). Metoden
kombinerer gel elektroforese (som skiller DNA-fragmenter etter størrelse) med hybridisering med
prober (som påviser bestemte DNA sekvenser). Metoden er meget sensitiv og kan brukes til å
oppspore en bestemt DNA-sekvens blant millioner andre, selv om prøvematerialet er ubetydelig. Det
DNA som skal analyseres må imidlertid være renere enn det som trengs ved PCR. Selve begrepet
blotting refererer seg til overføringen av DNA fra gel til membran, og kalles gjerne Southern transfer,
mens hele analysen kalles Southern analysis.
North, west
Hvis man overfører RNA fra en gel til en membran på tilsvarende måte, kalles dette for northern blotting . Hvis man overfører proteiner fra en gel til et filter,
kalles det western blotting.
En Southern analyse kan deles opp i 5 trinn, som i fig. 14.32.
1 Oppkutting
DNA-materialet som skal analyseres kuttes opp med ett eller flere restriksjonsenzymer eller på annen
måte. Dette kalles gjerne fordøyelseav DNA.
2 Separasjon
DNA-fragmentene skilles ved hjelp av gel elektroforese. Ved hjelp av EtBr vil man se alle
DNA-båndene i gelen, og evt. se størrelsen av DNA-fragmentene etter kuttingen.
3 Blotting til membran
Etter elektroforese kommer selve blottingen. Man bruker også ordet overføring (transfer) om denne operasjonen. Man legger en membran av Nylon eller nitrocellulose på gelen, slik at vi får et avtrykk av DNA-båndene i gelen. Disse membranene vil nemlig binde DNA, både enkelttrådet og dobbelttrådet. Resultatet av blottingen er at vi får overført mønsteret av DNA-bånd fra gelen til membranen. Tidligere var det nitrocellulose som ble brukt til å lage slike DNA-bindende membraner, men nå har ulike typer nylon tatt over. DNA i gelen blir denaturert med f.eks. NaOH, slik at vi får enkelttrådet DNA, ssDNA på membranen.
Selve blottingen kan gjøres praktisk på ulike måter. Figur 14.32 viser én teknikk. Her legger man gelen på et filterpapir som dypper ned i et kar med buffer. Nylonmembranen legges oppå gelen, og på toppen legges sugende papir med en vekt på. Bufferen vil bli sugd opp gjenom filterpapiret, og videre opp gjennom gelen og membranen. DNA i gelen følger med, men vil bindes til membranen.
Man kan også behandle membranen etter blottingen, slik at DNA blir enda sterkere bundet. Dette kan
gjøres ved baking, 80 °C i vakuum, eller ved UV-bestråling. Dette kalles å immobilisereDNA, og det
skjer ved at det dannes sterke bindinger mellom DNA og nylonmembranen ( crosslinking ).
4 Hybridisering med probe (WIKI)
Etter blottingen har vi fått et avtrykk av alle DNA-båndene fra gelen til membranen. Man lar denne membranen bade i en løsning med en merket probe. Proben er selv et lite enkelttrådet DNA- eller RNA-molekyl. DNA-prøven på membranen (fra gelen) må nå være denaturert, dvs. enkelttrådet, slik at det er mulig for proben å binde seg. Det er vanlig å gjøre dette før blottingen til membran.
Proben må inneholde den DNA-sekvens man ønsker å oppspore. Proben vil hybridisere med den DNA-sekvens på membranen som har samme (dvs. komplementære) basesekvens. Nå skal vi ikke ha denaturerende betingelser. Hvis proben har bundet seg et sted på membranen, vet vi at probesekvensen finnes der. Overskuddet av probe, som ikke er bundet til DNA på membranen, blir vasket bort.
Vi kan skille mellom to kilder for DNA-prober. De kan være cellebasert, dvs. at de er en bit av genomisk DNA eller cDNA, eller de kan være laget syntetisk. En syntetisk probe har en bestemt ønsket basesekvens, og kalles oligoprobe(oligonukleotid-probe). Slike prober er gjerne på 20-30 baser, mens cellebaserte prober kan være mye større. For nærmere omtale av prober henvises til kap. 15.4.2.
Proben vil også ha en tendens til å binde seg til selve membranen, der det ikke finnes noe DNA fra
blottingen. Dette unngår man ved såkalt prehybridiseringmed et blokkeringsmiddel (blocking agent).
Dette kan være en løsning av vilkårlig DNA ( Laksespermie DNA fra Stratagene ). Man bader
membranen i en slik løsning (etter blottingen), og dette uspesifikke DNA vil binde seg til hele filteret,
der hvor det er ledig plass, og blokkere det for proben. Proben kan ikke binde seg til
blokkeringsmiddelet, fordi dette er ulikt proben, og det er heller ikke noe ledig plass på selve
membranen lenger. Proben vil utelukkende binde seg til DNA-bånd fra prøven, nemlig der det evt.
finnes komplementære sekvenser.
5 Synliggjøring
Membranen blir til slutt behandlet slik at proben blir synlig. Man ser da hvilke DNA-bånd i membranen
som inneholder probesekvensen.
Southern blotting eller PCR ?
Både PCR- og blottingteknikk kan brukes til å påvise en spesifikk DNA-sekvens i en prøve. Med PCR-teknikk er det primeren som gir spesifisiteten. Med Southern blotting er det proben som gir spesifisiteten.
PCR kan utføres på 3-4 timer. Vi behøver (i prinsippet) bare kjøre elektroforese av PCR-produktet, og se at vi har et produkt av riktig størrelse. Det trengs ingen merking av DNA. Vi trenger bare påvise ett, evt. noen bånd med etidiumbromid.
Med blottingteknikk må vi kutte DNA, kjøre elektroforese, og utføre blotting til membran. Dette kan ta
mange timer. Etterpå må vi bruke en probe som er merket. Denne må hybridisere på membranen, og
vi må synliggjøre denne med røntgenfilm eller på annen måte. Dette kan være både tidkrevende og
vanskelig. Likevel har denne teknikken fremdeles sin plass.
14.10 HYBRIDISERING (WIKI)
Vi har nå møtt fenomenet hybridisering i flere sammenhenger. I PCR og DNA sekvensering er det en
primer som hybridiserer til en templat, og i Southern analyse er det en probe som hybridiserer til en
prøve. Vi vil også møte hybridisering i moderne analysemetoder i kap. 18, f.eks. realtime PCR (18.6)
og bruk av DNA-brikker (18.7).
14.10.1 Smeltepunkt (WIKI)
Vi har tidligere omtalt fenomenene denaturering, renaturering og hybridisering og vi har definert smeltepunktet tmfor DNA (kap. 2.3
). I dette kapittelet omtaler vi hybridisering mellom et lite DNA- eller RNA-molekyl (et oligonukleotid)
og en tråd fra et større DNA-molekyl (prøve eller templat). Oligonukleotidet kan være en primer (PCR,
sekvensering) eller probe. Vi bruker stort sett ordet probe i teksten, for enkelhets skyld.
Generelt er det slik at sterkere binding mellom to DNA-tråder gir høyere tm. Smeltepunktet blir påvirket
av disse faktorene:
1 GC. Smeltepunktet blir høyere med økt innhold av GC. Dette skyldes at basene G og C danner tre
H-bindinger, mens A og T danner bare to.
2 Lengde. For et oligonukleotid vil smeltepunktet bli høyere med økt lengde. Et langt DNA-molekyl vil ha flere H-bindinger totalt sett å binde seg med.
3 Salt. Høyere saltkonsentrasjon, f.eks. NaCl, vil gi høyere smeltepunktet, altså styrke bindingen.
4 Mismatch. Hvis ett eller flere basepar ikke stemmer, f.eks. AG, så vil dette svekke bindingen mellom trådene, altså gi lavere smeltepunkt.
5 Denaturant. Et denatureringsmiddel vil svekke bindingen av hybridet, altså gi lavere smeltepunkt.
Som denaturant brukes spesielt formamid, men også NaOH.
Formler Fra SigmaAldrich
I litteraturen finner vi flere formler som kan beregne smeltepunktet for slike DNA-hybrider. Vi kan
gjengi to formler fra Sambrook & Russels "Molecular Cloning":
(1) tm = 4(G + C) + 2(A + T)
(2) tm = 81,5 + 16,6 lg [Na+] + 0,41 (% GC) - 675/n- 1,0 m
n er antall nukleotider, m er % mismatch. [Na+] representerer saltkonsentrasjonen (ionestyrken).
Likning (1) gjelder for små oligonukleotider (15-20 nukleotider) og høy ionestyrke (1 M NaCl). Likning
(2) kan anvendes på oligonukleotider som er under 100 nukleotider og ved moderat ionestyrke (< 0,5
M NaCl). Hvis vi anvender disse formlene på en probe på 20 baser, uten mismatch, med baseinnhold
(5G + 5C + 5A + 5T ) og 0,5 M NaCl (i likning 2), får vi:
tm = 4×10 + 2×10 = 60 °C
tm = 81,5 + 16,6×(-0,3) + 0,41×50 - 675/20 =63 °C
Resultatene er relativt like. Med utgangspunkt i et oligonukleotid på 20 baser får vi for øvrig etter
formel (2) disse resultatene:
• Én mismatch vil senke tmmed 5 °C.
• Én base kortere probe vil senke tmmed 2 °C.
• Å bytte ut en AT med en GC vil øke tmmed 2 °C.
• Å senke [Na+] fra 0,2 M til 0,1 M vil senke tm med 5 °C.
Leseren kan evt. selv kontrollere disse resultatene. Verdiene er kun tatt med for å være illustrerende,
og må ikke brukes som noe annet.
Hvis temperaturen er mindre enn 10 °C under tmer bindingen av små oligonukleotider reversibel. Det
betyr at de ikke sitter "bom fast", men er "til og fra".
Stringent
Noen ganger ønsker vi at bare en perfekt probe skal sitte godt fast, mens en probe som har en
mismatch ikke skal sitte fast. Dette gjelder f.eks ved bruk av ASO-prober (kap. 18.2). Da må vi
anvende stringente(strenge) betingelser. Det betyr at vi må befinne oss like under smeltepunktet for
den perfekte proben. Det oppnår vi ved å ha relativt høy temperatur, evt. lav [Na+] (NaCl), noe som
senker tm. Hvis vi derimot ønsker at også prober med en eller to mismatch skal sitte fast, må vi gjøre
omvendt. Da bruker vi lavere temperatur, evt. høy [Na+], dvs. ikke-stringente forhold.
14.10.2 Smeltekurve
Hvis vi varmer opp dobbelttrådet DNA langsomt, vil trådene gradvis gå fra hverandre, dvs. "smelte". Vi kan følge denne smelteprosessen og lage en grafisk framstilling av dette, en smeltekurveeller smelteprofil. For å følge smelteprosessen av DNA kan vi måle UV-absorbansen ved 260 nm. Enkelttrådet DNA (ssDNA) vil absorbere dette lyset mye sterkere enn dobbelttrådet DNA (dsDNA). Vi får derved en økning av absorbansen når DNA smelter (se fig. 14.33). DNA med høyt GC-innhold vil ha høyere smeltepunkt, og smeltekurven er forskjøvet mo høyre.
Vi kan også lage smeltekurver for små prober som er hybridisert til prøve-DNA (fig. 14.34). Vi kan da bruke prober som er merket med fluorescerende stoff. Vi kan da bruke en probe som bare gir signal hvis den sitter fast på prøve-DNA Hvordan dette er mulig og hva det brukes til vil bli tatt opp i kap. 18.6. Her vil signalet avta ved smelting.
15. KLONING AV DNA Til bokens kapitteloversikt
|
15.1 KLONING AV DNA, EN OVERSIKT
15.1.1 Hva er DNA-kloning? (WIKI)
I 1996 ble sauen Dolly verdensberømt fordi den var det første pattedyr som ble klonet fra en voksen celle. Dolly døde i 2003. Mange tenker stadig på Dolly når vi snakker om kloning. Det vi behandler i dette kapittelet ermolekylær kloning, nemlig kloning av DNA-molekyler. En klon er mange av samme slag. Å klone vil si å produsere mange av samme slag, i vårt tilfelle mange av samme DNA-molekyl. Det DNA som skal klones, kan vi kalle et DNA-fragment. Når dette er satt inn i en vektor, kaller vi det også DNA-innskudd (insert). Det DNA-fragmentet som klones, kan være et gen eller en del av et gen, men det kan egentlig være hvilket som helst DNA.
Også PCR-teknikker kan oppfattes som en form for kloning av DNA. De kloningsteknikker som
omtales her er imidlertid cellebaserte. Vi setter vårt DNA-fragment inn i en levende celle, som da står
for oppformeringen av DNA. Når man omtaler kloning av DNA, er det normalt cellebasert kloning som
menes.
15.1.2 Hvorfor klone DNA?
Kloning av et DNA-fragment gjør det mulig å produsere mye av dette DNA. Derved kan man få nok til å studeredet, modifisere det osv.
Det mest interessante er kanskje at klonet DNA kan uttrykkes i en levende celle, slik at man kan få laget det proteinprodukt som DNA-sekvensen koder for. Dette kan skje både for å studere genekspresjon, og for å masseprodusere et protein. Rekombinante proteiner, fra RPI
Kloningsteknikker kan brukes for å gi celler/organismer nye egenskaper. Vi kan få genmodifiserte
planter og dyr Også genterapi kan være eksempel på dette.
15.1.3 Hvordan klone DNA? Fra UAH Fra MIT
Skjematisk kan vi sette opp trinnene i kloningsarbeid i sju punkter (A-G) (se fig. 15.1).
A Frambringe det aktuelle gen (DNA)
DNA-molekyler som skal klones kan være fremskaffet på ulike måter. Det kan være:
•Cellulært DNA (genomisk DNA), kuttet i biter med restriksjonsenzymer ( 14.2 ).
•cDNA ( 14.5 )
•PCR-produkt ( 14.4 )
•Syntetisk laget DNA ( 14.6 )
B Velge en vektor (bærer), som kan ta vårt DNA med inn i en celle
For å føre vårt DNA inn i en celle, må det først kobles sammen med en passende bærer, en vektor. Vektorens egenskaper er avgjørende for hele kloningsprosessen, og hva vi senere kan gjøre med vårt DNA-innskudd. I kap. 16 gjennomgår vi hovedtypene av vektorer og deres egenskaper.
For å sette et DNA-fragment inn i en vektor må vektoren først "åpnes", dvs. kuttes med et
restriksjonsenzym. En sirkulær plasmidvektor blir da lineær. For å sjekke at dette har skjedd, bruker
man gel elektroforese. Et sirkulært og lineært DNA vil vandre ulikt (kap. 14.3.3).
God oversikt over vektorer og annet Fra Fermentas
C Koble genet sammen (ligere) med vektoren
Vårt DNA-fragment blir koblet sammen med den lineære plasmidvektoren. Dette behandles i kap.
15.2. Når vi kobler sammen ett DNA-molekyl (vektor) med et annet (DNA-fragment), får vi
rekombinert DNA eller rekombinant DNA. Resultatet av dette kan også sjekkes med gel elektroforese.
Den rekombinerte vektoren er større enn den opprinnelige.
D Bringe vektoren med innsatt gen inn i en celle
Fra ca. 1970 har man lykkes i å overføre plasmid-DNA til E. coli ved å behandle cellene med CaCl2.
Denne behandlingen skjer ved 0-5 C, med påfølgende varmesjokk (37-45 C). Denne prosessen
kallestransformasjon. Celler som er i stand til å ta opp DNA kalles kompetente.
E Selektere de celler som har mottatt vektor med innsatt gen
Det er DNA-sekvenser i vektoren som gjør at vi kan selektere celler som har mottatt vektor, og
spesielt rekombinert vektor. Dette behandles i kap. 16.
F Dyrke de selekterte cellene, og derved få mye av det innsatte gen
G Evt. få cellene til å uttrykke det innsatte gen, dvs. lage proteinet
Også her er vektorens egenskaper avgjørende. Dette omtales i kap. 16.3.5 og i kap. 17.
15.2.1 Klebrige ender (sticky ends) (se 14.2 )
To DNA-molekyler som er kuttet med samme restriksjonsenzym vil ha samme overheng, samme "sticky ends". Disse endene vil være komplementære med hverandre (se fig. 15.2). To slike molekyler vil da kunne bindes sammen. Når de komplementære endene har funnet hverandre, mangler det en fosfoesterbinding i ryggraden. Denne lages av DNA ligase (fra E. coli). Sammenkoblingen av to fragmenter kalles ligering (= liming). Slik ligering krever at den ene DNA-tråden har en fri 5'-P (fosfat)-ende, og den andre tråden en fri 3'-OH-ende.
For å ha samme overheng kan de to DNA-molekylene være kuttet med samme restriksjonsenzym.
Men vi har også sett at to ulike enzymer kan gi samme overheng (Sau3A og BamHI). Disse kan
derved ligeres sammen. Vi sier at de har kompatible ender.
Selvligering
En vektor som er kuttet med f.eks. EcoRI vil ha to kompatible ender. Disse endene vil selvsagt kunne
ligeres sammen igjen. På samme måte kan flere DNA-fragmenter med kompatible ender ligeres
sammen med hverandre (fig. 15.3). Dette kalles selvligering, og er ikke ønskelig. Vi ønsker at et
DNA-fragment skal ligeres med en vektor. I 15.2.6. tar vi opp hvordan man kan unngå selvligering.
15.2.2 Butte ender (blunt ends) 14.2 )
Se fig. 15.4. DNA som er kuttet med f.eks. StuI eller HaeIII har butte ender (blunt ends), altså ikke
noe enkelttrådet overheng. Også cDNA og syntetisk DNA kan ha butte ender. Enzymet T4 DNA ligase
kan ligere to slike DNA-molekyler. Det har da ingen betydning hvilket enzym som har gitt den butte
enden, eller hva kilden ellers er. Forutsetningen er imidlertid også her at begge DNA-molekylene har
en fri 3'-OH- og en fri 5'-P-ende. Også med butte ender kan vi få selvligering.
15.2.3 Homopolymer tailing
Se fig. 15.5. Enzymet terminal deoksynukleotidyl transferase (eller bare terminal transferase) adderer nukleotider til en fri 3'-OH-gruppe, uten at det finnes noen komplementær tråd som templat. Dette er allerede nevnt i forrige kapittel (fig. 14.21). Hvis man bare tilsetter dATP, vil vi få en enkelttrådet poly(dA)-hale. Metoden kalles derfor homopolymer tailing. DNA-fragmentet skal helst ha en enkelttrådet 3'-OH ende på forhånd, f.eks. fra PstI-kutting. Hvis DNA-enden er butt, kan man kutte vekk noen baser i 5'-enden med en 5'-spesifikk eksonuklease, før man henger på poly(dA)-halen (ikke vist i fig. 15.5).
Homopolymer tailing hindrer selvligering, fordi DNA-molekyler med samme hale ikke kan ligeres sammen.
PCR-produkter
Taq polymerase gir normalt PCR-produktet med en ekstra A i 3'-enden, som derved får et
3'-A-overheng (hale). En vektor med et 3'-T-overheng vil da kunne brukes til ligering. Et slikt
T-overheng kan evt. lages med terminal transferase. Dette kalles ofte TA-kloning.
15.2.4 Linkere
Se fig. 15.6. En EcoRI-linker er et oligonukleotid på 8-12 basepar, som inneholder et EcoRI-sete. Selv har linkeren butte ender. En linker kan derved kobles sammen med et DNA-fragment med butte ender ved hjelp av T4 DNA ligase. DNA fragmentet får da en linker i begge endene. Ved behandling med EcoRI etterpå vil DNA-fragmentet da få to EcoRI-ender. Derved kan det ligeres sammen med f.eks. en vektor som er åpnet med EcoRI. Det finnes linkere for mange ulike restriksjonsenzymer; BamHI-linkere, HindIII-linkere osv. Ved bruk av linkere vil DNA-innskuddet bli litt forlenget.
Adaptere
Se fig.15.7. En adapter er nesten det samme som en linker. Adapteren har en klebrig ende, f.eks. en BamHI-ende og en butt ende, der vi finner et annet restriksjonssete, f.eks. et EcoRI-sete.
Vi kan da ligere adapteren til et DNA-fragment med BamHI-ende. Deretter kan vi kutte med EcoRI.
Da vil adapteren bli kuttet, slik at fragmentet får EcoRI-ende. Vi har da klart å bytte ut én klebrig ende
(BamHI) med en annen (EcoRI).
Polylinkere, MCS
I fig. 15.8 er det vist et oligonukleotid på ca. 40 baser, der vi finner restriksjonsseter for åtte ulike
enzymer. Dette kalles en polylinker. Når en slik polylinker er satt inn i en vektor, kalles det gjerne et
polykloningssete, eller multiple cloning site, MCS. Dette finner vi i de fleste moderne vektorer. Vi kan
selv velge hvilket enzym vi vil kutte med, og vi får DNA-ender ut fra det enzymet vi har valgt. Når en
sirkulær vektor med MCS kuttes med to enzymer samtidig (f.eks. EcoRI- og HindIII), får vektoren to
ulike ender. Det er også mulig å få DNA-fragmenter som skal klones til å ha to ulike ender, nemlig de
samme to endene som vektoren har. I så fall vil dette DNA-fragmentet bli ligert i vektoren i én bestemt
retning. Vi har oppnådd retningskloning (directional cloning) (se fig. 15.10).
15.2.5 TOPO-kloning Brosjyre fra Invitrogen
Topoisomeraser kan både kutte en DNA-tråd og ligere to DNA-tråder (kap. 2.4). Enzymet topoisomerase I fra Vacciniavirus gjenkjenner sekvensen CCCTT. Det vil binde seg der og kutte DNA-tråden. Enzymet vil videre medvirke til at denne DNA-enden blir ligert til en annen DNA-ende. Dette er utnyttet og markedsført som"TOPO"-kloning (Invitrogen). Vektoren inneholder da sekvensen CCCTT med enzymet topoisomerase I ferdig bundet til seg.
Noen av disse vektorene har et overheng på én T (siste T i CCCTT). Vi har allerede nevnt at
PCR-produkter normalt har et overheng på én A (kap. 15.2.3). Topoisomerase I kan da gjøre at et
PCR-produkt (med A-hale) blir ligert til denne vektoren (med T-hale). TOPO-vektorer med blunt end
kan ligere DNA-fragmenter med blunt end på tilsvarende måte.
15.2.6 Mot selvligering
Vi ønsker ikke selvligering av vektor (A) eller av DNA-fragmenter (B) (se fig. 15.3). Da får vi en vektor
uten innskudd, og flere fragmenter limt sammen. For å unngå slik selvligering er det flere mulig
metoder.
Konsentrasjon
Ved å bruke høy konsentrasjon av A og B (fig. 15.4), spesielt av vektoren A, blir sjansen for
selvligering mindre. Hyppigheten av at A treffer B øker med konsentrasjonen av både A og B.
Hyppigheten av selvligering av A (at de to endene av ett A treffer hverandre) er den samme uansett
konsentrasjon av A. Derved vil økt konsentrasjon av A gi økt ligering av A og B, men ikke økt
selvligering av A.
Ulike ender
Ved å bruke en vektor med et polykloningsete og to ulike restriksjonsenzymer, kan vi få en vektor
med to ulike klebrige ender. Vi må da også ha DNA-fragmenter med de samme to ulike endene, noe
som er mulig å klare. Dette vil både hindre selvligering og dessuten gi ligering av fragmentet i en
bestemt retning. Dette er allerede nevnt, og er vist i fig. 15.10.
Homopolymer tailing
vil også hindre selvligering. Hvis vektoren får poly(dC)-haler, og DNA-innskuddet får poly(dG)-haler, vil
vi bare kunne få ligering av vektor med innskudd. Dette er gjennomgått og vist i fig. 15.5.
Alkalisk fosfatase (WIKI) Fra Colorado
Selvligering kan også forhindres ved å behandle den åpnede vektor med alkalisk fosfatase. Dette enzymet kutter bort fosfatgruppen i 5'-enden. En slik fosfatgruppe er en forutsetning for at DNA ligase skal binde endene sammen. Det fremmede DNA-fragment inneholder derimot 5'-fosfat-ender, og kan ligeres sammen med vektoren (se fig. 15.9). Dette medfører at ligeringen bare skjer med den ene ryggraden i hver ende av fragmentet. Den andre ryggraden kan blir reparert av vertcellen etter transformasjon.
Slik behandling med alkalisk fosfatase vil også forhindre selvligering av DNA-fragmenter med butte ender.
Rekombinasjonskloning
Det er nå mulig å sette inn et DNA-innskudd i en vektor uten restriksjonsenzymer og ligase, men ved
rekombinasjon. Se kap. 16.3.6.
15.3 DNA-BIBLIOTEK
Fra Lodish
Ved DNA-kloning (rekombinant DNA-teknikk) kan vi innføre et DNA-fragment eller gen i en levende
celle, som vist i fig. 15.1. Vi kan da kanskje tenke oss at vi starter med ett bestemt DNA-fragment
eller gen som vi ønsker å klone. I praksis er det ofte omvendt. Man starter med all DNA fra en
bestemt kilde (celle eller organisme), og setter dette inn i vektorer og celler. Da har man et
DNA-bibliotek. Deretter leter man i biblioteket etter en celle som inneholder det bestemte gen eller
DNA-fragment som man er på jakt etter.
BAC-library fra Amplicon
15.3.1 Genomisk bibliotek
Et genomisk bibliotek er en samling av DNA-fragmenter fra en bestemt organisme, f.eks. mus,
menneske eller gjærsopp. Man har begynt å bruke betegnelsen gDNA om genomisk DNA. Biblioteket
skal i prinsippet inneholde alt DNA fra vedkommende art. Et musebibliotek skal inneholde all DNA
som en musecelle inneholder. Alle vanlige celler i én organisme inneholder samme DNA, så i
prinsippet er det likegyldig hvilken type celler som brukes til å lage biblioteket. Framgangsmåten for å
konstruere et bibliotek blir da (se fig. 15.11):
1 Vi isolerer DNA fra den aktuelle organisme, f.eks. mus. Man må da bruke vev som det er lett å
isolere DNA fra.
2 Det isolerte DNA kuttes opp i biter av passe lengde. Man kan da bruke flere restriksjonsenzymer, og inkubere DNA og enzym i kortere tid, slik at man bare får delvis oppkutting. Dette vil gi mest mulig tilfeldige og varierte fragmenter. Man kan også separere det oppkuttede DNA ved gel elektroforese, og bruke bare DNA-fragmenter av en viss størrelse, f.eks. ca. 20 kb.
3 Vi må velge en egnet vektor, og ligere alle DNA-fragmentene sammen med denne, ett fragment i en vektor. Hvis vi ønsker fragmenter på 20 kb i vårt bibliotek, må vi velge en vektor som kan motta så store DNA-biter (se tabell 16.1).
4 Vektor med genomisk DNA-innskudd føres inn i E. coli eller en annen aktuell vert (transforma-sjon/transfeksjon).
5 Man selekterer alle celler (evt. virus) som har mottatt rekombinant vektor, dvs. vektor med
innskudd. Disse samles, og vil utgjøre vårt genomiske bibliotek.
Antall. Vi antar nå at hver celle i biblioteket inneholder ett tilfeldig DNA-fragment på 20 kb. Hvor
mange celler (dvs. fragmenter) må vi da samle for å være rimelig sikre på at alt genomisk DNA er
representert i biblioteket? Dette kan beregnes med en formel. Vi har:
N = Nødvendig antall fragmenter/celler.
P = Sannsynligheten for at en vilkårlig DNA-bit skal finnes i biblioteket (vi velger 95 %). Dette betyr at vi ikke er 100 % sikre på at alt DNA er med.
n = Genomets lengde i forhold til fragmentenes lengde. Pattedyr (menneske, mus ... ) har et genom på ca. 3×106 kb, vi velger at fragmentene som klones har en lengde på 20 kb, og vi får:
n = (3´106 kb / 20) = 150000 kb
Vi kan da bergene nødvendig antall fragmenter:
ln (1-P) ln (1-0,95)
N = -------- = -------------- = 450000
ln (1-1/n) ln (1-1/150000)
Vi må klone 450000 fragmenter for å være 95 % sikre på at en vilkårlig DNA-sekvens er representert i
biblioteket. Hvis vi vil være 99 % sikre, må vi sette inn P = 0,99 i formelen, og får da N = 700000. Hvis
vi velger å klone fragmenter på 45 kb i hver celle, trenger vi "bare" å samle 300000 fragmenter for å
være 99 % sikre på å finne et gitt DNA i biblioteket.
Overlapping
Et 95 % bibliotek må altså inneholde 450000 kloner på 20 kb hver. Dette utgjør totalt 450000×20 kb =
9×106kb DNA. Dette er tre ganger så mye DNA som hele genomet på 3×106 kb. Det betyr at en
tilfeldig DNA-sekvens finnes i tre ulike celler (kloner), i gjennomsnitt. Når et DNA-fragment settes in i
en vektor, er det tilfeldig hver gang hvilket som "velges". Noen DNA-sekvenser blir tilfeldigvis valgt
flere ganger og noen få sekvenser kommer ikke med i det hele tatt. Vi har et bibliotek med
overlappenede sekvenser (se fig. 15.12).
15.3.2 cDNA-bibliotek (WIKI)
Kommersielle cDNA-bibliotek fra Invitrogen Mer om samme
Et cDNA-bibliotek skal inneholde all cDNA fra en bestemt kilde, f.eks. fra humane leverceller. Dette cDNA representerer mRNA fra vedkommende kilde.
Vi vet at ulike vevstyper inneholder ulikt mRNA, både i type og mengde. Dette skyldes at ulike gener
blir transkribert i ulike vev, eller at de blir transkribert i ulik grad. En levercelle lager mange tusen ulike
typer mRNA, men i ulik mengde.
9 ulike mRNA 12000 av hver
700 ulike mRNA 300 av hver
11500 ulike mRNA 15 av hver
Fra BODYMAP
Samlet er det da ca. 500000 mRNA-molekyler i denne cellen (9´12000 + 700´300 + 11500´15). Det er 9typer mRNA som dominerer. Disse må representere gener som blir uttrykt i meget stor grad. 11500 ulike mRNA-typer er meget sjeldne, og representerer 11500 gener som blir uttrykt, men i meget liten grad. Det kan også være mRNA-molekyler som det bare finnes ett av i en celle. I andre typer vev kan det være helt andre mRNA-typer som dominerer. Dette betyr at når det gjelder cDNA-bibliotek må vi spesifisere hvilken type vev det er fra.
Isolering av mRNA og syntese av cDNA er gjennomgått i kap. 14.5. Hvis vi bruker leverceller, får vi
laget cDNA som tilsvarer blandingen av mRNA i lever. Å lage biblioteket vil da bestå av omtrent de
samme fem punktene som for genomisk bibliotek (fig. 15.12).
1 Isolere mRNA
2 Lage cDNA
3 Ligere cDNA sammen med vektor
4 Transformere vertcellene (E. Coli)
5 Selektere celler med rekombinert vektor og dyrke disse
Hvis vi skal lage et bibliotek som representerer all mRNA, trenger vi et meget stort antall rekombinanter i biblioteket, gjerne flere 100000. Hvis vi derimot bare er interessert i den mest vanlige mRNA, er det nok med noen titalls rekombinanter.
cDNA har variabel størrelse, men er sjelden større enn 10 kb. Man kan derved godt bruke en vektor
som bare kan ta i mot 10 kb DNA.
Ekspresjonsbibliotek
Ved kloning av cDNA er vi ofte interessert i å uttrykke det klonede gen. Vi må da bruke en
ekspresjonsvektor (se kap. 17 og kap. 16.3.5).
15.4 SCREENING AV BIBLIOTEK
Vi tenker oss at vi har et DNA-bibliotek, og skal finne et bestemt gen eller en DNA-sekvens i
biblioteket. Dette kalles screening. Det er to hovedmetoder for dette:
•Spore opp den ønskede genet på grunnlag av DNA-sekvensen, ved å bruke DNA/RNA-probe.
•Spore opp genproduktet (protein) med antistoff.
15.4.1 Screening etter DNA-sekvens med probe
Vi er f.eks. interessert i ett bestemt gen fra mus. Vi trenger da et musebibliotek (genomisk eller
cDNA). Vi trenger også en merket probe (se kap. 14.7). En probe er et lite enkelttrådet DNA-molekyl
som har samme sekvens som noe av det vi leter etter. Hvis biblioteket er laget med en plasmidvektor
i E. coli, blir framgangsmåten (se fig. 15.13):
1 Vi må så ut og dyrke opp biblioteket på agarskåler. Med god trening er det mulig å så ut noen hundre cellekolonier pr. skål.
2 Vi legger en membran (nylon /nitrocellulose) på agarskålen, og får et avtrykk av hver koloni.
3 Membranen behandles slik at cellene lyseres og DNA denatureres. Da vil enkelttrådet DNA fra hver koloni feste seg til membranen.
4 Membranen legges i en løsning som inneholder den merkede proben. Proben får da mulighet til å hybridisere til komplementært DNA i avtrykkene, hvis det finnes.
5 Membranen behandles slik at evt. bundet probe blir synliggjort.
6 Evt. positivt resultat kan spores tilbake til en koloni på den opprinnelige agarskålen. Denne kolonien
vil da inneholde rekombinant vektor med det gen som vi er på jakt etter. Cellene kan dyrkes videre for
mangfoldiggjøring og undersøkelse av det aktuelle DNA.
Klonet gen
Hvis vi har funnet en celle som inneholder en vektor med det genet vi er på jakt etter, sier vi at dette
genet er klonet. Vi kan da dyrke denne cellen videre, og alle dattercellene vil inneholde vektoren med
det aktuelle gen. Vi kan isolere genet fra vektoren, vi kan studere det, vi kan uttrykke det, vi kan
forandre det osv.
15.4.2 Å konstruere en probe
En probe skal være komplementær til noe av den DNA-sekvens vi er på jakt etter. Hvis den skal være komplementær til et bestemt gen, er den genspesifikk. Vi må altså kjenne det vi leter etter. Den samme problemstillingen har vi når vi skal konstruere primere til PCR. Når det gjelder selve hybridiseringen av en probe til DNA, henvises det til kap. 14.10. Merking av prober ble omtalt i kap. 14.7.
En genspesifikk probe er noe annet enn en allelspesifikk. En allelspesifikk probe skal hybridisere bare til en allelvariant av genet og ikke til andre. Se 18.2.
En type prober er cellebaserte. Det betyr at proben er en bit av DNA isolert fra celler. Dette kan være et restriksjonsfragment av genomisk DNA eller av cDNA som er klonet. Slike prober kan være ganske store, kanskje opp til noen hundre baser.
Det er nå vanlig å bruke små konstruerte prober, dvs. syntetiske oligonukleotider. For å konstruere slikeoligoprober må man kjenne litt av sekvensen i det DNA man leter etter, ca. 20 baser kan være nok.
Hvis vi vet noe om ett gen fra én bestemt art, kan det hjelpe oss til å finne tilsvarende gen hos en annen art. Hvis vi har klonet og sekvensert litt av genet for cytokrom C i mus, kan vi bruke dette til å lage en probe for humant cytokrom C-gen. Proteinet fra mus og mennesker har aminosyresekvenser som er ganske like, det samme gjelder da for DNA-sekvensen i genene.
Ulike proteiner kan ha områder, domener, som er ganske like. Hvis vi har klonet og sekvensert ett
gen, kan vi derved spore opp andre gener i samme familie. En probe som passer til ett domene i ett
gen, kan passe til tilsvarende domene i andre beslektede gener.
Aminosyresekvens ® basesekvens
Vi studerer kanskje et bestemt protein, og ønsker å finne genet for dette proteinet i et DNA-bibliotek? Vi tenker oss at vi kjenner hele eller litt av aminosyresekvensen til proteinet. Kjenner vi da basesekvensen til genet som koder for proteinet, slik at vi kan lage en DNA-probe?
Vi tenker oss en sekvens på fem aminosyrer (se tabell 15.1). Dette tilsvarer en bit av genet på 3×5 = 15 baser. Men den genetiske koden er degenerert, de fleste aminosyrer har to eller fire kodoner. I vårt eksempel er det (2×2×4×2×4) = 128 mulige basesekvenser som kan gi de samme fem aminosyrene. Bare en av disse 128 er korrekt for det aktuelle genet.
For å være sikker på at vi har en probe som passer helt til den virkelige gensekvensen på 15 baser, må vi lage 128 ulike oligonukleotider (prober), og prøve med alle disse. Med dagens teknikker er ikke dette noe uoverstigelig problem. Hvis det er mulig, ville det være en fordel å velge en aminosyresekvens fra proteinet der aminosyrene har færrest mulig kodoner (ett eller to kodoner) og unngå de aminosyrene som har seks kodoner (arg, leu og ser). Det er også slik at noen kodoner for en bestemt aminosyre forekommer noe mer hyppig enn andre. Disse er da mer sannsynlig.
Hvis den konstruerte DNA-sekvensen ikke skal brukes som probe, men være et kunstig gen, som
skal brukes til å lage et bestemt protein, er det litt annerledes. Alle de 128 DNA-sekvensene i tabell
15.1 koder for samme aminosyresekvens, og vi kan derved i prinsippet bruke hvilken som helst av
disse. Her bør vi ta hensyn til kodonbruken hos vedkommende art, og helst bruke de mest vanlige.
Kromosomspasering ( chromosome walking ) Enkel animasjon
Vi tenker oss at vi har funnet (klonet) ett bestemt DNA-fragment fra et genomisk bibliotek, og er
interessert i å klone og studere DNA-områder i nærheten av dette. Vi har kanskje mistanke om at en
DNA-sekvens som er klonet befinner seg like i nærheten av ett bestemt gen som vi er interessert i. Vi
kan kalle det vi først har klonet for DNA-I. Vi kan sekvensere en liten bit i 3'-enden av dette, og lage
en liten probe (P-I) som passer her. Ved screening av biblioteket med proben P-I kan vi finne andre
kloner som inneholder sekvensen P-I. Dette må være DNA som overlapper DNA-I. Vi plukker ut en av
disse, DNA-II. Vi lager en ny probe (P-II) som er lik 3'-enden av DNA-II. Ved screening finner vi en ny
klon (DNA-III) som overlapper DNA-II (se fig. 15.14). På denne måten kan vi spasere langs et
kromosom, og identifisere en rekke kloner med overlappende sekvenser. I et -bibliotek kan
fragmentene være ca. 20 kb, slik at kromosomspaseringen kan skje med skritt på opp til 20 kb. I et
"YAC-bibliotek" (gjærceller) kan fragmentene være opp til 1000 kb, og vi kan spasere med skritt på
opptil 1000 kb. Denne teknikken er brukt ved kartleggingen av det humane DNA Ved hjelp av
kromosomspasering kan man ordne klonene i et bibliotek i riktig rekkefølge.
PCR-screening
Man kan også screene et bibliotek med PCR. Man må da ha et sett med PCR-primere som er unike
for ett bestemt locus. Vi vil da få et PCR-produkt bare i de klonene der primersekvensene finnes. I
moderne kartlegging av kromosomene brukes denne teknikken i stor skala. De sekvensene som man
har PCR-primere for, kalles STS (sequence tagged sites) eller EST (expressed sequence tags) (se
kap. 19.1.3).
15.4.3 Screening etter proteinprodukt, med antistoff
Hvis vi har et cDNA ekspresjonsbibliotek, kan vi få cellene til å lage det proteinet som cDNA koder for (se kap. 17). Vi kan da spore opp et bestemt gen (cDNA) på grunnlag av det proteinet som genet koder for. Vi sår ut litt av biblioteket på en agarskål, og sørger for betingelser som er slik at det vil foregå transkripsjon og translasjon av DNA-innskuddene. Vi får da laget de proteinene som de ulike cDNA koder for. Vi må så ta avtrykk av agarskålen til en membran som binder proteinene fra hver koloni (Western Blotting) (se fig. 15.15).
Membran med proteinavtrykk inkuberes med et antistoff som er rettet mot det aktuelle protein som vi
er interessert i. Vi må altså vite nok om det aktuelle proteinet til å kunne lage et antistoff rettet mot
det. Antistoffet må være merket, radioaktivt eller på annen måte. Antistoffet vil binde seg til det
aktuelle protein, der hvor det finnes. Vi vil da kunne se hvilke bakteriekolonier fra biblioteket som
inneholder dette proteinet. Cellene i denne kolonien må da også inneholde genet (cDNA) for dette
proteinet! Dette gir altså muligheten til å oppspore et gen uten å vite noe om selve DNA-sekvensen.
16. VEKTORER (WIKI) Til bokens kapitteloversikt
|
|
16.1 GENERELLE KRAV TIL EN VEKTOR
En vektor i vår sammenheng kan kalles en genbærer. Vektoren er et redskap som trengs for å klone
et gen/DNA-fragment. Oversikten i fig. 15.1 viser hvordan et DNA-fragment blir koblet sammen med
en sirkulær plasmidvektor, og deretter ført inn i en celle. Vi har følgende generelle krav til en god kloningsvektor:
En vektor må kunne kuttes/åpnes, dvs. ha et egnet kloningsete, og ta imot et DNA-fragment av den ønskede størrelse.
Vektoren med DNA-innskudd må kunne føres effektivt inn i en vertcelle (transformasjon eller transfeksjon).
Vektoren må kunne formeres, dvs. replikeres i vertcellen, helst til et stort kopitall pr. celle.
Celler med rekombinert vektor må kunne spores opp og velges ut, selekteres, fra andre celler. Vektoren må da ha en egnet selektiv markør.
Det innsatte DNA må evt. kunne uttrykkes, slik at vi får laget et proteinprodukt. Vi har da en ekspresjonsvektor.
Vi skal ha disse 5 punktene i tankene når vi gjennomgår ulike typer vektorer. Tabell 16.1. viser noen hovedtyper av vektorer, og hvor store innskudd de kan ta.
Vektorene som omtales her, er laget til bruk i E. coli. Det finnes også egne vektorer som er laget til
andre bakterier. Men dette er lite utviklet hittil. Vektorer som kan brukes i flere ulike arter sies å ha
broad host range, de har et bredt spekter av verter.
pBR322 (fig. 16.1) er klassikeren blant vektorene. Den ble skapt i1970-årene, da restriksjonsenzymer og rekombinant DNA-teknikk var nytt. Plasmidet pBR322 er satt sammen av deler som stammer fra 3 ulike naturlige plasmider. Replikasjons-ori kommer fra plasmidet ColE1, amp-r-genet kommer fra R-plasmidet RI, og tet-r-genet kommer fra R-plasmidet pSC101 (kap. 10.4).
Selv om pBR322 i dag er erstattet av mer avanserte vektorer, illustrerer den noen viktige prinsipper.
Mange av de nyere vektorene er utviklet på grunnlag av pBR322.
Unike kloningseter
Et kart over pBR322 viser en rekke unike kloningseter. Det betyr at de aktuelle restriksjonsenzymene
kutter bare dette ene stedet (bl.a. EcoRI, HindIII, PstI og BamHI). Resultatet blir at den sirkulære
vektoren blir åpnet, ellerlinearisert. BamHI vil gi et lineært pBR322, med to BamHI-ender. Et
DNA-fragment med BamHI-ender kan ligeres til vektorendene, og vi får et nytt sirkulært DNA, se fig.
16.2. Vi har da fått vektor med DNA-innskudd,eller rekombinert vektor. DNA-innskuddet er blitt satt
inn i vektoren i posisjonen til BamHI-setet. Restriksjonssetet kalles derfor også kloningsete. Hvis et
enzym har to restriksjonsseter i vektoren, blir vektoren kuttet i to biter, og det blir vanskelig å lappe
den sammen igjen riktig.
Seleksjon: Insertional inactivation
pBR322 har to gener for antibiotikaresistens, amp-r (mot ampicillin)og tet-r (mot tetracyklin). Hvis vi brukerBamHI, får vi kuttet vektoren midt i tet-r genet, se fig. 16.2. Hvis vi setter inn et innskudd her, vil tet-r genet bliinaktivert. Etter å ha ligert DNA-innskudd inn i vektoren overfører vi denne til E. coli-celler i kultur (transformasjon). De fleste cellene vil ikke motta noen vektor (A). Se fig. 16.3. Noen celler vil motta vektor som er selvligert, altså uten innskudd (B), og noen celler vil motta vektor med innskudd (C). Det er disse siste vi er interessert i. Vi får da tre kategorier av celler, som har hver sin fenotype:
A Uten vektor Amp-s Tet-s
B Vektor uten innskudd Amp-r Tet-r
C Vektor med innskudd Amp-r Tet-s
På grunnlag av dette kan vi selektere celler som har pBR322-vektor med innskudd fra andre celler. Celler som ikke har mottatt vektor i det hele tatt (A) vil ikke vokse på skåler med ampicillin. De cellene som har mottatt vektor (B og C) vil derimot vokse fordi vektoren inneholder amp-r-genet. Disse blir overført til en ny skål ved replikaplating (fig. 10.4, kap. 10.1). Denne skålen inneholder tetracyklin, og cellene som har mottatt rekombinert vektor (C) vil ikke vokse. Dermed vet vi hvilke kolonier på skål 1 som har mottatt rekombinert vektor, og kan plukke ut disse for videre dyrking. Se fig. 16.3.
Det er flere unike restriksjonsseter innen både tet-r og amp-r genet i pBR322. Hvis vi bruker enzymet
PstI, vil vi få inaktivert amp-r-genet.
16.3 PLASMIDVEKTORER
Se Fermentas
pUC står for plasmid University of California. Disse plasmidvektorene ble utviklet i 1980-årene og inneholdt flere nye elementer som gjorde dem meget anvendelige. Blant de nye egenskapene var høyt kopitall, et polykloningsete og et nytt seleksjonsprinsipp for rekombinant vektor, lacZ'. pUC18/19 er en representant for disse vektorene.
Det utvikles stadig nye vektorer. De inneholder til dels de samme elementene som pUC 18/19, men de kan også ha nye "sofistikerte" egenskaper. Ulike firma har egne navn på sine vektorer, f.eks. pGEM
, pUC18 osv.
Vi skal gjennomgå de viktigste elementene som finnes i moderne vektorer til bruk i E. coli, med
som utgangspunkt.
16.3.1 Replikasjon, kopitall - ori
pUC18/19 blir replikert til et kopitall på 5-700, mens pBR322 bare hadde et kopitall på ca. 15. Kloning med pUC18/19 gir derved store mengder plasmid DNA (med innskudd).
For å bli replikert i en celle må vektoren ha et replikasjonsorigo, ori. Hvis vektoren skal brukes i E. coli, må det være et E. coli-ori. Her starter replikasjon når plasmidet er overført til vertcellen.
Bakgrunnen for det høye kopitallet er følgende. Plasmider har normalt en innebygget kontroll av antall kopier som blir laget (se kap. 11.3). pUC-vektorene har fått sitt ori fra plasmidet ColE1. Rett ved siden av selve replikasjonsstart (ori) sitter et gen (rop). Dette koder for et lite protein på 63 aminosyrer som hemmer replikasjonsstart. Når dette rop-proteinet blir laget i tilstrekkelig mengde, vil replikasjonen av plasmid bli stoppet. Jo flere kopier av plasmidet som finnes i cellen, jo mer blir laget av rop-proteinet. Ved et bestemt kopitall vil mengden være stor nok til å stanse replikasjonen helt. Hos pBR322 er dette tallet 15-20, slik at antall pBR322-plasmider i en celle (kopitallet) blir 15-20.
Regulering av kopitall, Fra San Diego State
Hos pUC-vektorene er noe av rop-genet ved ori fjernet. Derved blir ikke rop-proteinet laget i det hele
tatt, og replikasjonen fortsetter selv om kopitallet blir stort, opp til 700.
16.3.2 lac Z og polykloningsete
I pUC-vektorene er det satt inn en del av lac-operon fra E. coli, nemlig den delen som inneholder lacI, operator/promoter, signal for ribosombinding (Shine-Dalgarno) og den første kodende delen av lacZ. Denne delen koder for de 146 N-terminale aminosyrene av b-galaktosidase (se kap. 6.2). Denne delen av lacZ-genet kalles lacZ', og proteinet kalles a-fragmentet av enzymet (b-galaktosidase).
I tillegg har man satt inn et polykloningsete (multiple cloning site, MCS) på ca. 50 basepar helt i starten avlacZ'-genet, nemlig mellom kodon nr. 6 og 7. Dette polykloningsetet koder selv for 18 aminosyrer, og leserammen til lacZ er beholdt. Se fig. 16.5. Det finnes mange andre varianter av MCS enn den som er vist i fig. 16.5, som kan inneholde andre restriksjonsseter.
Transkripsjon av lacZ' fra lac-promoteren er normalt skrudd av pga. lac-repressoren, men den kan skrus på, induseres, ved å tilsette
(se kap. 6.2). På denne måten kan vi bestemme om det skal foregå transkripsjon eller ikke. Hvis vi har transkripsjon, vil vi også få translasjon, slik at lacZ' blir uttrykt. Resultatet vil da avhenge av om vi har et innskudd i vektoren eller ikke.
Uten innskudd
Transkripsjon og translasjon av pUC18 fra lac-promoteren vil gi oss følgende proteinprodukt (se fig. 16.6): Først får vi de 6 N-terminale aminosyrene av lacZ'. Deretter kommer de 18 aminosyrene som kodes av MCS (derav navnet pUC18). Så følger de resterende aminosyrer av lacZ', dvs. nr. 7-146.
Med innskudd
Et DNA-innskudd vil havne i MCS, f.eks. i BamHI-setet. Translasjon vil da gi oss følgende resultat. Først får vi de 6 N-terminale aminosyrene av lacZ', deretter 5-6 aminosyrer kodet av MCS. Så kommer vårt DNA-innskudd. Dette kan kode for flere hundre aminosyrer. Deretter kommer resten av MCS og lacZ'. Se fig. 16.6. Dette proteinproduktet vil derved grovt sett være satt sammen av to hoveddeler: først det som er kodet av innskuddet og deretter lacZ'. Vi kaller dette for et fusjonsprotein fordi et er to proteindeler som er fusjonert til ett. LacZ'-delen av dette proteinet (a-fragmentet) vil være en hale på proteinet kodet av DNA-innskuddet.
Ved kloning med pUC18 kan vi åpne vektoren med ett eller to restriksjonsenzymer. Vi kan f.eks. bruke bareEcoRI, og et DNA-fragment med EcoRI-ender kan da bli ligert inn. Vi kan også bruke både EcoRI og HindIII samtidig, og vektoren får da en EcoRI-ende og en HindIII-ende. Et DNA-fragmentet som også har disse to endene kan da ligeres inn. På denne måten unngår vi selvligering, og innskuddet havner i en bestemt retning. Dette er vist i fig. 15.10.
pUC19 er helt lik med pUC18, bortsett fra at MCS er satt inn motsatt vei. Innskuddet vil da også havne motsatt vei hvis vi bruker to ulike enzymer. Vi tenker oss at vi bruker enzymene EcoRI + HindIII. Med pUC18 vil DNA-fragmentet havne med EcoRI-enden nærmest promoteren, med pUC19 vil derimot HindIII-enden komme nærmest promoteren (se fig. 16.5).
TOPO-vektorer inneholder et kloningsete for topoisomerase I, normalt i tillegg til et vanlig MCS. Se 15.2.5.
16.3.3 Seleksjon: a-komplementasjon
Når vi kloner med pUC-vektorene, bruker vi en vertcelle som har en delesjon i sitt lacZ-gen (E. coli DM15). Disse cellene lager b-galaktosidase som mangler den N-terminale delen. Denne C-terminale delen av enzymet kalles w-fragmentet (omega). Dette fragmentet har ingen enzymaktivitet, cellene er Lac. Hvis disse cellene har mottatt en pUC-vektor, vil de også kunne lage den N-terminale delen (a-fragmentet), som kodes av lacZ'. Disse to delene av b-galaktosidase (a og WIKI) assosierer, og enzymet virker. Verten lager altså selv én del av enzymet (WIKI), vektoren koder for den andre delen (a). Disse to delene av enzymet slår seg sammen og gir et aktivt b-galaktosidase, de komplementerer hverandre. Cellen er blitt Lac+. Dette fenomenet kalles a-komplementasjon.
Hvis pUC-vektoren inneholder et DNA-innskudd, vil lacZ'-proteinet (a) havne som en hale til innskuddsproteinet (se forrige punkt). Dette vil ikke komplementere vertcellens enzym. Celler som mottar vektor med innskudd vil derfor fremdeles være Lac.
For å skille mellom Lac+-celler (pUC) og Lac-celler (pUC + innskudd), kan man dyrke på skåler som inneholder
X-gal er et stoff som blir spaltet av b-galaktosidase og det blir da blått. IPTG er nødvendig for å få transkripsjonen i gang (jf. kap 6.2.4). Vi får da følgende resultat:
• Celler som ikke har mottatt vektor vil ikke vokse i det hele tatt pga. ampicillin.
• Celler som har mottatt pUC-vektor uten innskudd vil vokse og gi blå kolonier (Lac+).
• Celler som har mottatt pUC-vektor med innskudd vil vokse og gi hvite kolonier (Lac). Det er disse vi
er interessert i.
16.3.4 In vitro transkripsjon og translasjon
Mange nyere vektorer (bl.a. pGEM-vektorer) inneholder promotere for andre RNA polymeraser enn E. coli, nemlig T7 og SP6-promotere, evt.
T3 ( Fra PNAS ).
Se fig. 16.8, 16.17 og 18. Disse promoterene sitter på hver sin side av MCS. Hvis vi har en slik vektor med innskudd, og tilsetter
vil vi få transkripsjon av innskuddet fra T7-promoteren, og vi får laget RNA. Hvis vi tilsetter SP6 RNA polymerase vil vi få transkripsjon av det samme innskuddet motsatt vei. Dette gir oss muligheten for å lage både sense og antisense RNA. Denne transkripsjonen kan skje in vitro, altså uten celler. Vi blander da vektor med innskudd sammen med byggesteinene (NTP) og de nødvendige enzymer. Slikt RNA kan brukes som prober, til RNAi (kap. 17.4.4) eller videre til in vitro translasjon. Disse tre promoterene har sekvensene:
T7 TAATACGACTCACTATAGGGAGA
SP6 ATTTAGGTGACACTATAGAAGNA
T3 AATTAACCCTCACTAAAGGGAGA
Vi vil ikke få transkripsjon fra disse promoterene i E. coli-cellen, fordi E. coli selv ikke lager disse RNA
polymerasene. De er også sterke promotere, som gir stor transkripsjon.
Sekvenseringsvektorer
Et DNA-innskudd vil havne ved siden av en kjent vektorsekvens. Derved kan man sekvensere
innskuddet. Man kan da bruke vektorsekvensen til å lage en sekvenseringsprimer.
16.3.5 Ekspresjonsvektorer
Hvis vi har en ekspresjonsvektor, kan vi få uttrykt vårt DNA-innskudd i cellen. Det må da bli
transkribert til mRNA, og mRNA må videre bli translatert til protein. Det krever bl.a. at
DNA-innskuddet havner umiddelbart nedstrøms for en E. Coli-promoter. Vektorer med lacZ-systemet
er ekspresjonsvektorer. Det er nærmere omtale av ekspresjonsvektorer i kap. 17.
16.3.6 Subkloning (WIKI) Fra Promega
Vi kan være interessert i å flytte et DNA-innskudd fra en vektor til en annen, fordi vektorene har ulike
egenskaper og gir ulike muligheter. Vi kan da kutte ut innskuddet med 2 ulike restriksjonsenzymer, og
sette det inn i den nye vektoren med de samme 2 enzymene. Da vil vektoren havne i samme retning.
Rekombinasjonskloning, "Gateway-vektorer" Fra Invitrogen
I stedet for å "klippe og lime", kan man nå flytte et DNA-innskudd ved rekombinasjon. Ett slikt system utnytter den spesifikke rekombinasjonen som vi finner i bakteriofag l sitt att-sete ( kap. 11.4. 4). Vektorene inneholder da att-setet, og man må bruke det spesifikke enzymet som foretar denne rekombinasjonen. Dette sikrer også samme retning på innskuddet som før. Invitrogen, som introduserte dette systemet har kalt det "Gateway", dvs. port eller portal.
Dette prinsippet kan også brukes når man setter DNA-innskuddet inn i vektoren i starten. Da må dette
inneholde att-sekvensen i begge endene, slik at det kan bli rekombinert inn i vektoren. For kloning av
PCR-produkter kan dette gjøres ved å bruke primere som har att-sekvensen som hale eller tag (fig
16.9). På denne måten kan man gjennomføre kloning uten restriksjonsenzymer og ligase, men ved rekombinasjon.
16.4 l-VEKTORER
Se Fermentas
Genomet til bakteriofag l er på 48 500 bp, 48,5 kb. Av disse er ca. 19 kb ikke nødvendig for lytisk livsløp, altså for vanlig formering. Denne ikke-essensielle delen på 19 kb inneholder bl.a. b2-området og red/gam/xis/int-genene som har å gjøre med rekombinasjon (fig. 16.11). Den essensielle, nødvendige delen av l utgjøres av en venstre arm på ca. 19 kb, og en høyre arm på ca. 10 kb, til sammen 29 kb. Nærmere omtale av bakteriofag lfinnes i kap. 11.4.
For å kunne pakkes i l-hoder må DNA inneholde to cos-seter. Størrelsen på DNA må være mellom 78 og 105 % av det normale 48,5 kb, dvs. mellom ca. 38 og 51 kb. Hva slags DNA som befinner seg mellom cos-setene er ikke vesentlig. Pakkingen av DNA i l-hoder kan gjøres in vitro i laboratoriet. Man bruker da et "pakkeekstrakt", en suspensjon som inneholder alle komponenter (byggesteiner, enzymer osv.) som skal til. Når man blander dette ekstraktet med DNA, vil DNA bli pakket i faghoder.
En l-vektor må inneholde de essensielle 29 kb av l-genomet som trengs for lytisk livsløp. Men det
ikke-essensielle midtstykket kan bli byttet ut med et DNA-innskudd. Dette innskuddet kan da være på
maksimum 22 kb (5129) og minimum 9 kb (38-29). Vektor med innskudd kan da bli pakket i l-hoder,
innført i E. coli, og replikert som l DNA.
Seleksjon
Når E. coli er infisert av en l-vektor, vil l gjennomgå lytisk livsløp, dvs. formere seg og lysere cellene. Hvis man sår ut egne vertceller på en agarskål, og tilsetter en fortynnet løsning av slike l-fag, vil vi få en plakk for hver fagpartikkel. Hver plakk vil inneholde en bestemt l-vektor. Vi ønsker da å sikre oss at vi plukker rekombinerte l-vektorer, altså slike med innskudd. Dette kan sikres på flere måter.
• Hvis venstre og høyre arm på vektoren til sammen er mindre enn 38 kb, kan ikke de bli pakket hvis de er ligert direkte sammen. Da må vektoren ha mottatt et innskudd for å bli paket. Derved er vi sikret kunrekombinerte vektorer.
• Noen l-vektorer bærer lacZ'-genet og kloningsetet i dette, slik som pUC-vektorene. Vi kan derved
selektere rekombinant vektor fra bare vektor ved a-komplementasjon. Vi får hvite og blå plakk ved å
tilsette X-gal og IPTG, som beskrevet før (kap. 16.3.3).
Vi kan skille mellom to typer l-vektorer, substitusjons- eller innskuddsvektorer (fig. 16.12).
Substitusjon (replacement)
I en substitusjonsvektor bytter vi ut en bit av vektoren med vårt DNA-innskudd. Vektoren må da ha to seter for ett bestemt restriksjonsenzym, f.eks. EcoRI. Når vi kutter vektoren med dette enzymet, vil vi da få tre deler, en venstre og en høyre arm, samt midtstykket. Midtstykket kastes, og DNAinnskuddet blir ligert mellom venstre og høyre arm.
Venstre og høyre arm må inneholde den essensielle del av l-genomet. Midtstykket kan inneholde den ikke-essensielle delen, eller det kan være et hvilket som helst DNA-stykke. Det kalles gjerne stuffer (fyllmasse).
Noen vektorer har et midtstykke med en genetisk markør. Denne markøren kan brukes til å skille rekombinert vektor fra ren vektor. Når vi lager rekombinert vektor blir midtstykket erstattet med innskudd.
Med en slik vektor kan vi som nevnt ligere et DNA-innskudd på maksimum 22 kb, og minimum 9 kb.
Hvis vektorarmene blir ligert sammen igjen uten innskudd (selvligering), vil de da være for små til å bli
pakket. Derved unngår vi automatisk denne muligheten.
Innskudd (insertion)
I en innskuddsvektor kommer DNA-innskuddet i tillegg til vektoren selv. Vektoren har da bare ett
restriksjonssete for det aktuelle enzym. Ved kutting vil vi da få bare to armer, og innskuddet blir ligert
mellom disse. En slik vektor behøver bare inneholde de essensielle 29 kb DNA, men den kan også
være større. I mange vektorer er det satt inn bestemte genetiske markører i tillegg til l DNA.
Praktisk
vil kloning med l bestå av disse trinnene (fig.16.10).
1 Vi kutter l-vektor med et restriksjonsenzym. Vi skal da få to fragmenter, armer, evt. to armer og ett midtstykke.
2 Vi ligerer vårt DNA-fragment mellom vektorarmene, et evt. midtstykke kastes.
3 Vi pakker rekombinant l-vektor i hoder.
4 Vi infiserer E. coli vertceller, og overfører dette til en agarskål.
5 Rundt en infisert celle vil vi få en plakk. Her finner vi l-fag. Vi kan selektere rekombinante l-fag. Vi
kan dyrke mer av den selekterte fag, og evt. rense DNA fra disse.
16.5 COSMIDER
Original fra NAR (1981) og JB 1985
Et cosmid er et plasmid som inneholder l cos-setet. pJB18 (fig. 16.13) er et et enkelt cosmid. Det
inneholder et amp-r-gen, et E. coli replikasjons-ori, et polykloningssete, samt cos-setet fra l.
Ligering
Vi kan åpne cosmidet med ett eller to enzymer, som kutter i kloningsetet, f.eks. EcoRI og BamHI.
Dette lineære cosmidet kan ligeres med et DNA-fragment som også har EcoRI og BamHI-ender (fig.
16.14). Det vi ønsker er at DNA-fragmentet får et cosmid i hver ende, og i samme retning. I så fall vil
vi også få et cos-sete på begge sidene av fragmentet.
Pakking, overføring
Vi tilsetter så et bakteriofag l pakkeekstrakt (omtalt under l-vektorer). Vi får da pakket DNA i l-hoder,
hvis det finnes to cos-seter med avstand mellom 38 og 51 kb. Siden cosmidet selv er ca. 5 kb, må
DNA-innskuddet være mellom 33 og 46 kb stort. Dette rekombinante cosmidet, pakket i l-hoder, kan
så ganske effektivt bli overført til en E. coli-celle ved faginfeksjon (transfeksjon).
Formering
Når cosmidet er overført til E. coli, vil cos-endene gå sammen, og det blir sirkulært. Det inneholder ingen l-gener, men E. Coli replikasjons-ori. Det vil derfor oppføre seg som et plasmid og bli replikert som sådan. Det bærer også amp-r-genet, slik at celler som har mottatt cosmidet kan selekteres fra andre celler. Cosmider som ikke har mottatt noe DNA-innskudd er ikke noe problem her. For å bli pakket i l-hoder må cosmidet motta minst 33 kb DNA.
Et cosmid er altså et plasmid, men det blir ført inn i cellen ved hjelp av bakteriofag l.
Promotere
Det finnes også cosmider med E. coli-promotere ved kloningsetet. Derved har man også cosmider
som er ekspresjonsvektorer. Cosmider kan ellers inneholde de samme elementer som vanlige plasmidvektorer.
16.6.1 M13-biologi Fra MSB Fra FSU
M13 (fig. 16.15) er en trådformet (filamentøs) bakteriofag. Den inneholder et sirkulært enkeltrådet DNA (ssDNA) på 6,4 kb. Denne tråden kalles (+)-tråd. Etter infeksjon av E. coli lages en komplementær tråd, en (-)-tråd. Det dobbeltrådete DNA vi da får, kalles RF, Replikativ Form av M13 DNA. Det foregår vanlig replikasjon () av dette, som gir mer dobbeltrådet M13 DNA. Senere får vi også s-replikasjon, der (-)-tråden brukes som templat, og vi får enkeltrådet M13 DNA (+) til pakking i nye hoder. M13-fag lyserer ikke vertcellen. Nye viruspartikler kan unnslippe vertcellen uten at denne dør.
M13 kan bare infisere celler som er F+, altså celler med et F-plasmid. Dette skyldes antakelig at
infeksjonsprosessen er avhengig av pilustråder hos vertcellen som skal infiseres. Disse finnes bare
hos F+-celler.
M13-gener
M13 har 11 gener som alle er essensielle, og de ligger helt tett (fig. 16.15). Genene kalles I, II, III osv.,
og de tilsvarende genprodukter pI, pII, pIII osv. Genproduktene pII, pV og pX er involvert i replikajon
av M13 DNA, pI, pIV og pXI er involvert i å sette sammen fagpartikler (phage assembly), mens de
øvrige 5 (pIII, pVI, pVII, pVIII og pIX) er kappeproteiner.
Intergeniske områder
Det finnes bare to små områder som ligger mellom gener, de kalles intergeniske områder. I ett av disse finner vi replikasjonsorigo, for replikasjon i begge retninger, av både (+) og (-)-tråd.
Pakking
M13 (+)-DNA blir pakket i viruspartikler ved at tilstrekkelig mange M13-kodete pakkeproteiner legger seg rundt DNA. Det er ikke noen klar grense for hvor mye DNA som kan pakkes. M13-DNA som har innskutt fremmed DNA i tillegg, kan derved også pakkes som M13 fagpartikler.
f1 og fd er nære slektninger av M13, og er nesten identisk med denne.
16.6.2 M13-vektorer Fra FSU
Alle M13-genene er som nevnt essensielle. Vi kan derved ikke fjerne eller inaktivere noen av dem hvis vi skal beholde M13 sine biologiske egenskaper. Man kan imidlertid skyte inn fremmed DNA i det ene intergeniske området uten at det ødelegger fagens biologi. Her har man introdusert lacI-lacZ' med polykloningsete. Dette er det samme som vi finner i pUC18/19, og som er forklart før. Det var under utviklingen av M13-vektorer at disse DNA-sekvensene først ble utviklet og konstruert.
I vektoren
(fig. 16.16) vil et DNA-innskudd bli satt inn bak en lac-promoter, og rekombinante fagpartikler kan selekteres ved a-komplementasjon (hvite plakk). DNA-innskuddet kan derved også uttrykkes hvis man tilsetter lac-induseren IPTG.
ss og ds DNA
En celle som er infisert av M13 vil som sagt ikke bli lysert. M13-fag vil skilles ut fra cellen, som på sin
side fortsetter sitt liv. Dette medfører at vi kan isolere enkeltrådet M13 DNA fra fag i vekstmediet,
mens vi kan isolere dobbeltrådet M13 DNA fra cellene.
Sekvensering
Vi kan klone et DNA-fragment i M13, og selektere rekombinante fag. Vi isolerer så enkeltrådet M13
DNA. DNA-fragmentet er satt inn i et kjent kloningsete, så man kjenner DNA-sekvensen som
flankerer vårt DNA. Man får kjøpt enkeltrådete oligonukleotider som er komplementære til denne
flankerende vektorsekvensen. Disse vil binde seg til vektoren rett ved siden av kloningsetet, og vil da
fungere som primere for DNA-syntese. Templat for DNA-syntesen vil da være det klonede
DNA-innskuddet. Dette utnyttes ved sekvensering av DNA med dideoksymetoden, og den nevnte
primer kalles da en sekvenseringsprimer.
Fagdisplay
M13-fag blir brukt til å lage såkalte fagdisplaybibliotek. Man kan klone DNA i M13-fag og få fagen til å
"presentere" peptidet som dette DNA koder for på sin overflate. Vi får et peptidbibliotek. Dette blir
gjennomgått i kap. 17.5.
16.7 ANDRE E. coli- VEKTORER
16.7.1 Fagmider
Fagmid (phagemid) står for fag + plasmid. Med fag menes her bakteriofag. En fagmid har egenskaper
både som plasmidvektor og som fagvektor (l, M13 eller annen fag). Den inneholder replikasjonsori
både fra plasmid og fag. Vi skal gjennomgå to eksempler som illustrerer nytten av fagmider,
pBluescript og l ZAP. l ZAP er både plasmid-, M13- og l-vektor på en gang.
A pBluescript
pBluescript (fig. 16.17) er en plasmidvektor som inneholder et plasmid (ColE1) replikasjons-ori,
amp-r-genet og lacZ', akkurat som pUC-vektorene. Dessuten inneholder den en liten del av
bakteriofagen f1 (nesten lik M13), nemlig dennes replikasjons-ori. På sidene av polykloningsetet, som
sitter i lacZ', er det dessuten satt inn en T7- og en T3-promoter.
Plasmid
pBluescript-vektoren har som nevnt ett polykloningsete (MCS), hvor et DNA-innskudd kan settes inn.
Denne vektoren kan innføres i en vertcelle som plasmid. Kloningsetet sitter i lacZ'-genet, og celler
med rekombinant vektor kan selekteres ved a-komplementasjon (se pUC18), og ved at de er Amp-r.
Plasmidet blir replikert i E. coli fra sitt ColE1-ori.
M13-vektor
I pBluescript finner vi også M13 replikasjons-ori. Hvis cellen som mottar plasmidet pBluescript med innskudd samtidig er infisert av M13-fag, vil det føre til DNA-replikasjon av pBluescript fra dennes M13 ori. Denne fagen kalles da hjelpefag. Det er hjelpefagens gener som gjør at pBluescript blir replikert fra sitt M13 ori når den kommer inn i cellen. Denne replikasjonen gir som vi har sett enkeltrådet DNA, som pakkes i faghoder og skilles ut fra cellen. På denne måten kan vi få enkelttrådet DNA med innskudd, og dette kan brukes til sekvensering av innskuddet.
På sidene av kloningsetet ligger en T7 og en T3-promoter (fig. 16.17 og 16.9). Dette gjør at vi kan få i
standRNA-syntese (transkripsjon) av det innskutte DNA, in vitro (kap. 16.3). Dette kan f.eks. utnyttes
til å lage RNA-prober, både sense og antisense.
B l ZAP
l ZAP (fig. 16.18) er en l-vektor der man har satt inn pBluescript på midten! l ZAP kan brukes som en vanligl-vektor; den kan ta i mot et DNA-innskudd og pakkes i l-hoder, infisere E. coli og formere seg som fag. Rekombinant l ZAP kan selekteres ved a-komplementasjon. Vektoren selv er bare 40,8 kb stor, og kan derved motta opp til 11 kb DNA. DNA-innskuddet vil bli plassert i kloningsetet i pBluescript som omtalt over (pBluescript utgjør en del av l ZAP). Innskuddet kan f.eks. være cDNA.
På kantene av pBluescriptdelen av l ZAP sitter to sekvenser, T og I. Dette er sekvenser fra bakteriofag M13. Hvis vi infiserer E. coli med l ZAP og M13-fag (hjelpefag) samtidig , får vi replikasjon av området fra T til I, dvs. av pBluescript. Dette skjer fordi I (initiator) er signal for M13 replikasjonsinitering, og T (terminator) er signal for replikasjonsterminering. Området mellom I og T, som er pBluescript, blir derved replikert og frigjort.
ZAP
Å løfte pBluescript ut av l ZAP på denne måten kalles gjerne å zappe. Resultatet blir plasmidet
pBluescript. Siden det er en M13 hjelpefag til stede, vil vi få laget enkeltrådet pBluescript. Dette
pakkes i hoder osv., som tidligere beskrevet.
I løpet av de siste årene er det utviklet kloningsvektorer for E. coli som kan ta i mot opp til 2-300 kb
DNA-innskudd. Vi skal ta med litt om noen av disse.
16.7.2 P1-baserte vektorer
Original om P1 fra JB Original fra PNAS om P1-vektorer
P1 er en bakteriofag som pakker ca. 120 kb DNA i et faghode. Det er konstruert sirkulære vektorer
som inneholder de nødvendige P1-gener for replikasjon gjennom lytisk livsløp, og pakkesignal.
Vektoren selv er bare ca. 30 kb, slik at den kan ta opp et innskudd på ca. 90 kb. Pakkingen av
rekombinant lineær vektor skjer in vitro med et pakkeekstrakt, tilsvarende l-vektorer. Etter infeksjon
av E. coli danner den rekombinante P1-vektoren igjen en sirkel. Disse vektorene kan også inneholde
et lavkopi replikasjons-ori for plasmid. I en celle kan vi derved beholde vektor + innskudd som et
lavkopi plasmid, eller vi kan amplifisere det gjennom lytisk replikasjon som P1-fag.
16.7.3 BAC-vektorer
BAC står for bacterial artificial chromosome. Dette er vektorer som er basert på F-plasmider, altså store, lavkopiplasmider med bare 1-2 kopier pr. celle. Man har beholdt de F-genene som er nødvendig for replikasjon og for fordeling av plasmidkopiene (par), samt selve ori. En slik plasmidvektor kan motta ca. 300 kb DNA-innskudd.
Elektroporering. En BAC-vektor kan overføres til E. coli ved såkalt elektroporering. Cellemembranen
gjøres da mottakelig for DNA ved elektrisk sjokk av høy spenning (det oppstår hull i
cellemembranen). Også eukaryote celler kan behandles med et elektrisk sjokk på denne måten, og
derved motta DNA.
16.8 KLONING I GJÆR
Gjærsopp Saccharomyces cerevisiae
er blitt kalt de eukaryotes E. coli. Den er en modellorganisme for studier av eukaryote gener, og er også brukt til industriell produksjon av proteiner ved genspleising. Gjærsopp er encellet, og kan formere seg ukjønnet ved knoppskyting eller kjønnet, og den kan dyrkes i suspensjon i store eller små beholdere.
Gjærsopp har et naturlig plasmid, som er døpt 2m pga. sin størrelse. Dette plasmidet ble brukt som
utgangspunkt for å lage de første kloningsvektorer for gjær. Men det er også laget vektorer som er
basert på pBR322 fra E. coli. Disse har fått tilført de nødvendige gjærsekvenser, nemlig et
replikasjons-ori for gjær og en selektiv markør for gjær (TRP1 eller URA3).
står for yeast artificial chromosome, det er et kunstig gjærkromosom. Med dette kan man klone DNA-fragmenter på 600 kb i en celle, muligens over 1000 kb. Dette har blitt brukt til å lage genomisk DNA-bibliotek av humant DNA.
En YAC-vektor (fig. 16.19) er et sirkulært DNA som inneholder følgende elementer som er essensielle
for replikasjon av et kromosom:
Fra Access (kloning med YAC) Web-books
1 Sentromer (CEN), nødvendig for at kromosomene skal fordeles på dattercellene ved mitose.
2 Telomer (TEL), strukturer i endene av kromosomene, som gjør at kromosomet blir fullstendig replikert.
3 Replikasjons-ori for gjær.
4 Selektiv markør for gjær (TRP1, URA3).
BamHI vil kutte vektoren både i kloningssetet og mellom 2 TEL-sekvenser, slik at vektoren deles i 2
store deler. Disse blir så ligert i hver sin ende av innskuddet. Derved får innskuddet en telomer (TEL) i
hver ende, og en sentromer (CEN). Dette kunstige kromosomet kan innføres i gjærceller ved
protoplast transformasjon. En protoplast er en celle der celleveggen er fjernet.
16.9 KLONING I PLANTER
Kloning i høyerestående planter, f.eks. frøplanter, er bl.a. aktuelt innen landbruk for å framskaffe nye
genetiske varianter, altså genmodifiserte planter ( kap. 22.2 ).
Det er flere måter å overføre nye gener til en plantecelle på. En av disse utnytter jordbakterien
Agrobacterium tumefaciens.
Denne bakterien har et naturlig plasmid på ca. 200 kb som kalles Ti (tumor inducing). Bakterien er i stand til å overføre deler av dette plasmidet til planteceller, slik at dette blir integrert i plantens kromosom. Den delen som blir integrert, kalles T-DNA. I naturen inneholder T-DNA gener for plantehormoner, og disse kan føre til utvekster på plantene, såkalt kronegallesyke.
Fra BTO (om A..t. og kloning med denne
‘Man har laget små plasmider, f.eks. pBIN, som bare inneholder den delen av Ti-plasmidet som er nødvendig for overføring og integrering i planteceller. Dette er en vektor, som kan ta med seg et DNA-innskudd/gen inn i plantecellen. Man transformerer planteceller (protoplaster) som kan dyrkes i kultur på agarskåler, omtrent som man dyrker E. oli. Planteceller som er transformert med plasmidvektor + innskudd kan dyrkes opp og gi opphav til en hel plante. Vektoren må da også ha en selektiv markør. Se fig. 16.20.
Fra EJB (The agrobacterium tumefaciens gene transfer to plant cell)
Det er også mulig å innføre et nytt gen i planteceller ved direkteoverføring. Man bruker da f.eks. et bakterieplasmid med innskutt plantegen, og overfører dette til plantecellen. Dette kan gjøres på flere måter: ved protoplasttransformasjon, ved elektroporering, eller ved mikroinjeksjon. Det viser seg da at plantegenet kan bli integrert i plantens kromosomer.
Man har forsøkt å utvikle vektorer som er basert på naturlige plantevirus, men dette har vært
problematisk å få til.
17.EKSPRESJON Til bokens kapitteloversikt
|
|
|
|
|
|
17.1 GENEKSPRESJON
Det humane genomprosjektet har kartlagt rekkefølgen av våre tre milliarder DNA-baser. Vi har
derimot ikke funnet ut alt hva dette koder for av proteiner, og deres funksjon. Den humane
genforskningen går fra fokus på DNA (genomikk, genomics) til fokus på proteinene (proteomikk,
proteomics). Vi ønsker derfor å uttrykke klonede gener. Da kan vi bl.a.:
•Oppnå rask produksjon av proteiner for å studere deres struktur og funksjon.
•Innføre endringer i DNA og derved aminosyresekvensen i proteiner.
•Følge (monitorere) produksjonen av et bestemt protein over tid og sted (celleorganell/organ).
•Studere genregulering, promotere osv.
•Studere virkningen av et gen/protein på cellene, både av et innsatt gen, og ved å skru gener av.
•Lage proteinbibliotek (display).
•Få til storskala produksjon av proteiner for industrielle og medisinske formål.
•Genmodifisere dyr og planter.
•Utføre genterapi.
17.2 EKSPRESJON IE. COLI
Vektorer fra PSF (dansk) (E. coli expression vectors) Fra EMBL (Expression in E. coli)
17.2.1 Ekspresjon
Med genteknologi kan vi klone eukaryote gener, også humane, i E. coli, og få bakterien til å produsere de proteiner som genene koder for (se kap. 22.1). Punktene 1-5 under tar opp noen av de problemene som må løses i denne sammenheng. Mange av disse problemene er løst med de ekspresjonsvektorenesom vi allerede har beskrevet, bl.a. pUC18/19.
Bakterier kan ikke spleise bort introner. Hvis vi skal uttrykke et eukaryot gen i E. coli, kan vi ikke bruke
genomisk DNA. Hvis vi derimot bruker cDNA, går det bra.
La oss se litt på de elementene en ekspresjonsvektorfor E. Coli må eller kan inneholde (fig. 17.1).
17.2.2 Transkripsjon
For å uttrykke et DNA-innskudd må det sitte en promoter oppstrøms for kloningssetet MCS. Ofte brukes lac-promoteren. Denne blir brukt av E. colis egen RNA polymerase. Vi ønsker ofte å regulere denne transkripsjonen selv, slik at den ikke foregår hele tiden. For å regulere lac-promoteren må vi ha med de regulerende områdene, nemlig genet for repressor (lacI) og operatoren. Vi må da bruke en induser (IPTG) for å skru transkripsjonen på. Det foregår en viss transkripsjon også uten IPTG.
I stedet for å bruke lac-promoter, er det mange vektorer som utnytter T7-promoteren. For å få
transkripsjon fra denne må vi tilsette T7 RNA polymerase. Denne gir meget sterk transkripsjon,
samtidig som vi ikke får noen transkripsjon uten å tilsette denne polymerasen.
T7RNAP-vert (fig. 17.2)
Det er laget E. Coli-stammer som inneholder genet for T7 RNA polymerase (T7RNAP), under kontroll av den induserbare lac-promoteren og operatoren. Cellen inneholder også lac I-genet, som gir lac-repressoren. Normalt vil derfor T7RNAP-genet være skrudd av. Ved å tilsette IPTG vil lac-repressoren bli inaktiv, og E. Coli-cellen vil lage T7RNAP. Vår vektor har T7-promoteren ved siden av MCS, slik at vårt innskudd blir lest av T7RNAP.
I stedet for lac-promoter/operator er også arabinosepromoteren araBAD ( kap. 6.4) brukt til å kontrollere T7RNAP-genet.
Dette systemet gir god kontroll av transkripsjonen, samtidig som transkripsjonen fra T7-promoteren er
meget sterk.
Nedstrøms for kloningssetet må vi ha en sekvens som terminerer transkripsjonen.
17.2.3 Translasjon
For å få translasjon av mRNA må det binde seg til et ribosom. Dette krever en Shine-Dalgarno-sekvens, og denne må finnes i vektoren. Dessuten må vi ha et startkodon, og dette bør ligge ca. 8 baser fra SD-sekvensen (se også 17.4.1). Det genet vi kloner må komme i riktig leseramme for å få riktig protein. Vektoren kan også inneholde et stoppkodon nedstrøms for kloningssetet.
Når det gjelder vektorer som har lacZ'-systemet, så finner vi alle disse elemenetene i selve lac-genet
(promoter, SD, start, stopp, terminering).
17.2.4 Tag-er
Vektoren kan inneholde korte eller lange sekvenser oppstrøms eller nedstrøms for kloningssetet, som blir uttrykt sammen med vårt gen. Hvis sekvensen sitter oppstrøms, vil vårt protein få et N-terminalt tillegg. Dette tillegget er en slags merkelapp, en tag, som kan ha ulike formål.
Fra Quiagen (QIAexpress Expression System)
Epitopetag gir en kort aminsosyresekvens som et bestemt antistoff kan reagere mot. Dette gjør det
mulig å påvise og oppspore proteinproduktet etterpå.
Affinitetstag kan gjøre det lettere å rense proteinet, og kanskje gi det bedre løselighetsegenskaper.
Mange vektorer inneholder f.eks. kodonene for 6×his som affinitetstag. Disse aminosyrene gjør at
proteinet binder seg til en bestemt separasjonskolonne ved kromatografisk rensing.
Displaytag gir en signalesekvenssom gjør at proteinet blir festet i cellemembranen (se kap. 8.6.2).
Dette signalet vil dirigere proteinet som lages til cellemembranen, og vi vil finne det på utsiden av
cellen. Ett protein blir derved vist fram (displayed) på cellens overflate. En samling av slike celler med
proteiner fra ulike gener vil utgjøre et proteinbibliotek. Hver celle har ett bestemt protein. (se også kap.
17.5).
Sekresjonstag er også en signalsekvens, men denne gjør at proteinet blir skilt ut av cellen. Dette er
aktuelt hvis man vil samle opp mest mulig av det aktuelle proteinproduktet, f.eks. ved genteknologisk proteinproduksjon.
Reporter. Hvis man spesielt ønsker å se om et klonet gen blir uttrykt i en celle, kan man bruke en
vektor med reportergen. Reportergenet koder for et protein som er synlig eller målbart. Reportergenet
vil bli uttrykt sammen med det innsatt genet, og være fusjonert med det. Det kalles derfor en
fusjonspartner. Ulike reporterproteiner blir omtalt i 17.4.5.
Proteasespaltingstag. Når vårt genprodukt (protein) er laget og evt. isolert, er man interessert i å bli
kvitt tag-er og signalsekvenser. Derfor er det plassert en sekvens mellom disse og MCS som blir
gjenkjent av et proteinspaltende enzym, en protease. Dette kalles også protein cleavage site.
17.3 TRANSFEKSJON (WIKI)
Promegas transfeksjonsguide (hele) oversikt
Transfection guide fra Promega
DNA-overføring til eukaryote celler som ikke skjer ved hjelp av virus kalles generelt transfeksjon. Når
det gjelder prokaryote er det vanlig å kalle det transformasjon. Hvis det er virus som tar med seg DNA
inn i en celle, er det infeksjoneller transduksjon. ForE. Coli har vi sett at bakteriofag l, M13 og P1 er
brukt til dette. For genoverføring til eukaryote brukes også virus og virusvektorer, f.eks. adenovirus,
lentivirus og retrovirus (RNA). Retrovirusbaserte vektorer blir gjennomgått i et par linjer 21.2.
17.3.1 Stabil eller transient transfeksjon
Vi skiller mellom stabilog transient transfeksjon. Ved stabil transfeksjon vil den transfekterte cellen beholde og uttrykke det overførte DNA også etter framtidige delinger, slik at vi får en stabil cellelinje som uttrykker det klonede gen. Ved transient transfeksjon vil cellen bare beholde og uttrykke dette DNA i en viss periode.
Hos eukaryote foregår transkripsjon og replikasjon i cellekjernen. Fremmed DNA som skal uttrykkes,
må inn i kjernen der det kan bli transkribert til mRNA, som må ut av kjernen for å bli translatert. Dette
kan skje med DNA som sitter i en vektor. Vektor-DNA kan også bli replikert hvis det har et eukaryot
ori. Men hvis dette DNA skal bli ført videre til neste generasjon celler ved mitosen, må det normalt bli
integrert i et kromosom. Da vil også dattercellene etter mitosen ha dette DNA, og det har blitt en stabil
del av cellens genom.
Transient betyr midlertidig eller kortvarig. Dette innebærer at cellene mottar vektor med
DNA-innskudd og kan replikere og uttrykke dette. Men når cellen deler seg vil vektoren og
DNA-innskuddet forsvinne etter noen generasjoner. Cellen kan motta mange kopier av vektoren, og
den kan bli replikert slik at cellen får mange kopier av den. Det innsatte gen kan bli uttrykt i meget
sterk grad, men dette skjer innenfor en tidsramme på noen få døgn. Dette kan selvsagt være
interessant ved studier av genekspresjon. Vektorer for transient transfeksjon er gjerne plasmider med
et eukaryot ori, slik at de kan bli replikert i cellen, og en sterk promoter som gir stor transkripsjon.
Ved stabil transfeksjon skal cellene beholde DNA-innskuddet når de deler og formerer seg. Vi får da
en egen cellelinje som bærer det aktuelle DNA i sitt kromosom. For å være sikker på at cellene bærer
det innsatte DNA, må vi ha en selektiv markør som er satt inn sammen med vårt gen. Dette blir
gjennomgått under. Det finnes også egne vektorer som sikrer at det overførte DNA blir integrert på en
bra plass i kromosomene (se 17.4.2).
17.3.2 Seleksjon
Neoer genet for neomycin fosfotransferase. Det er fra bakterier, og gir resistens mot neomycin. I eukaryote bruker man i stedet en analog til neomycin som kalles G-418 (geneticin). Bare transfekterte celler vil vokse i medium med G-418.
Det er også andre resistensgener som blir brukt som markører i mammalske vektorer.
Utvalgte antibiotika fra Invitrogen - bl.a geneticin
dihydrofolat reduktase er nødvendig for å lage puriner, spesielt tymidinnukleotider, som igjen er nødvendig for å lage DNA (fig. 17.3A). En celle uten DHFR-genet vil derved ikke kunne dele seg og formere seg. Man har laget cellelinjer som mangler DHFR-genet, disse kan ikke dele seg. Man transfekterer disse cellene med en vektor som har DHFR-genet. Bare transfekterte celler kan vokse og formere seg. DNA-innskuddet ("Gene of Interest", GOI) sitter ved siden av DHFR i vektoren (fig. 17.3B). Hvis cellen mottar DHFR, vil den også motta GOI.
MTX(metatrexat) (WIKI) (Fra ChemBank )
er et stoff som inhiberer enzymet DHFR. De transfekterte cellene som har mottat DHFR-genet blir utsatt for MTX i gradvis økende mengde. Noen celler vil lage flere kopier av DHFR-genet, det blir amplifisert til flere plasser i kromosomene (fig. 17.3C). Celler med flere kopier av DHFR-genet vil klare seg best mot MTX, og blir selektert. Siden GOIer nærmeste nabo til DHFR, vilGOI også bli amplifisert. Vi har da oppnådd en stabil cellelinje med mange kopier av DHFRog GOI. Man kan oppnå flere hundre genkopier på denne måten. Dette vil gi stor produksjon av genproduktet til GOI, altså proteinet. Man bruker begrepet overekspresjonom slik unormal stor ekspresjon av ett bestemt gen.
Dette systemet egner seg spesielt hvis man ønsker stor produksjon av proteinproduktet fra GOI, ved rekombinant bioteknologi.
MTX brukes for øvrig ved behandling av kreft, fordi det hindrer celledeling.
GS/MSX er et liknende system som DHFR/MTX. Enzymet
GS (glutamin syntetase) (WIKI)
er nødvendig for å lage glutamin, som igjen er nødvendig både for syntese av proteiner og av puriner/pyrimidiner, dvs. DNA. Stoffet MSX (methionin sulphoximine) hemmer enzymet GS. Man bruker da celler som mangler GS-genet, og en vektor med GS-genet
Transfekterte celler kan selekteres. Ved å dyrke disse med MSX, vil man kunne selektere celler med flere genkopier.
Poster-presentasjon av GS/MSX-systemet
Cellelinjer
Cellelinjer fra Invitrogen Invitrogen: A Guide to Serum-Free Cell Culture
Hvis man ønsker stabil transfeksjon og ekspresjon, trenger man også en stabil cellelinje, celler som kan formere seg og leve lenge i kultur. Det finnes mange slike, her skal nevnes tre som har vært og er mye brukt.
er kreftceller fra menneske, nærmere bestemt fra livmorhalskreft (cervix cancer). De stammer fra en kvinne som døde i 1951
(Henrietta Lack (WIKI).
De representerte den gangen et gjenombrudd for human celledyrking, og de brukes fremdeles. Kreftceller er udødelige, i motsetning til andre celler.
Cos-celler (Invitrogen) ,
og CHO-celler, fra Chinese hamster ovary er to andre celletyper som brukes både ved stabil og transient transfeksjon.
Det er også utviklet nye humane cellelinjer som egner seg for dette, og som er blitt meget populære, med betegnelsen 293. Disse er utviklet fra embryonale nyreceller og ble kalt
HEK 293 (WIKI) (human embryonic kidney).
Integrasjon
Det finnes også cellelinjer som sikrer integrasjon av vektor-DNA på en gunstig plass i kromosomet.
Disse cellene har en rekombinasjonssekvens som også vektoren har (se 17.4.2).
2 Metoder for transfeksjon
Promegas transfeksjonsguide (hele) Transfection guide fra Promega
Se også kap. 21.2.4 om genterapi, og fig. 21.4 som illustrerer disse metodene.
Kjemisk transfeksjon
I E. Coli har man tradisjonelt brukt
til å gjøre cellene transformasjonskompetente slik at de kan ta opp DNA. For eukaryote celler brukes
ofte Ca-fosfat. Ca2+-ionene binder seg til det negative DNA og gjør at dette kan tas opp av cellen. Man
har oppnådd det samme ved å bruke positivt ladde kunstige polymerer, f.eks DEAE-dextran. Disse
kjemiske metodene kan ikke brukes på levende organismer, in vivo.
Lipofeksjon Originalt fra PNAS (1987)
Man kan bruke et amfofilt stoff, som har en hydrofob del (lipid) og en hydrofil, positivt ladd del. Den positivt ladde delen vil binde DNA, og den hydrofobe delen kan gjøre at stoffet passerer cellemembranen. Slike molekyler kan også danne
som kan smelte sammen med cellemembranen og ta med DNA. Vi kaller dette liposomer. Denne
teknikken kan også brukes på levende organismer, f.eks ved genterapi.
Mikroinjeksjon vil si å innføre vektor-DNA eller nakentDNA i en celle med en mikronål. Dette gjøres
f.eks. med embryonale stamceller når man skal lage transgene dyr.
Originalt fra MCB (1982)
Elektroporering Fra Davidson
En cellesuspensjon kan utsettes for høy spenning over meget kort tid. Da vil cellemembranens
dobbeltlag av fosfolipider bli forstyrret og danne små porer som DNA kan trenge inn gjennom.
DNA-kanon Fra Qiagen Fra Davidson
DNA kan festes til en partikel av et tungmetall (W/wolfram eller Au/gull), som kan skytes som et
prosjektil med stor kraft inn gjennom en cellemembran. Dette kalles også biolistisk avlevering.
17.4 EKSPRESJON I MAMMALSKE CELLER
Grunnen til at man vil klone og uttrykke DNA i mammalske celler er de samme som er nevnt i 17.1.
Fordelene med å klone i eukaryote/mammalske celler er at genene bli uttrykt i en mer naturlig
sammenheng enn i E. coli, med bl.a. RNA spleising og proteinbearbeiding. Studier av genekspresjon
har derved større overføringsverdi, bl.a. med tanke på medisinsk anvendelse. Man kan dyrke celler i
kultur, og studere virkningen av innførte gener på cellenes vekst, biokjemi osv.
17.4.1 Mammalske ekspresjonsvektorer
Fra Sigmaaldrich Manual fra Stratagene Fra Promega Fra Invitrogen Fra Intrexon
En ekspresjonsvektor for mammalske/eukaryote celler inneholder i prinsippet de samme elementene
som E.coli-vektorene (se 17.2), men med visse tillegg eller modifikasjoner (se fig 17.4).
En eukaryot promoter, p(kap. 8.8.1)
Det er flere eukarytoe promotere som er brukt i vektorer, bl.a. fra apeviruset SV40 og CMV (cytomegalovirus). Først og fremst trengs det en promoter oppstrøms for kloningssetet MCS, som styrer transkripsjonen av det innsatte gen. I tillegg trengs det en promoter foran markørgenet for seleksjon. Man kan også ha enhancer-elementer for å styrke transkripsjonen.
Man kan velge om man vil ha en promoter som alltid er åpen (konstitutiv) eller som kan reguleres
(induserbar). Ofte ønsker vi å kontrollere ekspresjonen av et innsatt gen.
Intron (I)
Et intron med sine spleisesignaler vil kunne øke ekspresjonen av det innsatte gen. Et kunstigintron
med sine spleisesignaler (GT...AG) er derfor ofte satt inn mellompromoter og MCS.
Kozak (K) - økt translasjon
For å sikre god translasjon av det innsatt gen kan vektoren inneholde en såkalt
Denne fremmer ribosombinding av mRNA, og inneholder starkodonet ATG. Vi finner ofte også T7-promoteren i sammenheng med Kozak-sekvensen. Dette gjør det mulig å få i stand in vitro transkripsjon og translasjon av DNA-innskuddet.
Sekvensen som er vist under inneholder både SD og Kozak, altså signaler for både prokaryot og
eukaryot ribosombinding.
Fra MAG: Translation Initiation Process in Eucaryotes
GAAGGAGATAGAACCATGG
Shine-Dalgarno Kozak-ATG
Polykloningssete (MCS)
Dette er bygget opp på samme måte som vi har beskrevet før, med mange restriksjonsseter og evt.
TOPO-sete for TA-kloning eller att-sete i gateway-vektorer.
poly(A)-signal (pA) og termineringssignal (t)
Disse gjør at transkripsjonen blir terminert etter det innsatte genet, og at mRNA får en poly(A)-hale.
Man kan bruke pA fra virus (f.eks. SV40 , CMV, Herpes simplex) eller fra et mammalsk gen (f.eks.
veksthormon, b-aktin).
En seleksjonsmarkør - SM
Genproduktet fra den selektive markøren gir cellen en egenskap som gjør det mulig å oppspore de
transfekterte cellene. Dette ble behandlet i 17.3.2, der vi omtalte genene neo, DHFR og GS.
ori
Vektoren må kunne replikeres i cellen, og det trengs da et eukaryot replikasjons-ori. Her brukes ofte
ori fra SV40. Hvis en celle skal bruke SV40-ori, trenger den et SV40-protein som kalles store
T-antigen. Det er vanlig at man bruker cellelinjer som inneholder genet for store T-antigen, mens
vektoren bare har ori.
Tag-er m.m.
Vi kan ha de samme type tager, signaler eller fusjonspartnere som i E. Coli-vektorer. Vi kan ha:
•epitopetag for å spore opp proteinet med antistoff.
Fra Biocompare Fra Stratagene (pCMV-FLAG)
•affinitetstag for å kunne rense proteinet.
•ekskresjonstag hvis proteinet skal skilles ut av cellen.
•displaytag hvis proteinet skal festes i membranen.
•et reportergen hvis vi ønsker å se proteinet, f.eks. GFP (se 17.4.5).
E. coli-elementer, skyttelvektorer
Vi ønsker kanskje også å kunne sette denne eukaryote vektoren inn i E. coli-celler, spesielt for å få et
stort antall av den. Vi trenger da et E. coli ori og en seleksjonsmarkør, f.eks. amp-r. En vektor som
kan skifte mellom ulike celler kalles en skyttelvektor(shuttle). Noen vektorer har også M13 (f1) orifor å
kunne framskaffe enkelttrådet DNA, ssDNA.
17.4.2 Vektorer for integrasjon
Det er utviklet egne vektorer som gjør at DNA-innskuddet i vektoren kan bli integrert i vertcellens kromosom. På denne måten kan man skape en stabil transgencellelinje. Dette er aktuelt ved studier av genekspresjon, men også ved genterapi og genmodifisering av dyr.
For å bli integrert i kromosomet må det skje en rekombinasjon. Problemet er at dette kan skje hvor som helst i kromosomet, kanskje i områder som blir lite uttrykt. Derved vil genet bli uttrykt meget svakt og tilfeldig fra forsøk til forsøk. Vi kan også risikere at innskuddet blir integrert et sted som skader cellens normale funksjon, f.eks. i et gen. Dette er løst ved å bruke en cellelinje som har fått innsatt en rekombinasjonssekvens R på et gunstig, transkripsjonsaktivt sted i kromosomet. Vektoren inneholder også sekvensen R. Ved rekombinasjon vil hele vektoren bli integrert i vertcellen. Derved kan det innesatt gen blir uttrykt stabilt i denne cellelinjen.
Hvis et DNA-innskudd blir integrert på en ønsket plass kalles det gene targeting (gensikting). Dette
kan brukes til å gi cellen et nytt gen, eller det kan brukes til å inaktivere et gen (gene knockout).
17.4.3 In vitro ekspresjon
Normalt forbinder vi kloningsteknikker og vektorer med å føre DNA inn i levende celler. Vi kan imidlertid også få i stand ekspresjon av et klonet gen in vitro, cellefritt. For in vitro transkripsjon og translasjon trenger vi først og fremst en god promoter (f.eks. T7) og signal for translasjonsstart (Kozak-ATG), begge oppstrøms for MCS. Vi kan også ha de andre elementer som er omtalt over, affinitetstag, epitopetag, transkripsjonsterminatorm.m.
For å få det nødvendig "maskineri", dvs. ribsosmer, byggesteiner, ATP osv., bruker man da en
suspensjon fra lyserte celler, prokaryote eller eukaryote. Ved å tilsette T7 RNA polymerase vil det da
skje transkripsjon, og deretter translasjon av vårt gen, i et reagensrør, uten celler.
17.4.4 Knockdown vektorer, siRNA
Wikipedia om siRNA, med videre linker
Om siRNA og genteknologi og vektorer:
Invitrogen om RNAi-teknologi Fra InVivoGen Fra GenLink
Vi er også interessert i å skru av
( knockout (WIKI) ) eller skru ned (knockdown(WIKI)
gener i en celle. Dette kan være for å studere gener og genregulering, men det er også aktuelt som en form for genterapi, altså påvirke genenes uttrykk. Oppdagelsen av siRNA (kap. 8.8.5) har åpnet nye muligheter. Vi har sett at dobbelttrådet RNA (dsRNA) som kommer inn i en celle kan føre til nedbryting av mRNA som har samme sekvens, og derved hindre translasjon av det aktuell gen.
For å få laget dsRNA i cellen kan man konstruere en RNA-sekvens som danner en hårnål. Koden for denne RNA må sitte i en vektor (fig. 17.5). Når vektoren kommer inn i cellen, vil DNA-sekvensen bli transkribert til RNA, som danner en hårnål, altså dobbelttrådet RNA. Dette vil sette i gang nukleaseaktiviteten til enzymene Dicer og Risk (fig. 8.25). Resultatet er at komplementært mRNA blir nedbrutt. Lengden på den aktuelle DNA-sekvensen i vektoren er ca. 21 baser.
En slik knockout-sekvens kan bli etablert i en celle permanent ved at vektoren blir integrert i cellens kromosom (stabil transfeksjon). Da vil en hel cellelinje eller organisme bli genetisk endret. Det er f.eks. laget knockout cellelinjer av mus. Vi tenker oss ett bestemt gen (med kjent sekvens) som vi ønsker å slå ut. Vi kan da finne den best mulige knockout-sekvens på ca. 20 baser ved hjelp av dataprogram.
Database over ulike Knockout mus
I siRNA-vektorene brukes en promoter for RNA polymerase III, ofte en U6-promoer fra mus eller menneske (U6 er en snRNA som er involvert i RNA spleising, se et par linjer 8.4). RNA pol III lager nemlig en kort oligo(T)-ende på RNA-produktet sitt, noe som er gunstig for at dette skal bli modifisert av enzymet Dicer etterpå.
17.4.5 Reportergener
Et reportergen gir et proteinprodukt som det er mulig å se, som gir et signal. Dette signalet kan være lys av en viss bølgelengde. Med mikroskop kan man til og med se hvor i cellen eller organismen proteinet blir laget. Derved kan vi se omgenet blir uttrykt, og hvor det blir uttrykt. Det kan også være mulig å kvantifisere dette signalet, og derved se styrken på genekspresjonen.
Fra Promega: Gene Expression & Reporter Assays
Nedenfor er tatt med noen reportergener som er i bruk. De koder for proteiner som er lette å
detektere og kvantitere. Det er også viktig at reportergenet gir et produkt som den transfekterte
vertcellen selv ikke produserer.
• GFP - Green Fluorescent Protein (WIKI)
Dette er et naturlig fluorescerende protein fra maneten
Det avgir grønt lys hvis det utsettes for UV-lys.Genet for GFP kan settes ved en promoter for å måle dens styrke, eller det kan settes nedstrøms for et annet gen, slik at GFP bli fusjonert med et annet protein som man vil følge ekspresjonen av.
Om strukturen og egenskaper til GFP
Enzymet luciferase er isolert fra ildfluer (firefly), og det er dette som gjør at disse insektene kan lyse. Enzymet kan spalte substratet luciferin, og denne reaksjonen avgir lysenergi med bølgelengde 560 nm. Dette fenomenet kalles
Energien fra en kjemisk reaksjon i en organisme blir avgitt i form av lys.En mus som har fått satt inn dette genet vil kunne bli en lysende mus!
•CAT-genet (Chloramfenikol Acetyl Transferase).
Genet for CAT er isolert fra bakterier, og gir resistens mot antibiotikumet chloramfenikol. Analyse (assay) av proteinet bruker imidlertid ikke denne egenskapen ved proteinet.
CAT-assay - fra Davidson Fra Promega
•-galaktosidase og b-laktamase
Det finnes substrater for disse enzymene som kan avgi en form for luminescens.
Vi tar med to ulike måter reportergener kan brukes på.
1 Promoterstudier
Figur 17.6 viser en vektor som kan brukes til studere en promoter. Vi har da en promotersekvens som vi ønsker å studere. Denne settes inn i vektorens kloningssete. Vektoren er selv uten promoter. Reportergenet vil vise om promoteren er aktiv eller ikke. Hvis vi har klart å klone et interessant promoterområde, kan vi studere dette videre, f.eks. ved å utføre setespesifikke mutasjoner (kap. 17.6). Vi kan da bytte ut en bestemt base med en annen, og undersøke hvilken betydning den enkelte base i promoteren har for transkripsjonen. Vektoren i fig. 17.6 inneholder også disse elementene:
•E. coli ori - for replikasjon i E. coli.
•amp-r-genet - for seleksjon i E. coli.
•f1-ori - for replikasjon i M13-fag (sekvensering)
•Poly(A)-signal - for at reportergenproduktet skal få poy(A)hale og transkripsjonen stoppe.
2 Ekspresjonsmonitorering
Reportergenet sitter nå ved siden av MCS i en ekspresjonsvektor. Vårt genprodukt fra GOIvil da få
reporterproteinet som fusjonert hale. Vektoren brukes til å innføre genet i cellekultur eller et dyr eller
plante i utvikling. Reporteren vil vise om genet blir uttrykt og i hvor stor grad. Med
fluorescensmikroskop kan man se hvor i organismen eller hvor i cellen genet blir uttrykt, og ta bilder
av dette. GFP egner seg til godt dette formålet.
Man kan "lage" mus som er født med et slikt reportergen i seg, en reportermus.Den vil lyse der hvor genet blir uttrykt. "Gleden var stor da vi så lyset første gang", skriver noen forskere i NBS-nytt om sin nye mus.
NBS-nytt 7/2006 side 25. Flere artikler om transgene knockout.mus!
17.5 FAGDISPLAYBIBLIOTEK
Vi har tidligere gjennomgått noe av biologien til den trådformede (filamentøse) bakterieofagen M13
eller f1 eller fd som er nesten identisk med M13 (kap. 16.6).
pIII og pVIII
M13 har 11 gener (I-XI) som koder for 11 proteiner, pI, pII, pIII osv. Fem av disse proteinene er kappe-proteiner, de er med på å danne kappen (kapsidet) som omgir den modne fagens DNA. I vår sammenheng er det spesielt to av disse som har interesse, nemlig kappeproteinene pIII og pVIII, som kodes av genene III og VIII.
pVIII bygger opp mesteparten av M13-kapsidet, og finnes i et antall av ca. 2700 pr. fag. Når pVIII er nylaget består det av 73 aminosyrer. De 23 N-terminale aminosyrene utgjør en ledersekvens,som gjør at proteinet festes i cellemembranen til vertcellen (E. coli). Når nye M13 fagpartikler skal skilles ut fra cellen, blir ledersekvensen kuttet bort, og de resterende 50 aminosyrene utgjør det "modne" pVIII-proteinet som danner fagens overflate. pVIII har en positivt ladd C-terminal som stikker inn mot fagens DNA, mens den negativt ladde N-terminalen vender ut.
pIII består først av 424 aminosyrer, de 18 N-terminale utgjør et lederpeptid som blir spaltet av. M13-fagen inneholder bare fem slike proteiner pr. partikkel, som er plassert i enden av fagen.
Vi bruker en plasmidvektor som inneholder genet III, evt. VIII (fig. 17.7). Kloningsetet er plassert inne i gen III, litt nedstrøms for lederpetidkoden. DNA-innskuddet havner altså inne i gen III, og blir transkribert og translatert sammen med dette. Vi får laget et fusjonsprotein. Når lederpetidet er spaltet av, vil peptidet som er kodet av vårt DNA-innskudd, utgjøre den N-terminale delen av det fusjonerte pIII. Dette proteinet vil bli brukt som kappeprotein, selv om det inneholder dette fremmedelementet. Vårt innskuddspeptid vil da bli presentertpå overflaten av M13-fagen (fig. 17.8).
Hvis vår vektor ikke inneholder alle M13-genene, er den ikke i stand til å skape nye M13-fag i E. coli. For å få E.colitil å gjøre dette må vi samtidig infisere cellen med en normal M13 (eller fd) som koder for de øvrige M13-proteiner. Dette kalles da en hjelpefag. Vektoren inneholder bare M13-genet III, samt replikasjonsorigo. Når nye M13-fag blir dannet, vil de kunne inneholde enten hjelpefagens normale M13-DNA eller vår rekombinante vektor-DNA. Men både replikasjon og pakking av hjelper-DNA er mindre effektiv enn av vektor-DNA, så de fleste utskilte fagpartikler vil inneholde rekombinant vektor-DNA. Det er dette vi er interessert i.
Kapsidet til de nye fagpartiklene kommer til å inneholde en blanding av normal pIII (pga. hjelpefagen) og rekombinant fusjonsprotein pIII.
Fagdisplayteknikken går altså kort ut på å
•sette inn en DNA-bit i en M13-vektor.
•få laget polypeptidet som DNA-biten koder for.
•få plassert peptidet på overflaten til nye M13-fag.
Fagdisplay i Wikipedia Enkel animasjon fra Dyax
Bibliotek
Display betyr framvisning. Hver M13-fag viser fram ett bestemt peptid, kodet av en gitt DNA-bit. Ved å sette inn en rekke ulike DNA-innskudd i hver sin vektor, kan vi få en rekke fagpartiler med de tilsvarende polypeptider på overflaten. Vi har da et bibliotek av polypeptider. Hver fagpartikkel har hvert sitt peptid, kodet av et innsatt DNA. Vi kan lage flere typer fagdisplaybibliotek.
Hvis vi setter inn DNA-innskudd på 15 baser, vil dette kode for 15/3 = 5 aminosyrer (et pentapeptid).
Totalt finnes det litt over tre mill. ulike pentapeptider, nemlig 205= 3,2×106. Dette krever like mange
15-base oligonukleotider. Disse kan brukes til å lage et bibliotek som ineholder alle tenkelige
pentapeptider. For proteinforskning vil et slikt bibliotek ha stor verdi.
Peptid-bibliotek fra NEB
Antistoffbibliotek
Vi kan samle DNA-fragmenter fra B-lymfocytter som koder for den variable antigenbindende delen av antistoffmolekylene (se kap. 23), og sette disse inn i M13. Vi vil da få representert det uendelige mangfold av spesifisitet som disse representerer i ett fagbibliotek.
Disse fagdisplaybibliotekene gir store muligheter for å studere proteinfunksjon og proteininteraksjoner. Det har spesielt vært stor interesse rundt studier av antistoffer. Man kan teste molekyler (potensielle antigener) og se om noen av antistoffene i et antistoffbiblioteket vil reagere og binde seg. Hvis man finner en M13-fag i biblioteket som binder et antigen, kan man plukke ut denne fagen og gå videre med den. Den inneholder genet for det aktuelle antistoffet. Man kan evt. gjøre motsatt, bruke et oligopeptid-bibliotek og teste dette mot et antistoff. Man finner da ut hva slags peptid som reagerer med et gitt antistoff.
Dette gir mulighet for å lage skreddersydde antistoffer til medisinsk bruk, såkalte terapeutiske antistoffer.
Også norske forskere arbeider intenst med disse problemstillingene, og firmaet
bruker fagdisplaybibliotek til å utvikle rekombinante antistoffmolekyler.
Det er også mulig å lage displaybibliotek med andre verter enn M13. Også E. Coli-celler kan gjøre
dette, hvis man har en vektor med en displaytag.
17.6 MUTAGENESE
I dette punktet tar vi opp hvordan det er mulig å forandre baserekkefølgen i et DNA-fragment som er
klonet, altså innføre mutasjoner etter eget ønske. Dette kan spesielt være aktuelt hvis vi er interessert
i det proteinproduktet som et klonet gen koder for. Ved å innføre små mutasjoner i genet kan vi bytte
ut en aminosyre med en annen. Dette kan ha interesse for å lære om proteinenes struktur og
funksjon, og evt. for å produsere proteiner med nye og bedre egenskaper. Vi snakker om protein
engineering, eller protein modellering. Vi kan innføre mutasjoner mer eller mindre tilfeldig, eller vi kan
innføre en helt bestemtpunktmutasjon eller delesjon hvis vi ønsker det.
17.6.1 Setespesifikk mutagenese
På engelsk kalles dette sitespecific mutagenesis. Som navnet antyder, så handler dette om å innføre en helt bestemt mutasjon, på et helt bestemt sted. Det genet der mutasjonen skal skje er på forhånd klonet i en vektor (f.eks. pUC eller pBluescript). Man må kjenne sekvensen av det DNA man ønsker å forandre (mål-DNA). Man lager et oligonukleotid på f.eks. 16 baser, som er identisk med mål-DNA, bortsett fra én base. Dette oligonukleotidet er en mutasjonsprimer(fig. 17.9).
Vektoren må være enkelttrådet, eller den gjøres enkelttrådet ved denaturering, og mutasjonsprimeren tilsettes. Primeren binder seg til mål-DNA, selv om den har én base som ikke passer (mismatch). Med en DNA polymerase (f.eks. KlenoWIKI) vil det foregå DNA-syntese fra primerens 3'-ende, og rundt hele plasmid-vektoren, til primerens 5'-ende. Vi får da en ny DNA-tråd som er lik den opprinnelige, bortsett fra den ene basen der primeren var ulik. Dette representerer en punktmutasjon i genet.
Denne nyetråden brukes så som templat ved videre replikasjon. Det finnes metoder som gjør at vi da unngår å bruke den opprinnelige tråden som templat. Ved videre replikasjon vil vi da få laget vektor med innskudd som bærer den planlagte punktmutasjonen.
Vi kan også innføre små delesjoner på denne måten. Vi kan bruke en mutasjonsprimer som
manglernoen få baser i forhold til mål-DNA (fig. 17.9). Likevel vil primeren kunne binde seg, og vi får
replikasjon. Den nye DNA-tråden vil da mangle noen få baser, men ellers være lik templaten. Vi har
fått en delesjon. Hvis mutasjonsprimeren har noen ekstra baser, vil vi oppnå en addisjon.
17.6.2 Manipulering med restriksjonsfragment
Dette er en måte å introdusere mutasjoner på en mer uspesifikk måte. Vi tenker oss at vi har et gen
som er klonet i en vektor, f.eks. pUC18. Vi finner fram til restriksjonsenzymer som kutter i dette genet
en eller to plasser, men ikke i vektoren. Vi har da flere muligheter (fig. 17.10).
A Enzymet kutter genet på to plasser. Vi får da kuttet av en bit av genet. Denne biten kastes, og vi
ligerer sammen genet igjen. Resultatet blir en delesjonsom tilsvarer den biten som ble fjernet.
B Enzymet kutter genet bare ett sted, og gir sticky ends. Vi bruker enzymet nuklease S1, som bare
fjerner enkelttrådet DNA. Det betyr at overhenget etter kuttingen blir borte, og vi får butte ender. Disse
ligeres sammen igjen. Hvis overhenget var på 4 baser, har vi oppnådd en delesjoni genet på 4 bp.
C Restriksjonsenzymet kutter genet bare ett sted. Vi bruker deretter enzymet eksonuklease III, som fjerner baser fra 3'-enden i dsDNA. Resultatet blir at begge endene av DNA får en lengre enkelttrådet bit. Deretter kan dette gjøres dobbelttrådet igjen ved DNA-syntese med Klenow polymerase. Hvis vi tilsetter mutagener på dette stadiet, vil sjansen for at det gjøres feil være stor. Til slutt ligeres genet sammen igjen. Resultatet blir en eller flere punktmutasjoneri genfragmentet.
D Man kan også kutte genet på ett sted, og sette inn et lite syntetiskDNA-fragment. Dette fragmentet
kan kode for de aminosyrer som vi har bestemt. Når dette genet senere blir uttrykt, får vi laget et
protein med de ekstra aminosyrene innsatt.
18. DNA-ANALYSER Til bokens kapitteloversikt
|
|
|
|
|
|
Kap. 14 behandlet de grunnleggende DNA-teknikkene, som:
• Gel elektroforese • Southern blotting
• Restriksjonsenzymer • PCR
• cDNA-syntese • Hybridisering
• DNA Sekvensering • Merking av DNA
I dette kapittel
DNA-teknologien utvikler seg raskt, vi får stadig nye maskiner og stadig mer automatisering og
databehandling. Vi kan da analysere bedre, mer og raskere. Dette kapittelet tar opp noen sentrale
analysemetoder, noen er klassiske og manuelle, andre er nyere og automatiserte. Men også denne
moderne genteknologien baserer seg på de grunnleggende DNA-teknikkene, og vi derfor må forstå
disse for å kunne følge med i det nye.
18.1 RFLP / SNP
RFLP - Wikipedia Max animasjon Fra Davidson
SNP (Single Nucleotide Polymorphism) ble omtalt i et par linjer 13.4.1. Fig. 18.1 viser en SNP som
ligger i et restriksjonssete. Vi kan evt. kalle det en restriksjonssete-polymorfisme (RSP). Det ene
kromosomet har sekvensen GAATTC, som er et EcoRI restriksjonssete. Det andre kromosomet har
sekvensen GAACTC, som ikke er et restriksjonssete. På dette stedet vil det ene kromosomet bli
kuttet av EcoRI, mens det andre kromosomet ikke vil bli kuttet. Begge kromosomene inneholder de
samme EcoRI-setene til sidene for denne RSP-en. I dette spesielle området av kromosomet vil EcoRI
gi restriksjonsfragmenter av ulik lengde. DNA1 gir to små fragmenter, DNA2 gir ett stort fragment. Vi
kaller det derfor RFLP, restriksjonsfragment lengde polymorfisme.Selve analysen kan gjøres med
tradisjonell blottingteknikk (gammeldags nå), eller med PCR.
18.1.1 RFLP - Southern blotting
Sykdommen sigdcelleanemi
skyldes en mutasjon i genet for b-kjeden i
Kodon nr. 6 i ekson 1 (GAG) er mutert til GTG, noe som fører til at aminosyren glutaminsyre blir byttet ut med valin. Det normale allelet kan vi kalle A og det muterte allelet S. Sykdommen nedarves recessivt, slik at bare homozygote SS får sykdommen. Heterozygote AS er bærere, uten å være syke. Sykdommen er omtalt i 20.3.2C.
I det normale allelet A vil kodon nr. 6 være en del av et restriksjonssete, nemlig CCTGAGG. Dette er sete for restriksjonsenzymet MstII. Dette enzymet vil generelt kutte i sekvensen CCTNAGG, der N kan være hvilken som helst base. S-allelet vil ha sekvensen CCTGTGG, som ikke vil bli kuttet av dette enzymet. Vi finner også kutteseter for MstII 1,2 kb til venstre (oppstrøms), og 0,2 kb til høyre for vår SNP (fig18.2).
Vi isolerer DNA fra en pasient, og kutter dette med MstII. Fragmentene separeres ved gel
elektroforese, denatureres slik at de blir enkelttrådet og blottes over på en nylonmembran (Southern
blotting, kap. 14.9). Vi hybridiserer med en probe som binder seg litt til venstre for RSP-setet. Med
A-allelet vil proben da binde seg til et fragment på 1,2 kb. Med S-allelet vil proben binde seg til et
fragment på 1,4 kb (1,2 + 0,2). En person som er heterozygot bærer (AS) vil ha begge disse allelene,
og vi vil ha bånd på både 1,2 og 1,4 kb som proben binder seg til.
18.1.2 RFLP - PCR
Vi har tidligere beskrevet forskjellen mellom blodtypeallelene A, B og O på DNA-nivå (fig. 13.22). Flere av disse forskjellene representerer restriksjonssete polymorfismer (RSP-er). Vi velger ut to slike forskjeller, nemlig posisjon 261 og 703. Nummer på de enkelte basene refererer seg til cDNA (se fig. 18.3 og 13.22).
Man har laget to sett med PCR-primere som amplifiserer området rundt disse to polymorfe posisjonene. Primersett 1 amplifiserer området rundt posisjon 258 (= PCR1), primersett 2 amplifiserer området rundt posisjon 703 (= PCR2). Vi har en DNA-prøve, og kjører PCR med disse primere.
Original fra PubMed (abstract)
Produktet PCR1
er på 209/210 bp, og inneholder posisjonen 261. Her er A og B-allelene like (GGTGACC), mens O-allelet har en delesjon her, og er (GGTACC). Enzymet KpnI har setet (GGTACC), og vil bare kutte O-allelet, ikke A og B.Ved å inkubere PCR1 med KpnI, og separere fragmentene med gel elektroforese, vil vi se om dette
PCR-produktet blir kuttet eller ikke.
Produktet PCR2 er på 128 bp, og inneholder posisjon 703. Her er A og O-allelene like (GGCT), mens
B-allelethar en punktmutasjon, og er (AGCT). Enzymet AluI har setet (AGCT), og vil kutte B-allelet,
men ikke A og O.Ved å inkubere PCR2 med AluI, og separere med gel elektroforese, vil vi se om
dette PCR-produktet blir kuttet eller ikke.
Denne PCR-metoden er mye raskere og enklere enn Southern blotting. Vi trenger ingen blotting,
ingen probe og ingen merking. PCR-produktene synliggjøres ganske enkelt med EtBr i gelen. Fig.
18.3 viser at denne analysen kan skille mellom de seks mulige genotypene.
Å innføre et restriksjonssete
I de to eksemplene som er gjennomgått, har mutasjoner i genene samtidig gitt forandring av et restriksjonssete. Dette er nok ikke det vanlige. Mange punktmutasjoner (SNP) vil naturligvis ikke ligge i noe restriksjonssete. Men dette problemet kan omgås. Vi kan introdusere et restriksjonssete ved hjelp av PCR-primeren. La oss vise dette gjennom et eksempel:
DNA1 og DNA2 er to alleler som er ulike i én base, som er understreket (C eller A). Ingen av disse
inneholder restriksjonssetet Eco RI (GAATTC). Det er også vist litt av 3'-enden av en PCR-primer.
PCR-primer: ---GAAT-3'
DNA1 ---GGATTC- - - - - - -
DNA2 ---GGATTA- - - - - - -
Vi ser at PCR-primeren skiller seg fra DNA1 og -2 i én base, som er i kursiv (A). Primeren vil likevel
binde seg og fungere, selv om det er én mismatch (primer vil binde en komplementære tråden til
DNA-1 og -2). PCR-produktet fra DNA1 vil inneholde (GAATTC), som er et EcoRI-sete.
PCR-produktet fra DNA2 vil inneholde (GAATTA), som ikke er noe EcoRI-sete. Husk at primeren blir
en del av PCR-produktet. PCR-produktene inkuberes med EcoRI, og vi ser av størrelsen om det blir
kuttet eller ikke.
Definisjon fra ChangBioscience Fra NIH
Hvis man kjenner sekvensen rundt en polymorfisme, kan man lage en ASO (allelspesifikk
oligonukleotid) som kan skille mellom de ulike alleler av et gen. Også her kan vi bruke
hybridiseringsteknikk med merkede probereller PCR med primere. Vi skal gjennomgå et eksempel på
hver.
18.2.1 ASO-prober
Allelene A og S (sigdcelleanemi) av -globingenet (HBB) er ulike bare i ett basepar. Man kan da lage
énoligoprobe som er lik A-allelet, og én som er lik S-allelet. Proben må være kort, f.eks. 19 baser.
Hvis man bruker stringente hybridiseringsbetingelser, vil en slik probe bare binde seg til det allelet
som passer 100 %. S-proben vil binde seg til S-allelet, men ikke til A-allelet (fig. 18.4).
Dotblot
Vi kan applisere DNA fra en prøveperson direkte på en nylonmembran, i to flekker (dot). DNA denatureres, slik at det blir enkelttrådet og binder seg til membranen. Til den ene flekken tilsetter vi en merket A-probe. Under stringente hybridiseringsbetingelser vil denne proben bare binde seg hvis prøve-DNA inneholder samme sekvens som proben, altså A-allelet. Til den andre DNA-flekken tilsetter vi S-probe. Når vi gjør probene synlige, ser vi hvilke prober som har bundet seg. Vi har da disse mulighetene:
1. Bare A-proben binder seg: Personen er homozygot (AA) - frisk.
2. Begge probene binder seg: Personen er heterozygot (AS) - frisk, men bærer.
3. Bare S-proben binder seg: Personen er homozygot (SS) - og har sigdcelleanemi.
Omvendt dotblot
Det er også mulig å la ASO-probene være bundet til membranen på forhånd. Man tilsetter da prøve-DNA fra en person, og ser om det binder seg til probene (fig. 18.5). I praksis må man da først amplifisere den aktuelle delen av prøve-DNA ved PCR, slik at PCR-produktene blir merket. Det er enkelttrådet PCR-produkt som tilsettes ASO-probene på membranen, og evt. binder seg. Dette kalles omvendt (reverse) dotblot.
Det er laget ASO-prober til mange ulike sykdomsrelaterte gener: -antitrypsin-mangel (lungeemfysem),
CF (cystisk fibrose), ulike apolipoproteiner og ulike HLA-typer. Disse fås kjøpt som ferdige pakker
(kits) med alt tilbehør: prober, primere osv. Det er imidlertid ikke så lett å få til en slik analyse. Det
krever god trening for å finne de spesielle stringente betingelsene som skal til.
ASO-prober brukes også ved realtime PCR (kap. 18.6).
18.2.2 ASO-primere (PCR)
Allelspesifikke oligonukleotider kan også brukes som PCR-primere. Vi må da bruke stringente hybridiseringsbetingelser, slik at bare primere som er 100 % lik templat-DNA binder seg og gir PCR-produkt. Hvis primeren har en mismatch vil den da ikke binde seg, og vi får ikke noe PCR-produkt. Det beste er hvis denne mismatchen finnes i primerens 3'-terminale base. Hvis denne basen ikke er korrekt, vil det gjøre at PCR-reaksjonen ikke vil starte. Hvis vi får et PCR-produkt i det hele tatt, vet vi at primeren var identisk med prøve-DNA.
Ved realtime PCR (kap. 18.6) bruker man allelspesifikke primere til å påvise sykdomsgener. På samme måte kan man bruke mikrobespesifikke primere til å påvise sykdomsfremkallende bakteriestammer, virus, sopp m.m. St. Olavs Hospital i Trondheim har lagt ut en liste med over 50 slike mikroorganismer på sine nettsider, som de kan påvise ved PCR-metoder.
www.stolav.no/mikrobiologi .
Database fra NCBI over SSO (sekvensspesifikke oligonukleotider)
18.3 VNTR / STR
Satellitt-DNA, VNTR (variable nnumber of tandem repeats) og STR (short tandem repeats) ble
beskrevet i kap.13.1. Vi har også sett at vi har polymorfismer i disse områdene. Det er særlig de korte
repetisjonen, STR, som blir brukt i DNA-analyser. De blir brukt både som genetiske markører
(kap.18.8 og 19.2), og ved identifikasjon innen rettsmedisin (kap. 18.3.3).
I fig. 18.8 er det vist ett av de STR-områdene som blir brukt innen rettsmedisin, med litt av de flankerende sekvensene. Dette locus kalles D7S820, ligger på kromosom 7 og har fra 6 til 15 repetisjoner av sekvensen GATA (se fig. 18.8). Vi ser her 15 GATA-repetisjoner, bortsett fra at to av dem avviker litt (GACA og GATT). Antallet kan variere fra 6 til 15.
VNTR-områdene ble tidligere analysert med Southern blottingteknikk og prober, men nå er
PCR-baserte metoder dominerende.
18.3.1 PCR av STR
Mikrosatellittene (STR) er bare omkring 100-200 baser store, og egner seg derfor til PCR. Man
trenger da et primersett som binder seg på sidene av de repeterte sekvensene. Det er ønskelig at
disse flankerende sekvensene er unike, slik at vi får amplifisert kun denne ene STR. Siden antall
repeterte enheter er variabelt, vil kromosomer fra ulike personer gi PCR-produkt av ulik lengde. En og
samme person har to kromosomer med den aktuelle STR, og kan derfor få to PCR-produkter med
ulik lengde (fig. 18.6). Hvis man er homozygot, med to like STR-er, får vi bare ett PCR-produkt.
18.3.2 Mange STR-loci
Selv om en person har de samme to bånd som en DNA-prøve ved analyse av én STR, er det ikke
sikkert at det er samme person. Det er en viss statistisk sjanse for at to personer har de samme to
bånd, f.eks. 8 og 11 repetisjoner som i fig. 18.6. Denne sannsynligheten kan beregnes når man vet
hyppigheten av de ulike variantene (allelene) i befolkningen (se tabell 18.1). I praksis analyserer man
mange STR-loci i samme analyse. Alle disse loci krever hvert sitt primersett. I 1998 var det vanlig
med seks sett, i 2002 finnes det "kits" med 15 primersett. Man kan da analysere 15 ulike polymorfe
STR-områder samtidig. Det finnes et internasjonalt samarbeid om slike analyser, slik at man bruker
de samme STR-loci i alle land.
DNA-profil
DNA Fingerprinting fra Wikipedia Fra Naked Science Introduksjon fra NIST
Det er nå mulig å kjøre PCR med 15 ulike primersett i ett rør samtidig. Dette kalles multipleks PCR. Deretter separeres PCR-produktene ved elektroforese. Vi får da 2×15 bånd fra en person, hvis han er heterozygot for alle loci. Dette kalles en DNA-profil. Fig. 18.7 viser dette, med fire STR-loci. Nå brukes det mer og mer kapillær elektroforese. I stedet for et båndmønster (fig. 18.7) får man da skrevet ut et diagram med en topper, et elektroferogram (fig 18.8).
Fig. 18.8 illustrerer systemet "AmpFlSTR® Identifiler" fra AB. Her brukes det 15 ulike STR-loci + X/Y. PCR-primerne er merket med fire forskjellige farger; fire blå, fem grønne, fire gule (svarte i figuren) og tre røde. Vi får da PCR-produkter fra fire blå STR-loci, fem grønne osv. Primerne er laget slik at PCR-produktet fra ett blått locus ikke har samme lengde som noen av de andre blå. Lengdene for de blå er slik (i antall baser): Locus D8S1179 (123-170), D21S11(184-240), D7S820 (255-291) og CSF1PO (304-341). Siden de har ulik farge eller størrelse, kan man skille mellom PCR-produktene fra alle de 16 loci.
Figuren viser hvordan det kan se ut hvis alle allelene fra hvert STR-locus er med, og vi får alle
tenkelige bånd/topper. Antall ulike alleler i hvert locus er mellom 8 og ca. 25. I en analyse av en
person vil vi få to eller en topp av hver kategori. Genotypen til en person kan da oppgis som 15 sett
med tall, ett eller to fra hvert locus. Man oppgir da antall repeterte enheter i hvert locus, for D7S820
f.eks. (8, 11).
STR-Database fra NIST Fra AB Bulletin fra AB
Y-kromosomet
I voldteksssaker vil man ofte finne mye DNA fra det kvinnelige offeret, og kanskje minimalt fra en mannlig gjerningsmann. Kvinnens DNA-profil kan derved fullstendig overskygge det lille som stammer fra mannen. Man kan nå analysere VNTR-områder som ligger på Y-kromosomet, slik at bare mannlig DNA kommer til syne. I Norge brukes nå et kit som kan analysere 10 ulike STR-loci på Y-kromosomet samtidig.
Product Bulletin fra AB
18.3.3 Rettsmedisin *W Fingerprinting(WIKI)
DNA i rettessalen, fra Bioteknologinemnda
Hva er rettesgenetikk? Fra rettsmedisinsk institutt, UiO
Fra Forskning.no; Slektningers DNA avslører forbryteren
Analyse av STR-områder kan brukes til å avgjøre om en DNA-prøve stammer fra en bestemt person eller ikke. Som DNA-kilde er det nok med en blodflekk, et hår (hårrot), litt sæd, spytt, epitelceller osv. Man sammenlikner da båndene eller toppene fra den mistenkte med DNA-prøven fra åstedet. Ved en drapssak på Mysen i 1989 ble en morder funnet ut fra en slik DNA-test. Det var første gang dette skjedde i Norge. Etter dette har vi hatt flere liknende saker. I USA er et stort antall dømte personer sluppet fri etter at en DNA-test har vist at de ikke var skyldige!
Ved Svalbardulykken
i august 1996 omkom 141 mennesker i et flyhavari. Ved hjelp av DNA-analyse fra 257 kroppsdeler og fra nære slektninger til de omkomne kunne man identifisere alle kroppsdeler, slik at de kom i rett kiste. Dette arbeidet ble utført ved rettsmedisinsk institutt ved Rikshospitalet i Oslo, og var fullført 20 døgn etter ulykkesdagen.
I 2005 var
fra Stavanger en av de mest kjente sakene der DNA-analyser ble anvendt i stort omfang.
Generelt kan slike DNA-analyser brukes ved:
•Kriminalsaker
•Spørsmål om slektskap, bl.a. farskapssaker
•Massekatastrofer - identifikasjon av funn
Antallet kriminalsaker der man bruker DNA-tester har økt eksplosivt de siste årene. I 2003 ble det utført DNA-analyser i 993 saker, i 2004 var det litt over 2000 saker. Av disse var 319 seksuelle overgrep, 58 drapssaker, 91 legemsbeskadigelse, 1142 tyveri/ran/innbrudd, 33 identifikasjon av døde, 293 narkotikasaker. Tallene viser at slike DNA-tester ikke bare blir brukt i alvorlige voldssaker, men også innen "hverdagskriminalitet".
Hvis man bare har funnet hårstrå (uten kjerne-DNA) i en slik sak, kan man evt. bruke mtDNA til
identifikasjon. Men her er det ikke snakk om STR-områder, men ulik grad av likhet i bestemte
hypervariable DNA-sekvenser (se kap. 13.5.5).
18.3.4 Hvor sikkert?
La oss gjøre et lite regnestykke. Vi har 11 STR-loci med 10 mulige varianter i hvert locus, og vi antar at hvert av disse 10 er like vanlig i befolkningen (noe som ikke er korrekt, jf. tabell 18.1). Sannsynligheten for at to personer er like for ett locus er da 0,1×0,1 = 0,01 (1 %). For 11 loci blir sannsynligheten for slik tilfeldig likhet (0,01)11 = 10-22. AB (Applied Biosciences) oppgir at sjansen for tilfeldig likhet i DNA-profil med deres analyse-kit er 1 til 1000 mrd. (ca. 10-12). Hvis to DNA-prøver matcher for alle 11 loci, er man med andre ord sikker på at de stammer fra samme person!
I virkeligheten har ikke alle STR-alleler i ett locus samme hyppighet, slik vi antok i regneeksemplet over. Tabell 18.1 viser
allelfrekvensen i locus D7S820 (alle loci)
i ulike deler av den amerikanske befolkning. Vi ser f.eks. at 27,2 % av den hvite (kaukasoide)
befolkningen har allelet STR10. Andelen av befolkningen som er homozygote for STR10 er da
(0,272)2 = 0,074, dvs. 7,4 %.
18.3.5 Slektskap?
DNA-profiler brukes som nevnt også for å undersøke slektskap mellom personer. Vi arver som kjent ett kromosom fra far og ett fra mor av hvert par. Derved vil vi ha ett bånd som er likt med vår mor og ett med vår far fra hvert locus.
DNA-analyser brukes nå rutinemessig i farskapssaker. Gamle farskapssaker er blitt gjenopptatt og avgjort med sikkerhet med DNA-test. Man kan også avgjøre en farskapssak selv om den aktuelle far er død eller utilgjengelig. Man må da ha DNA fra nære slektninger av vedkommende, f.eks. hans foreldre eller søsken. Barnet har arvet ett bånd fra sin far, som igjen har arvet dette fra sin far eller mor. Ett av barnets bånd skal derved finnes hos den riktige farfar eller farmor! Se fig. 18.9.
Også i innvandringssaker og familiegjenforeningssaker er DNA-tester brukt for å avgjøre om to
personer tilhører samme familie eller ikke.
18.3.6 DNA-fingeravtrykk
Det var engelskmannen
som startet utviklingen av slike DNA-analyser i 1980-årene. Den gangen brukte man Southern Blotting-teknikk, og prober som bandt seg til restriksjonsfragmentene. Probene kunne binde seg til DNA i flere VNTR-områder, fordi disse områdene hadde stor likhet, og fordi hybridiseringsbetingelsene ikke var stringente.
Dette ble kalt DNA-fingeravtrykk (fingerprinting). De ble tolket på samme måte som en DNA-profil,
men det ble mange bånd, og resultatet var vanskelig å tolke.
18.3.7 DNA-register
NOU 2005: 19 Lov om DNA-register til bruk i strafferettspleien
DNA/registrering av hele befolkningen? - Hefte fra bioteknologinemnda
Forskning.no: DNA-register – fordel eller fare?
De DNA-profilene som er laget i kriminalsaker kan bli oppbevart i et DNA-register hos politiet
(KRIPOS). I nye saker kan politiet raskt sammenlikne DNA-profilen fra åstedet med profilene i
registeret. Hvis man finner profilen her, kan man raskt finne fram til rett person. Dette kan medføre
rask oppklaring, og kanskje hindre gjentakelse. En DNA-profil består av tall som angir antall
reptisjoner i de ulike STR-loci. Slike data kan oppbevares i databaser som det er lett å søke og finne
fram i. I september 2005 inneholdt politiets DNA-register profilen til mer enn 7000 personer.
Internasjonalt samarbeid
For å kunne utnytte DNA-registre må alle prøver være analysert med de samme markørene og samme standarder. Det er derfor etablert et internasjonalt samarbeid om dette. Dette ble startet i 1998 i USA (FBI) og kalles
CODIS (Combined DNA Index System)
De opererer med 13 standard STR-loci. Det er også et utstrakt europeisk samarbeid om disse spørsmålene.
Et rent DNA-register vil ikke inneholde DNA, bare DNA-profilen, fra de aktuelle STR-loci. Det kan derfor ikke brukes til å finne ut noe om genene til en person. En samling av DNA (biologisk materiale) kalles en biobank, og kan det derimot brukes til genetisk kartlegging. Noen mener imidlertid at også et DNA-register bør inneholde DNA, slik at man kan oppdatere profilen hvis det brukes nye markører i framtida.
Adgangen til å lage og oppbevare slike DNA-registere er lovregulert, og under stadig debatt. I Norge er det (i 2006) bare tillatt å ha personer som er dømt for alvorlig vold i et slik register. Politiet og mange andre ønsker å utvide denne adgangen til å gjelde alle personer som har vært dømt eller mistenkt for kriminalitet. Noen ønsker kanskje at politiet skal få ha et DNA-register med hele befolkningen. Datatilsynet i Norge er blant dem som advarer mot en slik utvikling.
I England er det over 3 mill. mennesker som befinner seg i politiets DNA-register.
Alle personer som er innblandet i noen form for kriminalitet skal være registrert. Dette skal ha resultert i at oppklaringstakten (i tid og antall) har økt kraftig i løpet av få år. Det ser ut til å være politisk klima også i Norge for å øke politiets adgang til å lage og oppbevare DNA-registre.
18.4 FOOTPRINTING (Wiki)
Footprinting er en teknikk som brukes til å studere bindingen av proteiner til DNA (fig. 18.10). Et eksempel på dette kan være å finne ut hvor en bestemt transkripsjonsfaktor binder seg.
Man har den aktuelle DNA-sekvensen (mange kopier) og proteinet sammen, slik at proteinet kan binde seg. DNA-molekylet er merket i den ene enden. Man bruker DNase I, som kutter DNA tilfeldige plasser. Man bruker lite enzym og kort tid, slik at DNA-tråden bare blir kuttet på ett sted. Noen tråder blir kuttet her og noen der, men ingen blir kuttet der hvor proteinet er bundet. Deretter endrer man forholdene slik at proteinet løsner fra DNA, og man kjører dette på gel elektroforese. DNA-fragmenter som inneholder merket i enden vil være synlige.
Resultatet blir at DNA-fragmenter av en viss størrelse vil mangle, fordi proteinet hindret kutting der
hvor det satt. Man kan derved se hvor proteinet dekket DNA, i forhold til det stedet der merkingen var.
Selv om vi har lokalisert et sykdomsrelatert gen hos en pasient, kjenner vi ikke nødvendigvis hvilken
mutasjon som gir sykdommen. Det er f.eks. kjent ca. 200 ulike mutasjoner i genet som gir Føllings
sykdom (PKU). I kreftrelaterte gener, f.eks. p53-genet TP53 og brystkreftgenet BRCA1 kan det være et
betydelig antall ulike mutasjoner som gir økt kreftrisiko. Det finnes metoder som ganske raskt kan
påvise om det er en mutasjon eller ikke. Hvis vi finner at det er en mutasjon, kan vi deretter prøve å
lokalisere den, f.eks. ved DNA-sekvensering. Det er da mulig å lage en spesifikk test for denne
spesielle mutasjonen, som forekommer i den aktuelle familie. Vi skal kort beskrive noen metoder som
brukes for å oppdage om det finnes en mutasjon i et gen.
18.5.1 Heterodupleksanalyse
Se fig. 18.11. Vi starter med å PCR-amplifisere den delen av genet vi skal undersøke. Dette betyr at vi må kjenne sekvensen av genet eller en del av det. Vi kjører da PCR av genomisk DNA fra prøvepersonene.
En person som bærer en mutasjon vil normalt være heterozygot, og ha ett villtypeallel og ett mutantallel. Vi vil da få to ulike PCR-produkter, ett fra hvert allel. En PCR-tråd fra villtypeallelet vil også kunne hybridisere med den komplementære PCR-tråd fra mutantallelet. De skiller seg kanskje bare i én base. Vi får da et heterodupleks. En person uten mutasjon vil derimot ha to villtypealleler, og vi får ikke noe heterodupleks.
Ved elektroforese vil et heterodupleks bevege seg saktere enn et perfekt homodupleks. Vi kan derved se om personen bærer en mutasjon eller ikke. En heterozygot vil kunne danne to homoduplekser og to heteroduplekser, og det kan være mulig å se 2 + 2
bånd.
18.5.2 SSCP
Fra Davidson
SSCP står for single-strand conformation polymorphism; evt. skriver man SSCA, der A = Analysis (se
fig. 18.12). Også her amplifiserer vi en del av genet med PCR (ca. 200 baser) , men vi analyserer
produktene som enkelttrådet DNA. Vi kan da først denaturere DNA, og deretter bruke
ikke-denaturerende betingelser i gelen. Det enkelttrådete DNA vil da kunne danne sekundærstrukturer;
hårnåler o.l. Dette skyldes at små biter av samme DNA-tråd kan være komplementær med seg selv.
En forskjell mellom to PCR-produkter på én base kan være nok til at sekundærstrukturen blir
forskjellig. Ved gel elektroforese vil disse ulike sekundærstrukturene av DNA bevege seg ulikt. En
homozygot person vil ha to typer ssDNA (de to komplementære trådene), og derved to mulige bånd.
En heterozygot person (med mutasjon) vil ha fire bånd.
18.5.3 DGGE
DGGE står for denaturerende gradient gel elektroforese (se fig. 18.13). Vi lager også her PCR-produkt av den sekvens av genet som skal undersøkes. Det kjøres elektroforese på en gel som inneholder denaturerende middel (f.eks. urea) i en gradvis økende konsentrasjon. Denne gradienten kan være på tvers av kjøreretningen. Der hvor det er ikke-denaturerende forhold, vil alle PCR-produktene være perfekt dobbelttrådet, og bevege seg raskt. Ved høy konsentrasjon av denatureringsmiddel vil alle tråder være enkelttrådet, men uten sekundærstrukturer, og alle DNA-trådene går langsomt. I den gradienten som er mellom disse ytterlighetene vil vi ha varierende grad av smelting av trådene. Vi får en S-formet kurve.
Hvis prøvepersonen er heterozygot vil vi få dannet to homoduplekser og to heteroduplekser ved PCR, på samme måte som ved heterodupleksanalyse. De to homodupleksene vil smelte ved høy konsentrasjon av denatureringsmiddel (mot høyre på figuren). De to heterodupleksene vil smelte lettere, og derved ved en lavere konsentrasjon. Vi kan få S-kurver. En homozygot, uten mutasjon, vil bare ha ett homodupleks, og vi får én S-kurve. Bildet vil da vise om prøvepersonen var homozygot eller heterozygot (med mutasjon).
For å unngå fullstendig atskillelse av de to trådene ved denaturering brukes en såkalt GC-klemme
(GC-clamp). Vi lar da den ene primeren ha 20-30 G/C-baser i enden. Dette området av PCR-produktet
vil ha ekstra høyt smeltepunkt, og de to trådene holder sammen selv ved høy konsentrasjon av denatureringsmiddel.
18.5.4 PTT
PTT står for protein truncation test (se fig. 18.14). Truncated protein betyr forkortet protein. Dette kan dannes hvis vi har en nonsense punktmutasjon (som gir stoppkodon), eller en liten delesjon/insersjon. De sistnevnte gir, som vi har sett før, en leserammeforskyvning, og det er da stor sannsynlighet for at et stoppkodon kommer i leserammen, slik at vi får for tidlig avbrutt translasjon. Det er dette som kan påvises ved denne metoden.
Vi starter med å isolere mRNA, vanligvis fra blod. Ved hjelp av revers transkriptase lages det cDNA, som brukes som templat for PCR av det aktuelle gen (RTPCR). Det spesielle her er at den ene PCR-primeren har enhale. Denne halen kommer i tillegg til den genspesifikke delen av primeren. Den genspesifikke delen binder seg til cDNA-templaten, men også halen vil bli en del av PCR-produktet.
PCR-primer-halen kalles T7-ATG. Den inneholder en 18 bp stor T7-promoter, og et 8 bp stort eukaryot
translasjon startsignal, som blir kalt Kozak translation initiation signal (kap. 17.4.1). I tillegg kan den
inneholde et restriksjonssete helt i starten, slik at PCR-produktet kan klones hvis vi ønsker det. Disse
sekvensene kan være som vist her (de kan variere litt):
5'-CGGGATCC- (BamHI-sete)
-TAATACGACTCACTATAG- (T7-promoter)
-GCAGACCACCATGG- (Kozak-ATG)
- - - - - - - - - - - (genspesifikk sekvens)
Vi utfører in vitro transkripsjon og translasjon av dette PCR-produktet. Det er T7-ATG-halen som gjør at dette er mulig. Ved å bruke T7 RNA polymerase, vil transkripsjonen kunne starte fra T7-promoteren, og Kozak-sekvensen gjør i neste omgang at translasjonen starter. Primeren må være designet slik at translasjonen skjer i riktig leseramme. Til selve transkripsjonen og translasjonen får man kjøpt kits som inneholder alle nødvendige byggesteiner og enzymer. Dette er gjerne basert på lysat fra reticulocytter.
Vi får laget et polypeptid som er kodet av det aktuelle mRNA. Dette analyseres ved SDS-PAGE (fig. 4.12), som separerer proteiner kun etter størrelse. Vi kan derved se størrelsen på proteinet, dvs. genproduktet. For å detektere proteinene i gelen, bruker man gjerne aminosyrer som er merket radioaktivt eller på annen måte.
Hvis det analyserte DNA er normalt, vil vi få ett protein av full størrelse. En mutasjon i DNA vil gi et forkortet (trunkert) protein. En heterozygot person vil få begge deler, altså to bånd. Hvis mutasjonen ligger helt i 5'-enden (begynnelsen) av genet, kan genproduktet bli så svakt merket at vi ikke oppdager det. Hvis mutasjonen ligger nær 3'-enden (slutten) av genet, kan det forkortede proteinet være så likt det normale i størrelse at vi ikke oppdager det.
Svakheten med denne metoden er at den bare detekterer nonsensemutasjoner og delesjoner/insersjoner. De fleste punktmutasjoner er missense (aminosyrebytte). Men det kan også tenkes at man kan oppdage missensepunktmutasjoner ved denne metoden. Man må da ikke analysere proteinet med SDS-PAGE, men med metoder som kan skille proteinene etter andre kriterier, f.eks. isoelektrisk fokusering. Da kan man kanskje oppdage genprodukter med gal aminosyre, altså missensemutasjoner.
Vi kan også få informasjon om mutasjoner ved å analysere selve PCR-produktet. Dette kan ha en
unormal størrelse hvis det er en delesjon eller insersjon, og hvis det er en punktmutasjon i RNA
spleiseområdene.
18.6 REALTIME PCR OG DNA SMELTEPROFILER
Fra Invitrogen/molecvular probes: handbook
Denne teknikken ble utviklet rundt 2000, og har nå fått bred anvendelse. Det er laget kits for rask påvisning av en lang rekke sykdomsgener (gentester). Man trenger da allelspesifikke primere for det aktuelle genet. På tilsvarende måte er det kits for å påvise sykdomsfremkallende mikroorganismer og virus. Dette krever at man kjenner en spesifikk DNA-sekvens fra f.eks. en farlig bakteriestamme, slik at man kan lage mikrobespesifikke primere. I tillegg til dette kan metoden brukes til kvantitering (mengdebestemmelse) av en bestemt DNA eller RNA-sekvens i en prøve.
Dette er eksempel på en automatisert analyse som krever dyrt teknisk utstyr, inkl. datavare. Ordet
realtimeoversettes med sanntid, og innebærer at man følger reaksjonen og ser resultatene mens den skjer.
18.6.1 Q-PCR
Det aktuelle DNA-området amplifiseres med to PCR- primere, som vanlig. Med meget små volum (20 L) og tynne prøverør kan det brukes mindre enn ett minutt per PCR-runde, og det kan kjøres over 30 prøver samtidig. Mengden PCR-produkt kan måles kontinuerlig mens man kjører.
er en forbindelse som binder seg til dsDNA i minor groove (fig. 18.15), i motsetning til EtBr som binder
seg ved å interkalere mellom baseparene. SYBR Green er fluorescerende, men bare når den er
bundet til dsDNA, ikke i fri tilstand. Ved hver runde i PCR blir det mer og mer dsDNA, nemlig
PCR-produktet. Derved vil vi detektere økt fluorescens, og kan følge mengden PCR-produkt. Mengden
fluorescens i starten utgjør et 0-punkt eller baseline.
Q-PCR og QRT-PCR
På grunnlag av denne kurven kan man også finne mengden DNA i utgangspunktet, altså av den aktuelle templat. Dette er derved en måte å kvantitere spesifikt DNA i en prøve.
Man kan også utføre realtime PCR med mRNA som utgangspunkt. Da må man først kjøre en runde
med revers transkriptase (RT), slik at man får laget en cDNA-tråd. Deretter fortsetter PCR på vanlig
måte. Med genspesifikke primere kan man få amplifisert bare en bestemt mRNA-sekvens, og
bestemme mengden av denne som fantes i utgangspunktet. Vi har da kvantitativ revers transkriptase
PCR, QRT-PCR.
18.6.2 Allelspesifikke prober
SYBR-green gir et bilde av mengden DNA som blir laget i reaksjonen, men er ikke noen sikker
påvisning av spesifikt DNA. Det vil også binde seg til evt. uspesifikke produkter. Det er derfor utviklet
egne prober som sikrer påvisning av bestemte alleler eller andre DNA-sekvenser. Vi skal omtale tre
slike: FRET-prober, TaqMan-prober og Molecular beacons.
Ny generasjon prober
Disse probene er av en ny type i forhold til før. Tidligere bandt proben seg til DNA som satt fast på en
gel, nylonduk el.l. Overskudd probe måtte da vaskes bort. I et PCR-rør er alt i løsning, både ubundet
og bundet probe. Det er derfor nødvendig med prober som bare gir signal når de er bundet til
målsekvensen, evt. omvendt. Vi skal se hvordan dette er løst.
1 FRET Litt basalt om FRET Fra UDEL Fra Invitrogen
FRET står for fluorescence resonance energy transfer. I PCR-blandingen er det også to genspesifikke DNA-prober. Disse er konstruert slik at de binder seg spesifikt til PCR-produktet, rett ved siden av hverandre (fig. 18.16). Probe 1 er merket i 3'-enden med f.eks. fluorescein (F1), mens probe 2 er merket i 5'-enden med en annen fluorofor (F2). Ved belysning vil F1 (donor) ta opp lysenergi med bølgelengde l1 og bli eksitert. F1 avgir deretter lysenergi med bølgelengde l2 , som tas opp av F2, som derved også blir eksitert. Til slutt avgir F2 lysenergi ved en bølgelengde l3, som blir detektert og målt. For at dette skal skje må F1 og F2 være svært nær hverandre, dvs. at begge probene må være bundet for å få målt lys. Denne energioveføringen kalles FRET.
Smeltekurve Fra Roche
Den ene proben (ankerproben) matcher 100 % med PCR-produktet (dvs. prøve-DNA) i området ved siden av mutasjonen. Den andre proben (mutasjonsproben) dekker det området av prøveDNA der det kan være en mutasjon. La oss anta at mutasjonsproben er identisk med mutant-DNA, og da ikke med normal-DNA (det kan evt. være motsatt). Ved lav temperatur vil begge probene sitte fast, uansett, og vi får et sterkt FRET-signal. Ved oppvarming vil mutasjonsproben løsne fra normal-DNA ved en lav temperatur, siden den ikke er 100 % identisk (mismatch). Den vil løsne fra mutant-DNA ved en høyere temperatur, siden den her matcher 100 %. Vi får to ulike smelteprofiler. Fluorescens-signalet fra F2 blir borte når mutasjonsproben løsner, slik at smelteprosessen kan følges ved å måle dette signalet (fig. 18.17). Hvis prøve-DNA er fra en heterozygot person, som har både normal-DNA og mutant-DNA, vil vi få begge smelteprofiler på en gang.
Hvis vi studerer den deriverte av fluorescensen F, (dF/dT) ser vi enda tydeligere forskjellen i
smeltepunkt mellom villtype og mutantallel (fig. 18.17).
Alt - i - ett
Alle disse funksjonene utføres i PCR-maskinen. Vi kan altså få smeltekurvene for PCR-produktet
umiddelbart etter PCR-kjøringen - alt på dataskjermen, med tilhørende programvare. Dette systemet
brukes av Roche Lightcycler.
2 TaqMan
En TaqMan-probe (fig. 18.18) er en genspesifikk probe som er merket med to molekyler, en fluorofor (F) nær 5'-enden (en reporter), og en quencher (Q) nær 3'-enden. En quencher er et molekyl som fanger opp lysenergien fra reporteren uten å sende det videre. Quencheren gjør at reporteren F ikke gir noe signal så lenge de sitter sammen på proben.
Reporterproben er laget slik at den binder seg til et område av målsekvensen, altså PCR-produktet.
Den vil heller ikke da gi noe signal, så lenge quencher og reporter er i nærheten av hverandre. Husk at
PCR-produktet fra en runde er templat i neste runde. Når neste runde av PCR starter, vil både
PCR-primeren og reporterproben feste seg. DNA polymerase vil lage nytt DNA fra primeren, og når
den kommer til det området der reporterproben sitter, vil denne blir "spist opp", fordi enzymet har 5'®3'
eksonukleaseaktivitet. Derved vil proben bli splittet opp i enkle nukleotider som går i oppløsning. Da vil
quenchingen opphøre, og reporteren vil gi signal (emisjon). Dette signalet vil være spesifikt for
PCR-produktet, siden proben bare sitter der, og blir spist opp i det PCR-produktet blir laget. Det er
enzymet taq polymerase som spiser opp reporterproben, og disse probene kalles derfor
TaqMan-prober (fra AB - Applied Biosystem).
3 Molecular beacon (fyrtårn)
Introduction fra GenLink (og mer detaljert manual)
Man kan evt. bruke en annen type reporterprobe enn TaqMan, nemlig molecular beacons, molekylære fyrtårn (fig. 18.19). Dette er også en genspesifikk probe, komplementær til PCR-sekvensen. Proben er konstruert slik at den samtidig danner en hårnål, så lenge den ikke er bundet. Hvis den binder seg som probe, vil hårnålen bli "oppløst". Det skal selvsagt mye til å finne en sekvens som både danner hårnål og som er genspesifikk.
Proben har en fluorofor F i 3'-enden og en quencher Q i 5'-enden. I fri form (hårnål) vil F og Q være
svært nær hverandre, og vi får ikke noe signal. Bundet som probe vil F og Q ha så stor avstand at
quenchingen ikke virker, og vi får et signal. Dette er altså en probe som bare gir signal når den er
bundet.
18.7 DNA-BRIKKER (wikipedia, med mange eksterne linker)
Wiki om Affymetrix Max animasjon
Automatisert sekvensering med DNA-brikker, Fra Arizona
18.7.1 Prinsipp
En DNA-brikke (chip) er en liten glassplate e.l. som vi kan tenke oss delt opp i et rutenett, med rundt 100000 ruter totalt. Hver rute kan være så liten som 10-100 m hver vei, og hele rutenettet er på 1×1 cm. Dette girtotalt 100 til 1000 ruter hver vei, samlet 10000-1000000. Man kaller gjerne dette for en mikromatrise eller mikroarray.
I hver rute på brikken blir det festet en bestemt DNA-sekvens, dette kaller vi probe (fig. 18.20). Dette kan være en syntetisk laget sekvens ("oligo") eller en bit av et bestemt cDNA. Hele brikken kan da inneholde flere hundre tusen ulike prober, én type i hver rute. Hver rute kan inneholde et ganske stort antall av den bestemte proben som er der, kanskje noen hundre tusen.
Produksjonen av denne DNA-brikken kan skje på to ulike måter. Man kan lage DNA på forhånd (f.eks.
med PCR fra et cDNA-bibliotek) og deretter feste det til brikken, en type cDNA til hver sin rute. Man
kan også syntetisere DNA direkte på selve brikken, slik at det blir laget en egen sekvens i hver rute
("fotolitografi"). Å gjøre dette presist på så små flater krever maskiner med stor presisjon, vi har et
eksempel på såkaltnanoteknologi.
Prøve-DNA
Vi ønsker f.eks. å analysere DNA fra en pasient eller fra visse celler. Dette kan være cDNA eller
PCR-produkt fra genomisk DNA. Dette prøve-DNA må være merket, vanligvis med et fluorescerende
stoff. Ofte brukes det DNA fra to ulike kilder samtidig (prøve-DNA og referanse-DNA). Da må disse
være merket på ulik måte, med hver sin farge - "rødt" og "grønt". Cy3 og Cy5 er betegnelsen på to
vanlig stoffer til slik fluorescensmerking.
Hybridisering
Vi tilsetter merket prøve-DNA til DNA-brikken med probene på, slik at det kan skje en hybridisering.
Prøve-DNA vil da feste seg til de rutene der det finnes komplementære DNA-prober.
Deteksjon
Etter hybridisering og vasking blir DNA-brikken avlest ved hjelp av en optisk leser, som registrerer evt. signal fra hver eneste rute på brikken. Denne deteksjonen har meget høy følsomhet.
Det er også mulig å gjøre dette kvantitativt. Vi får et sterkere signal hvis mye av prøve-DNA har bundet
seg. Det forutsetter at hver rute har mange probemolekyler bundet.
Vi skal se på noen eksempler på bruk av DNA-brikker.
18.7.2 Sekvensering av vilkårlig DNA
Prøven er her et PCR-produkt e.l. som vi ønsker å sekvensere.
Probene (på brikken) er oligonukleotider som representerer alle tenkelige sekvenser av en viss størrelse. Antall mulige DNA-sekvenser på to baser er 42 = 16, mulige sekvenser på tre baser er 43 = 64, på åtte baser er 48 = ca. 65000, på 10 baser er 410 = ca. 1 mill. mulige sekvenser. Hvis vi velger 10-base-prober, må vi lage ca. 1 mill. ulike oligonukleotider, og feste dem til hver sin rute i en mikrobrikke. Da er alle tenkelige sekvenser representert.
Vi lar så prøven (PCR-produktet) hybridisere til probene på brikken, og registrerer hvor det binder seg. På grunnlag av dette kan vi finne sekvensen til prøven! Dette arbeidet krever betydelig analysearbeid som gjøres ved hjelp av egne dataprogram.
La oss illustrere dette prinsippet med et forenklet eksempel. Den ukjente sekvensen er på 8 baser. Probene er på tre baser, slik at det finnes 64 ulike prober (NB: i praksis kan vi ikke bruke så små prober som tre baser).
Den "ukjente" prøven er: AGGCTAGC
Resultatet blir da at prøven vil hybridisere til følgende seks prober:
AGG, GGC, GCT, CTA, TAG, AGC
Prøv selv å finne sekvensen på 8 når vi får følgende resultat. Prøven binder seg til disse probene:
AGG, CCG, CGA, GAG, GGT, GTA.
Hint: Finn overlappende sekvenser på to mellom triplettene.
Å analysere informasjonen fra en slik brikke er selvsagt ikke enkelt, særlig når prøven kanskje er på
100 baser og probene er på 8-10 baser. Til dette arbeidet er det utviklet egne dataprogrammer som
gjør en slik analyse mulig (bioinformatikk).
18.7.3 Mutasjonsdeteksjon
Prøven er her PCR-produktet av et gen (cDNA). Sekvensen av "normalgenet" må være kjent.
Probene kan være en serie oligonukleotider som er 17 baser lange, og lik med 17 baser i normalgenet
(fig. 18.23). Serie 1 tilsvarer basene (1-17 ) av normalgenet, serie 2 basene (2-18) osv. For hver serie
lar vi én bestemt base (gjerne den midterste) variere, den er enten A, C, G, T eller ingen (-), slik at vi
får fem prober i hver serie. Se fig. 18.21. Hvis genet er på 1000 baser, trenger vi 1000×5 = 25000
prober.
Hybridisering: Probene er altså lik normalgenet unntatt i en posisjon. Prøve-DNA er også lik
normalgenet, hvis det ikke er en mutasjon i prøven. Prøve-DNA vil feste seg best der det passer best,
dvs. helst uten mismatch. Når vi varierer en av basene i en probeserie, f.eks. base nr. 9 (A, G, C, T
eller - ), så vil prøven bare passe helt til den ene av disse. Her vil vi få det sterkeste signalet. Hvis vi får
sterkest signal i G-ruten, vil det bety en mutasjon, fordi normalgenet har A her.
18.7.4 Genekspresjon
Animasjon av ekspresjonsanalyse med DNA-brikke (enkel, god)
Dette er en av de mest interessante og revolusjonerende anvendelsen av DNA-brikker. Vi kan studere
ulike celler og vev, og finne ut hvilke gener som blir uttrykt, og i hvor stor grad. Her undersøker vi altså
ikke bare genenes oppbygning (sekvens), men deres bruk og funksjon, det er funksjonell
genomforskning. Særlig innen arbeid med kreft har dette raskt blitt tatt i bruk, også i Norge.
Prøve. Vi tar utgangspunkt i vev fra en pasient, f.eks. kreftceller. Fra dette vevet isolerer vi mRNA, og
lager cDNA (prøve-DNA) som blir merket med ett fluorescerende stoff ("rødt"). Vi gjør det samme med
et friskt vev fra samme organ. Dette cDNA (normal-DNA) blir merket med et annet fluorescerende stoff
("grønt"). Se fig. 18.22.
Probe: Vi må her ha tilgang til et sett av DNA-sekvenser som representerer humane gener. Dette er
det mulig å hente fra et cDNA-bibliotek fra det organ vi studerer. Vi får da gener som normalt blir uttrykt
i dette vevet. Vi kan også skaffe aktuelle gensekvenser i form av EST (expressed sequence tags). Å
skaffe et slikt sett av aktuelle kjente gensekvenser krever selvsagt en enorm mengde av
bakgrunnskunnskap og arbeid. Dette er også tilgjengelig kommersielt. En DNA-brikke kan inneholde
mange tusen gensekvenser, og vi vet hvilket gen som sitter i hver rute.
Hybridisering. Prøve-DNA og normal-DNA får lov til å hybridisere til probene på brikken samtidig. Vi kan da få grønn farge (bare normal-DNA), bare rød farge (bare prøve-DNA), begge farger (= gul) (både prøve- og normal-DNA) eller ingen farge (ingen hybridisering). Grønn farge betyr da at vi har et gen som blir uttrykt i normale celler, men ikke (eller i mindre grad) i kreftcellene. Omvendt så betyr rød farge at genet blir uttrykt mer enn normalt i kreftcellene. Gul farge betyr at genet uttrykkes som normalt i kreftcellene. Ved å studere dette ekspresjonsmønsteret kan vi se hva som skiller kreftcellene fra normale celler når det gjelder bruk av gener.
Med denne metoden kan vi i prinsippet sammelikne genekspresjonen i to ulike vev, hos to ulike
individer, på to ulike tidspunkt i samme vev, hos to ulike arter osv.
18.7.5 SNP genotyping
Det er identifisert over 4 mill. SNP-er i vårt genom, og man regner med at det er over 10 mill. Mange av
disse ligger i gener, og representerer derved punktmutasjoner, og mange av disse har medisinske
implikasjoner, f.eks. SNP-er i kreftgener. Andre SNP-er er nær koblet til sykdomsrealterte gener og
kan brukes som markører. Vi kan nå finne hvilken base (genotype) en pasient har på mange tusen
slike SNP-punkter samtidig. Det er flere måter å gjøre dette på, vi tar med to av dem.
SNP minisekvensering
Se fig 18.23. La oss først tenke på bare en bestemt SNP, "SNP1".
1 Sekvensen rundt SNP1 må være kjent, slik at vi kan lage et sett med PCR-primere. Vi lager et PCR-produkt (PCR1) som inneholder SNP1.
2 Vi lager en sekvenseringsprimer (S1) til PCR1. S1 skal feste seg til PCR1, helt inntil SNP-en. Vi tilsetter alle fire dideoksy-NTP-er, merket med hver sin farge. Bare en av dem vil bli satt inn, nemlig den som stemmer med PCR1 sin base. S1 blir bare forlenget med denne ene basen, og vi får produktet S1*.
S1* inneholder også en hale, en "tag" i 5'-enden (T1), som gjør at vi kan finne den igjen på DNA-brikken.
3 Vi har laget en sekvens som er komplementær til T1, denne kaller vi en probe (P1), og den er festet i en bestemt rute (R1) på en DNA-brikke. PCR-løsningen blir satt til brikken, og T1 vil hybridisere til P1.
Vi ser da hvilken farge vi får i ruten R1. Hvis den er blå, har vi fått satt inn ddCTP. Vi har derved funnet
at basen i SNP1 er C.
I hver rute på brikken kan vi feste en bestemt probe, som tiltrekker seg produktet fra en bestemt SNP.
Vi kan derved bestemme 1000-vis av ulike SNP-er i en reaksjon, på en brikke For hver SNP vi skal
undersøke må vi designe og lage fire oligonukleotider:
2 PCR-primere
En sekvenseringsprimer (S) m. tag (T)
En probe (P) til denne tagen, som er fester i en rute på brikken.
Fargen i en rute viser hvilken base hver SNP inneholdt.
ASPE, allelspesifikk primer extension
Ved minisekvensering (over) må vi utføre spesifikk PCR på genomisk DNA for hver eneste SNP. Ved ASPE-metoden slipper man dette. Metoden er vist i fig. 18.24.
1 WGA. Man kan starte med genomisk DNA (gDNA) fra pasienten, og utfører WGA - whole genome amplification. En vanlig metode for dette er å kutte opp gDNA i biter med endonukleaser, og tilsette tilfeldige oligonukleotider som fungerer som primere for PCR (random PCR). Vi får da fragmenter av DNA som samlet representerer alt gDNA.
2 SNP kapringsprober. For hver SNP man ønsker å bestemme, må man ha laget en spesifikk probe, encapture probe (kapringsprobe). Den inneholder den flankerende sekvensen og selve SNP-en i 3'-enden (A, G, C eller T). Hvis det er en biallelisk SNP (f.eks. A eller C), må man lage to captureprober, en med T og en med G i 3'-enden. Hver probe sitter i en rute på en DNA-brikke.
3 Hybridisering. gDNA-fragmentene fra WGA får hybridisere til probene på brikken. Probene er ca. 50 baser lange, og det gjør ikke noe om gDNA-bitene er lenger enn dette. Hver captureprobe vil binde et gDNA-fragment som inneholder den aktuelle SNP. Selv om captureproben er ulik i en base i enden, vil den binde dette gDNA
4 ASPE. Man tilsetter så en merket dNTP-mix og DNA polymerase. Da vil gDNA-fragmentene fungere
som templat, og 3'-enden av capture-proben fungerer som primer for DNA-syntese. Vi kan få primer
extension.Vi har nevnt at 3'-enden av proben er T eller G. Pasientens gDNA-fragmenter vil enten ha A
eller C, og bare den som matcher vil fungere som primer. Hvis pasienten har A, vil vi få primer
extension på T-proben, men ikke på G-proben (se fig 18.24). Nukleotidene er merket, slik at vi kan
detektere hvilken av de to primerene som ble forlenget.
Massegenotyping. Det er mulig å kartlegge tusenvis av SNP-er hos en pasient samtidig på én
DNA-brikke. En kartlegging av noen hundre eller tusen utvalgte SNP-er vil gi et bilde av en persons
gener. Noen gener bestemmes direkte, fordi SNP-en ligger i et kjent gen, andre indirekte (se 18.8).
Dette kan bli utnyttet til å skreddersy medisinering og behandling av pasienter. Se også
farmakogenetikk, et par linjer 21.3.
De gentestene som vi har beskrevet går ut på å påvise selve sykdomsgenet. Det forutsetter at det
aktuelle genet er kjent og sekvensert, slik at man har prober eller PCR-primere. Men det kan tenkes at
vi ikke kjenner det aktuelle genet godt nok til å lage primere eller prober. Vi kan da benytte oss av
genetiske markører som er koblettil sykdommen.
18.8.1 Koblede markører
En genetisk markør er et område av kromosomet der vi finner en polymorfisme som kan påvises ved hjelp av DNA-teknikk. En markør kan derved være f.eks. en SNP eller en polymorf STR (VNTR). En SNP har normalt bare to varianter (biallelisk), mens en STR kan ha mange. STR-markører har derfor vært mye brukt. For å finne en STR-markør for et sykdomsallel må man undersøke familier der sykdommen forekommer. Man må da lete etter en STR som følger sykdommen. Et tenkt eksempel er vist i fig. 18.25. Vi ser at de som er rammet av sykdommen, også ser ut til å arve en bestemt variant av markøren (STR-20). Det tyder på at denne markøren ligger i nærheten av det allelet (P) som forårsaker sykdommen. Når markøren først er funnet, kan den brukes til å finne ut om en person har arvet sykdomsgenet. Man regner da med at de som har arvet markøren STR-20 også har arvet sykdomsallelet.
Det viktig å være klar over at den koblede markør man har funnet, ikke behøver å være universell. Den
bestemte koblingen man har funnet kan godt gjelde bare for den undersøkte familien, eller for familier i
en region av verden.
Usikkert
Ved meiosen skjer det overkrysning og rekombinasjon. Markøren (STR-20) og sykdomsallelet (P) ligger koblet på samme kromosom, men ved meiosen kan de bli adskilt hvis det skjer en overkrysning mellom dem. Avstanden mellom gener/markører angis i cM (centiMorgan), der 1 cM tilsvarer 1 % overkrysning (kap. 1.5). Hvis markøren ligger 4 cM fra genet, er det 4 % sjanse for at de skiller lag ved meiosen (fig. 18.26). 1 cM tilsvarer ca. 1000 kb DNA. Dette varierer imidlertid litt, fordi sjansen for overkrysning ikke er den samme alle steder langs kromosomene.
Hvis det skjer en overkrysning mellom markøren og sykdomsgenet, vil STR-20 bli koblet sammen med det normale allelet N. Vi kan da trekke gal konklusjon. Vi vil normalt tro at en person som har arvet STR-20 også har arvet sykdomsallelet P. Det er derfor viktig å finne markører som ligger nærmest mulig genet. 1 cM avstand mellom gen og markør vil gi 1 % sjanse for overkrysning, dvs. 1 % risiko for gal konklusjon.
Når man påviser et allel gjennom en kjent koblet markør, kalles dette en indirekte påvisning. Hvis man påviser sekvenser i selve genet kalles det direkte påvisning.
Huntingtons sykdom ble inntil 1993 påvist indirekte, ved hjelp av en koblet markør. Den koblede
markøren (en SNP) lå da ca. 4 cM fra genet. I 1993 ble selve genet funnet og karakterisert. Derved ble
det mulig å utvikle en direkte test som er 100 % sikker.
18.8.2 Koblingsulikevekt (Linkage disequilibruium)
WIKI Kobling/koblings-ulikevekt Bibliografi om LD
Ved koblingsanalyse og bruk av koblede markører er overkrysning og genetisk avstand sentrale stikkord. Men vi kan også studere markører og gener som ligger så nær hverandre at det så godt som aldri forekommer overkrysning. Koblingen mellom disse blir ikke brutt, slik vi ellers regner med. Det kalles derforkoblingsulikevekt, linkage disequilibrium (LD). De genene eller markørene som henger sammen på ett kromosom utgjør en haplotype. En bestemt haplotyope vil gå i arv fra generasjon til generasjon over lang tid.
Vi tenker oss et sykdomsallel P, som har oppstått ved mutasjon fra et normalt allel N en eller annen gang i evolusjonen. Når P går i arv til neste generasjon, følger også DNA-området rundt P med på kjøpet. I dette området kan det være flere SNP-er, som ikke har noe med selve sykdommen å gjøre i seg selv. Disse SNP-ene kan være ulike i kromosomene med N i forhold til S, de har ulike haplotyper. Se fig. 18.27.
Ved SNP-genotyping (18.7.5) kan man bestemme SNP-haplotypen til et individ, og derved indirekte
finne ut om genotypen er N eller S.
HapMap Fra NHGRI Det Internasjonale HapMap-prosjektet
Ett bestemt sykdomsallel i den humane populasjon kan altså knyttes til et sett med SNP-markører, en bestemt haplotype. Et større genomprosjekt går ut på å kartlegge ulike haplotyper og deres assosiasjon med sykdomsrelaterte alleler. Man har laget et utvalg av viktige SNP-er og analysert en rekke befolkningsgrupper over hele verden. Resultatene er samlet i databasen HapMap:
Man kan så genotype en pasient med hensyn på disse utvalgte SNP-er, og derved kjenner man
genotypen med tanke på tusenvis av sydomsrelaterte gener. Dette kan ha stor vedi innen f.eks.
kreftdiagnostikk og farmakogenetikk (kap. 20.8).
19. GENOMPROSJEKTER Til bokens kapitteloversikt
|
19.1 HGP - DET HUMANE GENOMPROSJEKT
Det humane genom kartlagt?
Det humane genomprosjektet, HGP, ble startet i USA i slutten av 1980-årene. Internasjonalt blir dette koordinert av HUGO (Human Genome Organization), som ble startet i 1988. Det ble satt som mål å fullføre hoveddelen av prosjektet innen år 2005, dette inkluderte kartlegging og sekvensering av hele det humane genom på 3×109 baser DNA.
I juni 2000 ble det kunngjort at en grov skisse (draft) av hele det humane genom var klar, inkludert DNA-sekvensen. I februar 2001 ble dette resultatet publisert i tidsskriftene Science og Nature samtidig (fig. 13.1). I konkurranse med HGP hadde det private selskapet Celera anvendt en alternativ strategi, og i ekspressfart sekvensert så godt som hele vårt genom. Men Celera og HGP var enig om å annonsere dette i fellesskap, slik at begge kunne stå sammen bak fullføringen. Celera publiserte sine resultater i Science, mens HGP publiserte sine i Nature Nature Science
Alt-i-ett eller BAC for BAC?
Celera brukte såkalt "Shotgun" strategi (alt-i-ett). De sekvenserte millionvis av tilfeldige DNA-biter fra et humant genomisk DNA-bibliotek. Ved hjelp av datamaskiner kunne de deretter sette sammen disse sekvensene i riktig rekkefølge i forhold til hverandre, fordi sekvensene i stor grad overlappet hverandre.
HGP har brukt en litt annen strategi. De har prøvd å gjøre den genetiske kartleggingen parallelt med
den fysiske sekvenseringen. De har plassert de enkelte DNA-biter fra bibliotek (BAC-kloner) riktig i
forhold til hverandre, for deretter å gjøre selve sekvenseringen av hver enkelt bit (BAC for BAC).
BAC-bibliotek fra NCBI
"Kart" eller "skisse"? (map or draft)
Det som ble lagt fram i 2001 var ikke et fullstendig bilde av kromosomenes sammenhengende
basesekvens. Det var visse deler som ikke var sekvensert og det var en del hull (gaps). For å kunne
regnes som ferdig kartlagt, stiller HGP disse tre kravene:
1) Mindre enn 1 av 10000 baser er feil
2) Mer enn 95 % av eukromatin (genrike regioner) må være sekvensert.
3) Ingen hull må være større enn 150 kb. Begrepet kartlagt er derved ikke et absolutt begrep.
I en artikkel i Nature i oktober 2004 ble det slått fast at det humane genom var betraktet som ferdig
sekvensert.Men genomprosjektet består av mye mer enn bare å bestemme rekkefølgen av alle A, G,
C og T-ene! Noe av dette blir tatt opp i det følgende.
HGP om kart NHGRI om genetisk kartlegging
Genetisk kartlegging og bioinformatikk (fra UiO)
19.2.1 Fysisk kart
Et fysisk kart viser genenes fysiske plassering langs kromosomene eller langs DNA-tråden. Selve
basesekvensen er et fysisk kart, der avstanden måles i baser (kb). Også båndmønsteret på et
kromosom er et slags fysisk kart. Her blir posisjonen oppgitt som f.eks. 7q22.1 (se kap. 8.2).
Kromosomplassering
Ved hjelp av in situ hybridisering kan man finne ut hvor i kromosomene en gitt DNA-sekvens finnes.
Denne DNA-sekvensen kan være en bestemt DNA-klon fra et bibliotek, eller et syntetisk laget
oligonukleotid av en kjent gensekvens. Man må da merke denne DNA-sekvensen og bruke den som
probe. Man lar proben få mulighet til å binde seg til cellens kromosomer i et cellepreparat. Man kan
merke proben med et fluorescerende stoff, og i et fluorescensmikroskop kan man da se hvor i
kromosomene proben sitter. Denne teknikken kalles FISH(Fluorescens In Situ Hybridisering). Et kart
som viser genenes plassering i et kromosom kalles et cytogenetisk kart.
19.2.2 Genetisk kart
Vi har beskrevet hvordan vi kan kartlegge koblede gener hos bananflue ved hjelp av
rekombinasjonsanalyse (kap. 1.5). Denne type analyser gir oss et genetisk kart, der avstanden mellom
genene angis i cM, som er lik % rekombinasjoner. For å lage et slikt kart må vi studere hvordan ulike
arvelige egenskaper fordeler seg fra generasjon til generasjon, og beregne frekvensen av
overkrysninger mellom koblede gener. Dette er selvsagt enklere med bananfluer enn med mennesker.
Men ved å studere store familier og slekter er dette mulig også for mennesker (kap. 1.8). Fram til
1970-årene måtte man da bruke observerbare arvelige egenskaper til dette formålet, og antallet gener
som kunne kartlegges var meget begrenset. Nå kan man bruke molekylærgenetiske markører som
kan påvises ved DNA-analyser.
19.2.3 Markører
En markør er et område av DNA som vi kan påvise, og som er polymorft, dvs. at et finnes flere varianter. Vi kan følge nedarvingen av slike markører fra generasjon til generasjon, og derved lage et genetisk kart over dem. For å klare dette er det samlet inn DNA-prøver fra et stort antall individer over flere generasjoner fra bestemte familier.
De viktigste markørene er SNP og VNTR. I kap. 18 har vi sett flere måter å identifisere disse på. Av en SNP finnes det normalt bare to varianter, av en VNTR finnes det ofte mange. Dette gjør en VNTR til en bedre markør. På den annen side er det langt flere SNP-er i vårt genom. Avstanden mellom kjente VNTR-områder kan være 30 kb i snitt, mens en SNP finner vi ca. for hver 300 b eller mindre.
I 1987 ble det publisert et genetisk kart over våre kromosomer med i alt 403 markører, og av disse var 393 av typen SNP, påvist med Southern blotting og RFLP. Fra 1989 har VNTR-markører og PCR-teknikk blitt dominerende. I 1994 var antallet kartlagte markører kommet opp i ca. 5800, hvorav 3600 VNTR (STR), 1800 SNP (RFLP) . I 2001 var det identifisert og lokalisert 1,4 mill SNP-er, i 2006 har antallet passert 5 mill, og man regner med at det er 10 mill. Det betyr at det er en SNP for hver 300 b. Med moderne analysemetoder kan man analysere tusenvis av SNP-er på en gang (kap. 18.7.5). Disse har derfor fått økt interesse.
SNP-consortium SNP Fact Sheet (HGP) DbSNP (NCBI)
De kjente markørene er en hjelp til å kartlegge gener, og til å finne gener som er assosiert med
bestemte egenskaper. Hvis en bestemt markør har en tendens til å følge en bestemt egenskap innen
en slekt, kan det bety at markøren er koblet til et aktuelt gen for den egenskapen. Se kap. 18.8.
19.2.4 Fysisk/genetisk kart
Den fysiske avstanden mellom gener eller markører måles i antall baser. Vi tenker oss tre markører,
a-b-c med lik fysisk avstand , f.eks. 1 kb. Videre tenker vi oss at hyppigheten av overkrysninger er
større mellom a-b enn mellom b-c. Da vil den genetiske avstanden a-b være større enn avstanden b-c.
Flere rekombinasjoner gir flere cM avstand! (se fig. 19.1). Det er derved ikke en enkel lineær
sammenheng mellom fysisk avstand (kb) og genetisk avstand (cM). Som en tommelfingerregel kan
man si at 1 Mb DNA tilsvarer en genetisk avstand på 1 cM. Men det er stor forskjell mellom
kromosomer og kromosomdeler. Det finnes områder der 1Mb tilsvarer 20 cM. Det er også en forskjell
mellom kjønnene, menn har gjennomsnittlig 1,05 cM/Mb, mens kvinner har 0,8 cM/Mb. Det betyr at det
skjer flere overkrysninger ved mannens meiose enn kvinnens.
19.2.5 Kromosomspasering (WIKI) Figurer fra googlesøk!
YAC og BAC-kontiger
For å kartlegge kromosomene fysisk, har man brukt DNA-bibliotek med gjærvektoren YAC eller BAC, Yeast og Bacterial artificial chromosme (kap. 16.7 og 8). Med disse vektorene kan man klone opp til 1000 kb DNA av gangen.
Man kan da starte med en bestemt BAC-klon A, dvs. ett DNA-fragment fra biblioteket (fig. 19.2). Fragment A kan f.eks. på forhånd være lokalisert til ett bestemt kromosom ved hjelp av FISH. 5'-enden av A kan bli sekvensert, slik at man kan lage en probe som passer her (probe A). Probe A brukes til å screene biblioteket, og finne andre kloner som inneholder denne sekvensen. Dette vil være DNA-fragmenter som har overlappende sekvens med A. Disse kaller vi B1, B2 osv. Man kan velge en av disse (B1), og lage en ny probe (B) ut fra 5'-enden til B1. Med denne proben kan man finne nye kloner (C1, C2 osv) som overlapper med B1. Slik kan vi fortsette langs kromosomet, og dette kalles kromosomspasering (walking). Vi får da identifisert en serie med kloner (DNA-biter) fra biblioteket, som fysisk sett er plassert i riktig rekkefølge. Dette kalles en klonekontig (contig er forkortet contigous = tilstøtende). Ved å bruke YAC- eler BAC-bibliotek, der hvert DNA-fragment kan være opp til 1000 kb, kan man spasere langs kromosomet med ganske lange skritt. Det vil da bare kreve noen hundre skritt å spasere langs et helt kromosom av middels størrelse (40000-260000 kb). Når alle disse klonene blir sekvensert, har vi en lang sammenhengende sekvens av kromosomet.
Kromosomspasering er også beskrevet i 15.4.2.
BAC-bibliotek fra NCBI NHGRI DOE/ORNL
STS og EST
I stedet for å lage prober fra hver enkelt klon i et bibliotek, blir det i stedet laget PCR-primere. Forutsetningen for dette er også at en bit av vedkommende klon er sekvensert. Man kan bruke et slikt primersett til å screene et YAC-bibliotek, og finne alle kloner som inneholder primersekvensen. En slik sekvens, der det foreligger et ferdig designet sett av PCR-primere kalles en STS , sequence tagged site (sekvensmerket sted).
EST står for Expressed Sequence Tag. Dette er det samme som en STS, men en EST er kun
lokalisert til denkodende delen av vårt DNA. Disse sekvensene er funnet ved å bruke cDNA-bibliotek,
og sekvensere korte biter av hvert cDNA. En EST er derved en kort kjent sekvens fra cDNA, som kan
amplifiseres med PCR. Et cDNA-bibliotek vil som kjent bare inneholde de genene som blir aktivt uttrykt
i det vev det er laget fra.
Kartleggingen av det humane genom gir oss enorme muligheter til å lære mer om vår egen biologi, og naturen i sin helhet. Nå vil forskningen konsentrere seg om funksjonen til DNA, spesielt genenes funksjon. Nye gener vil bli oppdaget og studert. Forskere regner med at alle våre gener er "funnet" innen år 2010. Vi vil lære mer om samvirket mellom gener, om kontroll av gener og om genproduktene. Det vil bli utviklet nye og sikrere DNA-tester, både for sykdommer og andre forhold. Nanoteknologi kombinert med datateknologi vil gjøre DNA-analysene utrolig raske og effektive. Nye skreddersydde medisiner vil bli utviklet.
Dette er en utvikling som også vil reise en mengde spørsmål av etisk og politisk karakter. Dette er
allerede er aktuelle i dag, men utviklingen vil sette dette på dagsordenen på en mye sterkere måte.
Genomikk - genomics
Genomikk er studiet av hele genomer, i motsetning til bare ett gen. Litt mer presist er genomikk den
vitenskap som prøver å forstå innhold, organisering, funksjon og utvikling av hele genomer. Man kan
videre dele genomikken i strukturell, funksjonell og komparativ genomikk.
Strukturell genomikk prøver å beskrive og forstå innholdet av et genom. I praksis vil dette innebære å
lage fysiske og genetiske kart. Dette ble omtalt i forrige punkt. Noen viktige metoder her kan være
DNA sekvensering, kromosomspasering, genetiske koblingsanalyser med ulike markører.
Fra HGP-Info: Functional and Comparative Genomics Fact Sheet
Funksjonell genomikk studerer genenes funksjon, altså genekspresjon. Vi kan da studere både RNA
og proteiner.I Norge er det etablert et eget program for funksjonell genomforskning, FUGE.
Komparativ genomikk går ut på å sammenlikne ulike genomer. Parallelt med det Humane Genom
Prosjektet er det tilsvarende prosjekter for mange andre organismer. De viktigste av disse er:
•Tarmbakterien Eschericia coli
•Gjærsopp Saccharomyces cerevisiae
•Bananflue Drosophila melanogaster
•Rundorm Caenorhabditis elegans
•Vårskrinneblom Arabidopsis thaliana
•Sebrafisk Danio rerio
•Mus Mus musculus
Disse utvalgte organismene er modellorganismer. I 2002 var alle disse genomene ferdig sekvensert. Andre viktige genomer som er blitt sekvensert er sjimpanse (desember 2003) og hund (2004).
Disse prosjektene har allerede lært oss mye om våre egne gener. På gennivå er stor grad av likhet
(homolgi) mellom gener hos mennesket og alle disse organismene. Musegenomet er det første genom
av samme størrelse som det humane som ble kartlagt. Man kan da sammenlikne både enkeltgener og
hele genomstrukturen, kromosomene. Dette vil belyse fundamentale biologiske spørsmål, f.eks. om
den biologiske utviklingen av arter på jorda. Dette ble behandlet i kap. 13.5.7 og 8.
Proteomikk (proteomics) er også et nytt ord som knyttes til funksjonell genomforskning. Genene koder
jo for proteiner. Med ny kunnskap om genene vil vi også få ny kunnskap om proteinene, også nye. Vi
kan produsere dem, vi kan studere dem, vi kan forandre dem osv. Proteom er betegnelsen på hele
samlingen av proteiner som en organisme har, akkurat som genom er betegnelsen på hele vårt DNA.
Man snakker også om vårttranskriptom, hele samlingen av mRNA og andre RNA-er som blir
produsert. Dette tilsvarer den delen av vårt genom som blir brukt av organismen. Man bruker også
begrepet metabolom, dvs. samlingen av alle metabolitter i en celle eller organisme.
I Norge er ett av satsingsområdene å kartlegge laksens genom.
19.4 BIOINFORMATIKK (WIKI) (Med en rekke interne og eksterne lenker!)
Bioinformatics - fra NCBI Bioinformatics.net
Fra Bioweb Genetisk kartlegging og bioinformatikk (fra UiO)
Datakraft var en forutsetning for sekvenseringen av hele det humane genom i 2001. Det var et enormt
puslespill å sette sammen tusenvis av korte sekvenser i riktig rekkefølge. Når vi skal forstå hva alle
disse sekvensene betyr, krever det enda mer bruk av datamaskiner og -programmer. Bioinformatikk
har blitt en sentral del av moderne genetikk. Analyse av DNA-sekvenser ved datamaskinen kalles osgå
in silico-analyser (databrikker er laget avsilika eller silikater). La oss se på noen sentrale eksempler på
hva bioinformatikk brukes til innen genomforskning.
19.4.1 Databaser og datasøk
NCBI, inngang til databaser etc. GenBank dbSNP RefSeq OMIM
Education and tutorials (NCBI)
Du får en god oversikt over databaser og annen informasjon ved å gå inn på hovedsiden til NCBI (National Center of Biotechnology Information, USA):
Her finner du bl.a. en oversikt over alle databaser (Entrez). Noen av disse er nevnt her:
er en database fra over alle kjente DNA-sekvenser. Den oppdateres kontinuerlig av forskere fra hele
verden. I august 2005 passerte denne basen 100 Gb DNA fra 165000 ulike arter /kilder (mennesket
har 3 Gb). Her skal alle forskere i prinsippet kunne søke fritt.
er en samling av alle rapporterte SNP-er fra mennesker og andre arter. Her skal man finne
DNA-sekvensen i et område rundt SNP-en på ca. 100 baser (flanking sequence), hvilken populasjon/
befolkningsgruppe som er undersøkt og hvor mange individer, frekvensen av de ulike allelene mm.
Man regner med at det finnes mer enn 10 mill. SNP-er i det humane genom. 3-400000 av disse er
plukket ut som mest sentrale ved kartlegging av gener og genotyping; disse kalles tagSNP.
er en samling av referansesekvenser. Denne basen skal inneholde en spesifikk sekvens fra alle
eksisterende biomolekyler, dvs. DNA, RNA og proteiner fra alle arter. Her skal man f.eks. kunne finne
en referansesekvenes for alle mRNA-er i E. Coli, alle humane proteiner osv. I januar 2006 inneholdt
denne databasen sekvenser fra 536571 DNA, 625928 RNA og 2273764 proteiner (molekyler eller fragmenter).
er en oversikt over alle kartlagte humane gener, og sykdommer knyttet til dem mmm.
Proteiner
Det er også flere databaser over proteinsekvenser, både hele proteiner, familier og domener, f.eks.:
PROSITE og Swissprot.
BLAST (Basic Local Alignment Search Tool)
er et søkeprogram for DNA- og proteinsekvenser. Du kan oppgi en bestemt sekvens, og programmet søker i databasene etter sekvenser som er lik denne eller homologe med denne. Det finnes mange liknende søkeprogram.
FASTA er et annet program som sammenlikner protein/DNA-sekvenser raskt, ved å lete etter lokalesekvenslikheter.
Tools for datamining (NBI)
Du får også elektronisk tilgang til et stort antall gode læreverk innen dette fagområdet (bookshelf).
I Europa står EBI (European Bioinfarmatics Institute) for organiseringen av slike databaser.
19.4.2 Søke etter DNA/proteinsekvenser
Du kan oppgi en gitt DNA-sekvens på f.eks. 30 baser, og søke etter denne i en database, f.eks. det
humane genom. Du kan også oppgi en aminosyresekvens og søke etter en DNA-sekvens som
tilsvarer denne. En aminosyresekvens kan tilsvare mange ulike DNA-sekvenser, men dette er
innebygget i søkeprogrammet. Finner vi kodene f.eks.10 alaniner etter hverandre noe sted i våre gener?
19.4.3 Søke etter gener
Når vi kjenner hele den humane DNA-sekvens, kan vi da finne genene? Dette var et av de første
målene for dataanalyse av det humane DNA. La oss se på 5 ulike kriterier som kjennetegner gener, og
som vi kan bruke til å lete med elektronisk.
Et gen må ha en lang åpen leseramme ( kap. 5.4.4). Tilfeldig DNA vil ha korte leserammer, fordi hele 3 av 64 tripletter er stoppkodoner. En leseramme starter med ATG og varer til første stoppkodon som er i leserammen. Det er flere enkle "ORF-finnere" tilgjengelig. Det at våre gener har introner gjør imidlertid leting etter ORF meget vanskelig. Intronene kan jo ha både start og stoppkodoner, og påvirke leserammen sett med datamaskinenes øyne. Hvis vi har prokaryote celler er dette enklere.
Langs en tilfeldig DNA-sekvens finnes det 6 mulige leserammer, 3 langs den ene tråden, og 3 langs den andre, i motsatt fysisk retning. Hvis vi skal lete etter ORF, må vi lete i alle disse 6 leserammene.
Vi tenker oss denne DNA-sekvensen:
5'-TCCGATCGATCGATC-3.
Som tidligere vist (kap. 5.3.1) kan vi ha 3 leserammer hvis vi leser denne tråden i retningen 5'-3'. Men vi kan også bevege oss langs den andre DNA-tråden i retningen 5'-3', og har også da 3 leserammer. Denne tråden er:
5'-GATCGATCGATCGGA-3'
•CpG-øyer
er også karakteristisk for mange gener, men ikke alle. Vi har sett at CpG er underrepresentert i vårt
DNA, men finnes godt representert oppstrøms for mange gener. Dette kan dataprogrammer finne.
•Promotere o.l.
De fleste gener har promotere med en viss likhet (TATA-boks mm). Dette kan det søkes etter.
•Introner
har bl.a. typiske spleisesignaler (GU...AG), som man kan søke etter.
•Homologisøk
er et meget viktig verktøy for å finne gener. Man må da ta utgangspunkt i sekvenser som man vet
finnes i andre gener. Disse kan være hentet fra kjente humane protein/DNA-motiver, eller de kan være
motiver som er kjent fra andre arter som er studert. Da man skulle finne gener langs det sekvenserte
humane DNA, brukte man alle kjente mRNA-sekvenser (ca. 10000), og søkte etter homologe områder.
Man kan selvsagt kombinere disse kriteriene.
19.4.4 Homologisøk
Vi kan som sagt søke etter bestemte DNA- eller aminosyresekvenser. Vi kan søke etter sekvenser
som er 100 % like, eller f.eks.70 % like, som altså har en viss grad av homologi. Dette kan i så fall
representere gener som har en beslektet funksjon, eller som er i samme familie. Slikt homologisøk kan
gjøres for hele gener, eller for kortere sekvenser, ett bestemt motiv. Homologisøk er nyttig både for å
finne gener, og for å undersøke slektskap mellom gener. En dataanalyse kan sammenlikne homologi
mellom sekvenser fra mange ulike arter (ortologe), og på grunnlag av dette bygge et fylogenetisk
stamtre for disse artene.
19.4.5 Sammenstilling (alignment)
Hvis vi har et gitt gen, f.eks. for insulin, kan det kanskje være enkelt å finne ut hvor mange forskjeller
det er mellom dette genet hos menneske og gris. Vi kan legge sekvensene under hverandre og telle
ulikhetene (datamaskinen gjør det). Hvis vi sammenlikner 2 sekvenser som ikke er kodende, f.eks.
introner eller DNA fra mitokondrier, er ikke dette så enkelt. DNA-sekvensene kan ha forandret seg
både ved punktmutasjoner, delesjoner og annet. Dette ble tatt opp i kap. 13.5.3. Datamaskinen kan
foreta slike sammenstillinger på best mulig måte. Sammenstilling og homologisøk henger nøye
sammen, og kan ses på som ett bruksområde. Når man lager fylogenetiske trær basert på sekvenser,
sammenstiller man homologe sekvenser fra en lang rekke arter samtidig. Det kalles multippel
sammenstilling (multiple alignment).
19.4.6 Design av prober og primere
Moderne DNA-analyser bruker genspesifikke primere og prober, f.eks. ved realtime PCR multipleks.
PCR, og SNP-genotyping. Ved SNP genotyping på DNA-brikke (kap 18.8.4) trengte vi to PCR-primere,
en sekvenseringsprimer og en probe for hver eneste SNP, til sammen flere tusen slike samtidig. Disse
oligonukleotidene må ha klart definerte smeltepunkt, de skal ha en viss avstand fra hverandre, noen
skal kanskje danne sekundærstrukturer (beacons), andre ikke. Man har dataprogrammer som kan
finne den beste løsningen på dette innenfor et gitt område, ut fra spesifisert krav som du stiller.
19.4.7 Strukturanalyse
På grunnlag av en DNA-sekvens kan en datamaskin bestemme aminosyresekvens (translasjon), og
videre beregne den mest sannsynlige sekundær- og tertiærstruktur av proteinet, altså proteinets
folding. Dette er en viktig del av den funksjonelle genomforskningen,
19.5.1 FUGE
Norge har ikke ligget i forkant internasjonalt innen genomforskning, og spesielt ikke innen anvendt gen- og bioteknologi (kap. 22). Men i kjølvannet av det store internasjonale gjennombrudd i 2001 har vi fått et eget nasjonalt program for funksjonell genomforskning - FUGE. Programmet får egne bevilgninger over statsbudsjettet og gjennom forskningsrådene.
FUGE har (i 2006) 10 "teknologiplattformer":
•Biobanker - Biobanks for Health.
•Bioinformatikk - The Norwegian Bioinformatics Platform.
•Integrert genetikk og SNP-analyse-The Norwegian Centre For Integrative Genetics, CIGENE.
•Mikroarrayteknologi - The Norwegian Centre For Microarray Technology, NMC.
•Proteomikk - The Norwegian Proteomics Centre, PROBE.
•Strukturell biologi - The Norwegian Structural Biology Centre, NORSTRUCT.
•Molekylær bildebehandling - The Norwegian Molecular Imaging Centre - MIC.
•Transgene mus - Norsk Transgen Senter, NTS
•Mikrobiell teknologi - The Norwegian Centre For Microbial Technology, CAMST
•Plantegenomikk - The Norwegian Arabidopsis Research Centre, NARC.
FUGE er et forsøk på å få Norge "på banen" innen genomforskning, spesielt med tanke på de
mulighetene som ligger her innen moderne medisin, teknologi, og produktutvikling. Mer om
bioteknologi (og Norge) i kap 22. Arbeidet innen de 10 plattformene blir evaluert i 2006.
19.5.2 Biobanker
Folkehelseinstituttet om Biobanker Etikk og debatt om biobanker (NTNU)
Biobankloven Forarbeidet til loven
En biobank er en samling av biologisk materiale, f.eks. blodprøver eller vevsprøver. Ved sykehusene finnes det i dag store biobanker. De patologiske laboratoriene har tatt vare på vevsprøver siden 1930-årene som representerer 10 mill pasienter over 4-5 generasjoner. I Norge har vi en biobanklov fra 2003. Den definerer to typer biobanker (§2):
"Med diagnostisk biobank og behandlingsbiobank forstås i denne lov en samling humant biologisk materiale som er avgitt for medisinsk undersøkelse, diagnostikk og behandling.
Med forskningsbiobank forstås i denne lov en samling humant biologisk materiale og opplysninger som
direkte fremkommer ved analyse av dette materialet, og som anvendes eller skal anvendes til forskning."
Samtykke
Foruten det biologiske materialet, vil en biobank normalt inneholde opplysninger om den som "eier" prøven, persondata, sykdomsbilde mm. Dette vil variere fra bank til bank. Ved etablering av forskningsbiobanker ønsker man flest mulig opplysninger om eierne, om helse, miljø, livsstil osv. Dette kan også innhentes med spørreskjema. Uansett så skal det være et prinsipp at de som avgir prøve til en biobank skal gi "informert samtykke" til å være i banken, og til at materialet blir brukt til undersøkelser eller forskning. Det er uklart om dette samtykket skal være generelt, eller bare til spesifiserte formål.
§ 12 i biobankloven sier (om forskningsbiobanker):
"Med mindre det foreligger særskilt lovhjemmel eller annet gyldig rettsgrunnlag, krever innsamling, oppbevaring og behandling av humant biologisk materiale til forskningsformål et frivillig, uttrykkelig og informert samtykke fra giveren. Det samme gjelder oppbevaring og bruk av opplysninger knyttet til det biologiske materialet.
Samtykket skal kunne dokumenteres og være basert på informasjon om formål, metode, risiko,
ubehag, konsekvenser og annet av betydning for samtykkets gyldighet. Kravene til informasjon og
spesifikasjon må avgjøres etter en vurdering av risikofaktorer, materialets sensitivitet,
forsøkspersonenes sårbarhet og lignende. Materialet i biobanken kan ikke utlånes eller utleveres".
Medisinsk kunnskap
Moderne biobanker er et viktig redskap for å studere sammenhengen mellom sykdom, gener og miljø.
Fra banken har man tilgang til DNA, som kan analyseres med tanke på alle mulige gener og genfeil.
Noen banker kan også inneholde prøver fra samme person tatt på ulike tidspunkt, f.eks. 10 år etter.
Opplysninger fra DNA-analyser kan kobles opp mot sykdommer som eieren har utviklet, mot
opplysninger om miljøforhold, livsstil mm. Analysene kan gjøres om 10, 20 eler 30 år, når man vet
hvem som har utviklet en bestemt sykdom, f.eks. kreft. Dette kan gi ny innsikt om samspillet mellom
gener og miljø når det gjelder alle sykdomsformer. Med dagens mulighet for DNA-analyser og
databehandling vil biobanker bli meget viktige kunnskapskilder.
Norge
har som nevnt mange eksisterende biobanker, også forskningsbiobanker.
•Janusbanken er prøver fra blodgivere tatt fra 1973 til nå. Den inneholder ca. 300000 prøver, og eies av Den Norske Kreftforening.
•Tvillingundersøkelsen (Folkehelsa) inneholder prøver fra 8000 en- og toeggede tvillinger fra 1967-79.
•"MoBa-undersøkelsen (mor og barn) fra 1998 har materiale fra 100000 gravide og deres barn, samt 70.000 fedre.
•CONOR (Cohort Norway, cohort = samling) er et samarbeidsprosjekt som startet i 1994 mellom flere regionale helseundersøkelser. Arbeidet til disse er nå koordinert, og vil inneholde prøver fra nesten 500000 nordmenn når det er samlet. Den ene av disse er HUNT, helseundersøkelsen i Nord-Trøndelag. HUNT planlegger et stort nytt prosjekt i 2006 (HUNT-3). Man skal samle inn prøver fra ca. 150 000 personer, og innhente opplysninger gjennom spørreskjema. I tillegg har HUNT 65000 prøver fra 1995-97 (HUNT-2).
•FUGE har biobanker som en av sine plattformer, nemlig Biobanks for Health.. CONOR-prosjektet og andre banker inngår som en del av dette.
•I tillegg til biobankene finnes det en rekke helseregistre med medisinske opplysninger som kan kobles
opp mot biobankene, f.eks. kreftregisteret, fødselsregisteret, dødsårsaksregisteret mfl.
I Tromsø bygges det opp en biobank av marine organismer, MarBank.
Fra forskning.no Fra “Aksjonsprogrammet”
Denne kan bidra til utnyttelse av marine organismer til forskning, helseformål og bioteknologisk industriutvikling.
Det private selskapet GeNova har ønsket å bygge opp en norsk forskningsbiobank ("Norsk Arv").. Dette har foreløpig ikke blitt godkjent. Den nasjonale forskningsetiske komite anbefalte ikke dette (2001) pga. store mangler i søknaden. I andre land er det bygget opp store private kommersielle biobanker, med offentlig godkjenning og innsyn. I Sverige har man Uman Genomics, på Island deCode genetics , i England Biobank UK osv.
Gen-i-Alt om Uman Genomics (2003)
Sverige Om PKU-banken i Sverige (WIKI) PKU-laboratoriet
har en biobank som dekker alle som er født etter 1975. Dette er prøver som er tatt i forbindelse med PKU-undersøkelse av nyfødte, og kalles gjerne PKU-biobanken. Den inneholder nå over 3 mill prøver. Denne banken ble nylig brukt i en sammenheng som skapte debatt, nemlig etter drapet på den svenske ministeren Anna Lindh i 2003. Politiet hadde tidlig en hovedmistenkt. De hentet da DNA-materiale fra mistenkte i biobanken, uten noe samtykke. DNA-analyser knyttet mistenkte direkte til drapet. Denne bruken av biobanken var antakelig i strid med den svenske biobankloven. En annen interessant sak fra Sverige er Sunamikatastrofen i 2004. Flere hundre svenske turister var savnet, og identifikasjonen i etterkant var vanskelig. Man kunne da hente DNA fra biobanken for å sammenlikne med biologiske funn på stedet, og derved identifisere disse.
20. ARV OG SYKDOM
Til bokens kapitteloversikt
Dette kapittelet gir noen eksempler på arvelige egenskaper hos mennesker, hovedsakelig knyttet til sykdom (se tabell 20.1). Det kan gjerne leses i forbindelse med et par linjer 1 om genetikk generelt, som konkrete eksempler på ulike typer arvegang. Her er det eksempler på dominant, recessiv og kjønnsbundet arv, samt mer sammensatt arv. I hvert tilfelle finner du også en kort omtale av det aktuelle genet og mulige genfeil eller mutasjoner. Dette er grunnlaget for evt. gentester. For noen av eksemplene finner du også tall som viser hyppigheten av ulike fenotyper og genotyper, som aktuelle eksempler innen populasjonsgenetikk.
Når vi omtaler gener eller alleler som kan medføre sykdom, brukes det ulik språkbruk. Det normale allelet, som ikke gir sykdom kan kalles det normale allelet eller funksjonelt gen, evt. villtypeallel. Et allel som medfører sykdom kan kalles sykdomsallel eller mutantallel, evt. ikke-funksjonelt gen eller defekt gen. Språkbruken vil avhenge av hvilket gen og hvilken sykdom det gjelder.
Det kan være nødvendig å presisere at de fleste sykdommer (og egenskaper for øvrig) ikke følger et
enkelt Mendelsk arvemønster. Selv for de mest typisk arvelige sykdommer kan miljøet (f.eks. kosthold)
ha stor betydning for utviklingen av sykdommen. Moderne medisin kan dessuten motvirke eller hindre
utviklingen av flere og flere sykdommer, selv om vi har et sykdomsallel. Også i denne teksten er den
presiseringen ofte utelatt.
Penetrans (WIKI), ekspressivitet (WIKI)
Selv om man arver et dominant sykdomsallel kan det hende at sykdommen ikke slår ut, eller bare slår
ut i liten grad. Dette kan skifte fra en generasjon til neste, begge veier. Vi sier at genet har ulike
penetrans("gjennomtrengelighet"). Dette kan skyldes andre genetiske forhold hos individet, miljø, eller
tilfeldigheter. Når et gen blir uttrykt i ulik grad bruker vi også begrepet ekspressivitet. For et
sykdomsgen vil lav ekspressivitet medføre mindre grad av sykdom.
Imprinting (WIKI) Fra Kimball Fra Geneimprint
Hvis vi er genotype Aa skal det ikke ha noe å si for fenotypen om vi har arvet allelet A fra far eller fra mor. Men i noen tilfeller gir dette ulikt resultat. Genet A er blitt ulikt preget hos far og mor.
På kromosom 15 (15q11-13) kan det finnes en delesjon på 3-4 Mb. Konsekvensen av denne delesjonen er ulik om kromosomfeilen er arvet fra far eller mor. Hvis delesjonen kommer fra mor, gir det "Angelmans syndrom" (alvorlig mentalt tilbakestående, vansker med å gå, latteranfall). Hvis den arves fra far, får man tilstanden "Prader-Willis syndrom" (overspising, fedme, hissighet, depresjon). Kromosomene blir altså preget ulikt hos mor og far, vi kaller det imprintig.
Et annet eksempel på imprinting er genet IGF2 (Insulinlike Growth Factor) som finnes på kromosom 11 (11p15.5). Vi arver som vanlig ett gen fra far og ett fra mor. På fosterstadiet er det bare genet fra far som blir uttrykt, dette gjelder både gutter og jenter. Genet fra mor blir undertrykt. Dette genet påvirker veksten av fosteret, altså fødselsvekten til barnet.
Det er identifisert noen hundre gener der imprtinting kan forekomme. Det kan variere om det er fars eller mors gen som er mest aktivt. Mekanismen bak imprinting kan være at det ene kjønn metylerer bestemte gener under dannelsen av sæd- eller eggceller, noe som påvirker genekspresjonen (se kap. 8.8.4). Fenomenet står i motsetning til vanlig Mendelsk arv, og er derved et eksempel på
Hvis en jente arver et imprintet gen fra sin far, vil hun få en fenotype som er bestemt av dette. Men når
hun produserer sine eggceller vil ikke hun imprinte dette genet, fordi hun er kvinne. Hennes barn vil
altså ikke arve dette genet imprintet. Tilsvarende vil det være for gutter som arver et imprintet gen fra
sin mor.
Populasjonsgenetikk (se kap 1.6)
Hyppigheten av en bestemt sykdom eller egenskap vil variere fra en befolkningsgruppe til en annen. Det er derfor vanskelig å oppgi slike tall uten å oppgi hvilken befolkningsgruppe det gjelder. Noen ganger blir befolkningene delt inn i noen få hovedgrupper. Tidligere ble dette ofte kalt raser, men bruken av begrepet raserpå menneskegrupper blir sterkt kritisert fra vitenskapshold. Tidligere brukte man kanskje betegnelsene hvite (fra Europa), svarte (fra Afrika) og gule (fra Asia). Disse tre hovedgruppene blir nå ofte kalt kaukasiske (WIKI), afrikanskeog orientalske. Disse store gruppene er selvsagt ikke homogene, og i tillegg har vi f.eks. urbefolkningen i Australia (aboriginere), som faller utenfor de tre store gruppene. Når det blir oppgitt hyppighet i denne boken, gjelder det i hovedsak for den etnisk norske befolkningen, evt. vesteuropeiske/kaukasiske.
ALFRED - ALlele FREquencies Database - er et kjempeprosjekt som samler data om allelefrekvenser for hundrevis av ulike menneskepopulasjoner og for en mengde gener og markører. De opererer med over 400 ulike menneskepopulasjoner.
OMIM, Online Mendelian Inheritance in Man, er en database på Internett over gener som kan knyttes
til arvelige defekter (disorders) eller egenskaper. I 2002 var det ca. 10000 gener i denne basen, i mars
2006 var det ca. 16000. Du finner genets plassering, navn, en omtale av ulike varianter av genet, og
egenskaper knyttet til det. NCBI har også laget en enklere oversikt over "genes and deseases". Både
denne og OMIM finner du via NCBI sin hovedside (se kap. 19.4.1).
Hvilke gener er sykdomsgener?
Det er foretatt en analyse av nesten 1000 kjente sykdomsgener, de fleste fra OMIM. Tabell 20.2 viser
hvilke typer proteiner som er assosiert med arvelige sykdommer. Vi ser at enzymer utgjør den største
gruppen, men de utgjør ikke mer enn 32 %. Modulatorer er proteiner som influerer på aktiviteten til et
annet protein. Også for disse finner vi mange sykdomsgener. De fleste av disse 1000 sykdommene, ca
70 %, er meget sjeldne, 15-20 % er sjeldne, mens det er 10 % som kan kalles vanlige.
Dominant/recessiv
For enzymsykdommene er nesten 80 % recessive, mens for sykdommer knyttet til
transkripsjonsfaktorer (TF) er nesten 70 % dominante. For enzymer er det tilstrekkelig med ett normalt
gen, en heterozygot vil lage enzymet og være frisk. Sykdomsallelet er derved recessivt. For TF vil ett
feil protein være skadelig i seg selv, selv om det normale også blir laget. Ett unormalt allel er derfor
skadelig, og derved dominant. I underkant av 10 % av de genetiske sykdommene er kjønnsbundet (X-bundet).
20.2 DOMINANT ARV (WIKI)
Ved autosomal dominant arv er det nok å ha ett eksemplar av sykdomsgenet (A) for å bli syk. En frisk person må da være homozygot for normalallelet (aa). Hvis allelet A er relativt sjelden, vil de aller fleste syke være heterozygote (Aa). En syk (Aa) og en frisk (aa) vil ha 50 % sjanse for å få et sykt barn (Aa). På et stamtre vil vi se at barn som arver sykdommen har en far eller mor med sykdommen.
Dominant arv kan forklares med at proteinproduktet fra allelet A i seg selv er skadelig. Det hjelper derved ikke at man har ett normalt allel a.
Eksempler på dominant arvegang i dette kapittelet er Huntingtons sykdom, FH (familiær
hyperkolesterolemi) og nevrofibromatose.
20.2.1 Huntingtons sykdom
Wikipedia, med mange eksterne lenker ! Huntington i Norge OMIM
Gentesting (“legetidsskriftet”) http://www.genome.gov/14514225
Denne sykdommen kalles også Huntingtons Chorea, eller sætesdalsrykka. Den rammer sentralnervesystemet og gir bl.a. hjernesvinn. Symptomene inntrer ofte først i 40-50 års alderen, med ufrivillige bevegelser og ulike former for sløvhet. Tilstanden forverrer seg etter hvert sterkt, og normalt dør en person 10-15 år etter at de første symptomene har vist seg.
Arv, forekomst. Huntingtons sykdom nedarves dominant. Hvis man er heterozygot og har ett gen for sykdommen (Hh), så er man rammet. Hvis en av foreldrene er syke (Hh) og en er frisk (hh), er sjansen for at deres barn skal arve sykdommen 50 %. Den som er ikke er syk, er heller ikke bærer. Ca. 1 av 20000 barn fødes med Huntingtons sykdom. I Norge er det ca. 200 personer med sykdommen.
Gen. Genet for Huntingtons sykdom kalles HD (OMIM), og ligger på kromosom 4 (4p16). Dette ble kjent i 1983, men selve genet ble ikke funnet og karakterisert. Man fant derimot polymorfe markører (VNTR) i nærheten av genet. Man kunne derved knytte genet til bestemte markører på samme kromosom. Markøren lå den gang ca. 4 cM fra selve genet, og påvisningen av genet ble indirekte. En DNA-test var da bare 96 % sikker, pga. sjansen for overkrysning.
I 1993 klarte man å klone selve genet for Huntingtons sykdom, og genet ble sekvensert. Genfeilen ved Huntingtons sykdom består i at en bestemt sekvens (CAG) gjentar seg opp til nesten 100 ganger, mens den hos friske personer gjentar seg bare 11-34 ganger. Man kan nå påvise sykdomsallelet direkte, og derved med 100 % sikkerhet stille diagnose.
Det er også vist at jo flere CAG-repetisjoner man har, jo tidligere vil sykdommen slå ut, i noen tilfeller helt ned til 20-års alder. Det er også slik at risikoen for tidlig sykdom er større hvis man har arvet sykdomsgenet fra sin far enn hvis det kommer fra mor. Og i tillegg kan antall CAG-repetisjoner øke fra far/mor til barn. Dette kan forklares med at slike repeterte sekvenser lett kan forandre seg under replikasjonen, både ved mitose og meiose (se fig. 13.6 og 13.7).
Gentest. Fra 1990 har det vært mulig å foreta DNA-testing for å påvise genet for Huntingtons sykdom i
Norge. Dette er ment for personer som vet at de har en risiko for å ha sykdommen, fordi en av
foreldrene har den. Dette kalles en presymptomatisk test, fordi den forteller om sykdommen vil komme
før det er noen symptomer. Hvis man skal ha barn, får man derved også vite om man har en risiko for
å videreføre sykdommen til dem. En slik test må aktivt være ønsket av personen selv, og det vil bli gitt
genetisk veiledning av helsepersonell om konsekvensene av ulike valg. En slik situasjon representerer
selvsagt et alvorlig etisk dilemma for den det gjelder. Se debatt 21.1.
20.2.2 Familiær hyperkolesterolemi, FH
Kolesterol og andre lipider fraktes i blodet som lipoproteiner, f.eks. LDL (Low Density Lipoprotein). Her er kolesterol bundet til ulike proteiner, såkalte apolipoproteiner, f.eks. apoE. Når kolesterol tas opp i cellene, skjer dette via egne membranbundne reseptorer for disse lipoproteinene, f.eks. LDL-reseptoren. Ved opptaket av kolesterol i cellene må det skje en binding mellom LDL-reseptoren og lipoproteinene.
Økt kolesterolnivå i plasma (hyperkolesterolemi) kan derved skyldes mutasjoner i genene for apolipoproteiner, eller for reseptorproteinene. Økt blodkolesterol kan gi avleiringer og tilstopping av blodårene (åreforkalkning, arteriosklerose). Hvis dette skjer i hjertets egne arterier (det koronare kretsløp), er det risiko for hjerteinfarkt.
FH, familiær hyperkolesterolemi, representerer én spesiell arvelig form for hyperkolesterolemi. Den kan ikke helbredes, men sykdomsutviklingen kan holdes tilbake. Uten behandling vil halvparten av FH-rammede få hjertekarsykdom før 55-års alder. De har sterkt redusert antall av LDL-reseptorer pr. celle, og vil lett få avleiringer og tilstopping av blodårer.
Arv, forekomst. FH følger en autosomal dominant arvegang. Hyppigheten av genet for FH (F) er ca. 1 av 300, slik at også 1 av 300 er heterozygote (Ff), og er rammet av FH. Dette er den hyppigste av de dominant arvelige defekter. Homozygot tilstand (FF) er ganske sjelden, men for disse er sykdommen svært dramatisk, og viser seg mye tidligere i livet.
Gen. FH er knyttet til genet for LDL-reseptoren, som sitter i kromosom 19 (19p13). Dette genet (FHC ellerLDLR) er på ca. 45 kb, med 18 eksoner. cDNA er på 5,3 kb, hvorav 2,6 blir translatert til et protein på 839 aminosyrer (LDL-reseptoren). Det er påvist en rekke ulike mutasjoner i FHC-genet som gir sykdommen FH, ca. 30 i Norge, over 150 totalt i verden.
Gentest. Hvis man har funnet FH hos en pasient, så er det stor risiko for at også andre i hans slekt har
det dominante FHC-genet. Dette går det an å finne ut ved en DNA-test (presymptomatisk test). Men mutasjonen i FHC-genet kan være ulik fra familie til familie. Hvis det er en ny familie som oppdager dette, er det først nødvendig å finne ut hvilken mutasjon det er snakk om. For å finne ut dette kan man anvende bl.a. SSCP (kap. 18.5) og DNA sekvensering. Når mutasjonen er funnet, vet man hvilken DNA-test som er aktuell, evt. må mandesigne en spesifikk DNA-test. Dette arbeidet kan være tidkrevende. Men når dette først er gjort, vil en DNA-test av andre familiemedlemmer med PCR-teknikk være relativt rask og enkel. Hvis diagnosen stilles tidlig, kan sykdommen motvirkes både ved medikamenter og livsstil, kosthold osv.
I forbindelse med gentesting av FH har spørsmålet om legers adgang til å drive oppsøkende genetisk
virksomhet blitt reist. Dette blir tatt opp i et par linjer 21.1.
20.2.3 Nevrofibromatose type 1
WIKI OMIM NHGRI NCBI Haukeland
(von Recklinghausens sykdom)
De som har denne sykdommen utvikler tallrike nervesvulster (tumorer) i underhuden. Det er en kreftsykdom. Det dannes store vorteliknende utposninger på huden, der antallet øker etter hvert. Det kan forekomme mild grad av psykisk utviklingshemming, lærevansker m.m. Graden av sykdom kan variere sterkt fra person til person.
Arv, forekomst. I Norge rammer denne sykdommen 1 av ca. 3000, dvs. 15-20 nye hvert år, og er derved en av de hyppigste dominant arvelige sykdommer. En person som bærer ett "sykt" gen blir syk, og har 50 % risiko for å få et barn som er sykt.
Genet for nevrofibromatose (NF1) sitter på kromosom 17 (17q11). Det er et kjempegen på ca. 335 kb,
det har 79 eksoner, og koder for et protein på 2810 aminosyrer. NF1-genet regnes som et tumor
supressorgen (se kap. 24.4).
20.3 RECESSIV ARV (WIKI)
Ved autosomal recessiv arv må man ha "dobbel dose" av sykdomsgenet a for å bli syk (aa). En
heterozygot (Aa) er ikke syk, men er bærer. På et stamtre vil vi se at friske foreldre kan få syke barn.
De må da begge ha vært bærere av sykdomsallelet (fig. 20.2).
Genfrekvens
Vi har tidligere (kap 1.6) omtalt Hardy-Weinbergs lov. Vi tenker oss to alleler A og a, som forekommer i en populasjon med en hyppighet (genfrekvens) på p og q. f (A) = p f(B) = q
Husk at: (p+q)2 = p2 + 2pq + q2
Vi har da:
•p2 er hyppigheten av homozygote (AA)
•2pq er hyppigheten av heterozygote (Aa)
•q2 er hyppigheten av homozygote (aa)
For recessiv arv kan vi da ta utgangspunkt i antall personer med den aktuelle egenskapen (aa). Hvis
hyppigheten av disse er 1 av 2500, har vi:
•q2 = 1/2500 dvs.
•q = 1/50 = 2/100 = 2 %. Dette gir
•p = 1 - 2/100 = 98/100 (98 %) » 1 (avrundet)
Hyppigheten av bærere (Aa) er da:
•2pq » 2 × (2/100) ×1 = 4/100 (4 %).
Disse tallene stemmer omtrent med virkeligheten for cystisk fibrose. Selv om bare 1 av 2500 fødes
med sykdommen, så er hele 1 av 25 personer bærere av sykdomsallelet! Tabell 20.3 viser tilsvarende
tall med andre utgangspunkt. Vi ser f.eks. at hvis én av 100000 har en sykdom, vil én av 150 være bærere.
Inngifte Wikipedia: Inbreeding
Det finnes en lang rekke recessivt arvelige sykdommer, mange av dem meget alvorlige. Allelene som gir disse sykdommene er hver for seg meget sjeldne. For at en slik sykdom skal dukke opp, må to personer som bærer det samme sjeldne allelet få barn sammen. Vi tenker oss at én av 1000 personer i en befolkning er heterozygote bærere av allelet (Aa). Da vil det bare være én av 1 mill. foreldrepar der begge to er bærere, (Aa) og (Aa) (1/1000 ´ 1/1000 = 1/1 mill). Bare disse vil kunne få homozygote, syke barn (aa).
Men hvis vi holder oss innen én slekt, der denne spesielle sykdommen forekommer, er det annerledes.
Innen denne slekten er hyppigheten av a relativt stor. Hvis to personer i denne slekten får barn
sammen (inngifte), vil risikoen for at begge er bærere av allelet a derved være mye større enn ved
tilfeldig gifte. Det er mange eksempler på at slikt inngifte gir økt antall arvelige sykdommer og defekter.
Dette er påpekt som et medisinsk problem i enkelte innvandrermiljøer i Norge, f.eks. det pakistanske.
Også i kongefamilier har inngifte vært vanlig. I Norge pågår det en diskusjon om å forby ved lov
ekteskap mellom søskenbarn.
Om inngifte blant innvandrere og helseproblemer:
Fra Stortinet 2006 Klassekampen mars 2007 Hege Storhaug i Aftenposten mars 2007
20.2.1 Føllings sykdom, PKU
(Fenylketonuri, PKU - P for phenyl)
Dette er det klassiske eksempel på en metabolsk (stoffskifte-) sykdom, også kalt Inborn errors of metabolism.Det finnes en lang rekke slike arvelige stoffskiftesykdommer, som hver for seg er ganske sjeldne. Føllings sykdom er en av de hyppigste av disse, og forekommer hos én av 10000. En person med Føllings sykdom mangler et enzym, fenylalanin hydroksylase, PAH, som omdanner fenylalanin til tyrosin (se fig. 20.3).
Resultatet av PKU blir opphopning av fenylalanin, som omdannes til bl.a. det toksiske
fenylpyrodruesyre (fenylpyruvat). Dette kan hemme utviklingen av sentralnervesystemet, og gi varig
hjerneskade. Sykdommen kan motvirkes hvis pasienten får en egen diett fra meget ung alder. Dette
forutsetter selvsagt at man oppdager sykdommen meget tidlig. I Norge blir alle nyfødte testet for PKU
(biokjemisk, ikke genetisk).
Arv
Det er naturlig at PKU nedarves recessivt. Det normale allelet (P) koder for et funksjonelt enzym, mens det muterte allelet (p) gir et ikke-funksjonelt enzym. En heterozygot (Pp) vil også ha det normale allelet og derved kunne produsere tilstrekkelig av enzymet til ikke å bli rammet. Av samme grunn vil de fleste slike stoffskiftesykdommer nedarves recessivt. Figur 20.3 viser litt av tyrosinstoffskiftet, og fem arvelige defekter knyttet til dette.
PKU skyldes mutasjoner i genet for PAH på kromosom 12. Genet er på totalt 90 kb og har 13 eksoner.
Enzymet PAH er på totalt 452 aminosyrer. Det er kjent over 200 ulike mutasjoner i PAH-genet.
Test
Alle nyfødte i Norge blir som nevnt testet for Føllings sykdom. Dette skjer ved å måle konsentrasjonen
av fenylalanin i blodet. Hvis nivået av fenylalanin er høyt, blir det gjort en gentest for å finne hvilken
mutasjon det er snakk om. Familier der man vet at sykdommen forekommer, kan få utført
fosterdiagnostikk. Genet for sykdommen er klonet og vel karakterisert, og det kan derved påvises ved
DNA-test.
Genterapi
Det blir også forsket på muligheten for å behandle Føllings sykdom ved genterapi av leverceller.
Imidlertid finnes det som sagt gode behandligsmuligheter for dem som har sykdommen.
20.2.2 Cystisk fibrose, CF
OMIM Fra NHGRI WIKI NCBI Haukeland
Personer med CF har mange ulike sykdomstegn som har sammenheng med unormal slimdannelse i
bl.a. lunger og bukspyttkjertel (pankreas), og dessuten unormal salt svette. Symptomenes alvor kan
variere fra person til person. Diagnose kan stilles som barn. Gode behandlingstilbud kan hemme
sykdomsutviklingen, men ikke helbrede den. Til tross for behandling må man regne med nedsatt
levetid, ofte bare 30 år. For bare 30 år siden var det vanlig at CF-rammede døde før skolealder.
Arv, forekomst
I Europa er CF den mest utbredte av de alvorlige genetiske sykdommene. Én av ca. 2500 fødes med CF, én av 25 er heterozygote bærere av genet. Dette betyr også at blant tilfeldige foreldrepar vil ett av ca. 600 par være bærere begge to. Sjansen hos ett slikt par for å få et sykt barn er 25 %. CF er mye mindre utbredt i andre befolkningsgrupper enn de kaukasiske (se tabell 20.4). Før legevitenskapen kunne hjelpe de syke, var det en klar negativ seleksjon mot cf-genet (de vokste ikke opp og fikk barn), og man skulle kanskje tro at genet nesten ville forsvinne. Imidlertid var det da også slik at heterozygote bærere hadde en fordel framfor andre. Dette fenomenet,heterozygot fordel, har vi også for sigdcelleanemi i malariastrøk (se 3C).
CF skyldes mutasjoner i genet som koder for et transmembranprotein, CFTR, som er på 1480
aminosyrer. Dette proteinet har betydning for ionetransport (av Cl) over membranen. Genet har fått
navnet CFTR. Det ligger på kromosom 7 (7q31), og er på ca. 250 kb, og har 24 eksoner. Genet er
også sekvensert.
Gentest
CF kan skyldes ulike mutasjoner. En av de hyppigste er en 3 bp delesjon som medfører tap av en
fenylalanin (kodon 508). Denne mutasjonen utgjør 95 % av CF-tilfellene i Danmark og 70 % i USA.
Den kan påvises ved å amplifisere et genfragment med PCR, og deretter bruke en ASO-probe for å
identifisere gen med eller uten delesjon (se fig. 20.4). CF-tilfeller som skyldes andre mutasjoner kan
ikke påvises med denne metoden. En gentest av CF, som tar sikte på å vise om en frisk person er
bærer (Aa) eller ikke (AA), kalles bærerdiagnostikk(se kap. 21.1).
20.2.3 Sigdcelleanami og hemoglobin
Hemoglobin består av 2 a- og 2 b-globinkjeder, som er kodet av to gener, HBA (16p13) og HBB
(11p15). HBB-genene er omtalt i et par linjer 13.1. Det finnes en lang rekke ulike mutasjoner i disse
genene som gir nedsatt hemoglobinfunksjon (anemier). I hovedsak er alle disse mutasjonene
recessive, i det ett sett med normale hemoglobingener gir tilstrekkelig med funksjonelt hemoglobin. Det
er beskrevet over 100 små mutasjoner bare i HBB-genet. Noen av disse er alvorlig, andre ikke.
Sigdcelleanemi (WIKI) OMIM (S) Fra NHGRI NCBI
skyldes mutasjonen (GAG®GTG) i kodon 6, ekson 1, i HBB-genet, som gir aminosyrebyttet (Glu®Val)
(se kap.18.1.1, fig. 18.2). Vi får hemoglobin S, HbS. Sykdommen gir sigdformede røde blodlegemer
(erytrocytter) som ikke klarer å passere de små blodkapillarene ute i vevene. Oksygentransporten blir
meget begrenset. Tilstanden gir meget høy dødelighet. Allelet for HbS kaller vi S, mens det normale
HBB-allelet er A. En heterozygot person (AS) vil ikke være rammet av sigdcelleanemi, S er recessiv.
Bare homozygote SS får sykdommen.
Forekomst
Normalt vil et slikt dødelig allel bli mindre og mindre hyppig og etter hvert bli borte, fordi de homozygote
SS ikke kan føre allelet videre til neste generasjon. Det vil bli selektert bort. Men dette skjer ikke i de
områdene der malaria forekommer. De som er heterozygote AS vil nemlig være mindre utsatt for
malaria enn normale homozyote AA. Malariaparasitten (Plasmodium falciforme) vil ikke formere seg så
lett i erytrocyttene hos AS-individer. I områder der denne ondartede malariaformen finnes vil derfor de
heterozygote bærerne av S-allelet ha en fordel, de vil rett og slett ha større sjanse enn andre for å
overleve og få barn. Det betyr at S-allelet harøkt sjanse for å bli ført videre til neste generasjon og det
vil øke i hyppighet. Det blir da en balanse mellom negativ seleksjon av SS pga. sigdcelleanemi, og
positiv seleksjon av AS pga. malariamotstand. Dette skjer i de områdene av verden der slik malaria
forekommer, hovedsakelig i Afrika. I store områder av sentral-Afrika er hyppigheten av S-allelet opp til
10 %. Der hvor malaria ikke forekommer, forekommer heller ikke S-allelet. Men i den afroamerikanske
befolkning i USA finner vi S, fordi de kom fra Afrika for noen få generasjoner siden.
er betegnelsen på tilstander der det blir nedsatt hemoglobinproduksjon. Hvis dette gjelder b-globin, har
vi enb-thalassemi. Det er kjent en rekke slike mutasjoner også, mange er geografisk lokalisert til
bestemte regioner i verden, spesielt mange former finnes rundt Middelhavet. De kan være
punktmutasjoner i eksoner, punktmutasjoner i RNA spleiseseter, mutasjoner i promoterområdet m.m.
Noen mutasjoner gir b+-thallasemier, som ikke behøver å være så alvorlig. Andre mutasjoner fører til
total mangel på ß-globin syntese, og kalles ß0-thallasemier.
20.2.4 Hemokromatose
Denne tilstanden kalles også jernoverbelastning. Den innebærer at tarmen tar opp mer jern enn
nødvendig, og at dette lagres i lever og andre organer. Dette kan gi flere ulike symptomer, bl.a.
skrumplever (leverchirrose) og bindevevsdannelse (fibrose).
Arv, forekomst
Dette blir ansett som den hyppigste recessivt arvelige lidelse i vår befolkning, med en forekomst på ca. 1 av 200. Det betyr at ca. 14 % er heterozygote bærere.
Genet som gir denne tilstanden ligger på kromosom 6 (6p21), og kalles HFE (Fe = jern). Genproduktet
er et protein på 321 aminosyrer som har stor likhet med HLA-proteinene. Det er identifisert
topunktmutasjoner som kan gi denne arvelige tilstanden. Graden av sykdom kan variere ganske mye,
selv om man er homozygot for den. Det betyr at graden av penetrans for dette genet kan variere. Det
kan utføres gentesting av de aktuelle mutasjonene, og dette tilbys ved norske sykehus. Her brukes
bl.a. realtime PCR og smelteprofilmetoden som er omtalt i et par linjer 18.6.
20.2.5 a1-antitrypsin mangel
a1-antitrypsin (a1-AT) er et plasmaprotein fra leveren som inhiberer en del proteolytiske enzymer, bl.a.
trypsin. Det kalles også PI, Protease Inhibitor. Mangel på a1-AT kan medføre at lungevev blir ødelagt
og at pasienten utvikler emfysem. Ca. én av 2500 har denne genetisk betingede formen for emfysem,
dvs. at ca. 1 av 25 er bærere av genet.
Arv
a1-AT (PI) kodes av et gen (PI) på kromosom 14 (14q32). Det er funnet en lang rekke (over 75) ulike
genetiske varianter som gir nedsatt a1-AT-funksjon. Men av disse er det en bestemt variant som er
mest hyppig. Denne mutasjonen (Z) gir en aminosyreforandring i enzymet (Glu®Lys). Denne
mutasjonen kan påvises med en ASO-probe.
Kjønnsbundet arv er knyttet til gener som sitter på X-kromosomet, og kalles da også X-bundet arv. Y-kromosomet er mye mindre enn X, og inneholder ikke disse genene. Vi omtaler her recessiv arv. Jenter er XX, og må være homozygote for å bli syke (Xa Xa). Vi skriver Xa, og ikke bare a, for å presisere at det er knyttet til X-kromosomet. Heterozygote jenter er bærere (XA Xa). Gutter derimot vil ha sykdommen hvis de har genet, fordi de bare har ett X-kromosom (Xa Y). Disse guttene har helt sikkert arvet det syke genet fra sin mor, siden de har fått X fra mor og Y fra far. Moren må da være bærer. Hvis en jente skal bli syk (Xa Xa), må hun ha arveta fra både mor og far. Det betyr at moren må være bærer, og faren må ha sykdommen selv. Dette forklarer at slike sykdommer er mer utbredt blant gutter enn jenter.
Eksempler på kjønnsbundet arv er Duchennes muskeldystrofi, blødersyke og rødgrønn fargeblindhet.
Alle disse eksemplene er recessiv arv. Det finnes meget få eksempler på dominant kjønnsbundet arv.
20.4.1 Duchennes muskeldystrofi, DMD
DMD er en alvorlig muskelsykdom som nesten bare rammer gutter. Et typisk bilde er at de får
muskelsvinn allerede i 2-3-års alder, må i rullestol når de er 12, og neppe lever lenger enn 20 år.
Sykdommen rammer også åndedrettet og hjernen. Den kan ikke helbredes.
Arv og forekomst
DMD er knyttet til X-kromosomet (Xp21). Ca. én av 3000 kvinner er bærere, og derved blir én av 6000 gutter født med sykdommen (se eks. 4, kap. 1.6).
Genet DMD er det største genet som er studert. Det består av 79 eksoner spredt over 2500 kb. Ett av
intronene utgjør 250 kb. DMD-genet er klonet og man har laget flere ulike prober for det. Ved hjelp av
disse probene kan man nå påvise DMD på DNA-nivå. Det er mulig å diagnostisere sykdommen, og
påvise bærere av anlegg for DMD. Det er brukt over 10 ulike RFLP-loci til å diagnostisere DMD.
Sykdommen kan nemlig skyldes ulike mutasjoner fra familie til familie, og disse krever derfor hver sin
analyse. En del av DMD-tilfellene skyldes også nye mutasjoner, og mutasjonshyppigheten i dette genet
er høyere enn normalt. Dette gjør genetisk påvisning av sykdommen meget vanskelig. DMD-genet
koder for et protein som kalles dystrofin, som også er isolert. Dette proteinet er viktig for
muskelcellenes funksjon.
Becker muskeldystrofi, BMD
er en mildere variant av DMD, som skyldes mutasjoner i samme gen. En gutt med BMD kan vokse opp
og få barn, og derved føre genet videre til sine døtre.
20.4.2 Blødersyke, hemofili (WIKI)
OMIM (hemofili A - F8) OMIM ((hemofili B) NCBI
For at blod skal koagulere (størkne) ved blødninger, trengs en lang rekke faktorer. Mangler én av
disse, vil blodet ikke koagulere, og man kan få livstruende blodtap. Ved hemofili A er det
koagulasjonsfaktor VIII som mangler, ved hemofili B er det faktor IX.
Arv og forekomst
Genene for både faktor VIII og IX sitter på X-kromosomet, og begge disse sykdommene nedarves recessivt. Mest kjent og mest vanlig er hemofili A. Ca. 1 av 4000 gutter blir født med hemofili A (Xh Y), og omtrent like mange kvinner er da bærere (XH Xh). For at en jente skal fødes med blødersyke (Xh Xh) må moren være bærer (XH Xh) og faren være bløder (Xh Y). Det er ulike grader av blødersyke, mild, moderat eller alvorlig.
Genet for faktor VIII kalles F8 (eller HEMA) og ligger ytterst på X-kromosomet (Xq28). Det er et
kjempegen på totalt 186 kb, med 26 eksoner, som gir et protein på 2332 aminosyrer. Det største
intronet er på 32 kb. Man har funnet et stort antall ulike mutasjoner som gir hemofili A. Noen av disse
er større rearrangement av genet, andre er enkle punktmutasjoner. De fleste punktmutasjonene
forekommer i sekvensen TCGA, som er et restriksjonssete (TaqI). Hvis TCGA muterer til TTGA får vi
et stoppkodon (TGA) og derved et avkortet protein. Noen av mutasjonene gir faktor VIII-protein med
noe aktivitet, og derved en mildere grad av blødersyke.
Behandling
Det var tidligere vanlig å gi personer med blødersyke blodoverføringer av blod som inneholdt faktor
VIII. Slike blodoverføringer har som kjent påført en del blødere HIV/AIDS, fordi blodgiverene ikke var
HIV-testet. Nå kan man produsere faktor VIII ved hjelp av genteknologi, i genspleisede bakterier.
20.4.3 Fargeblindhet
Dette er ikke en sykdom, men vi tar det med likevel, fordi det er et interessant og aktuelt eksempel.
Rhodopsin
Øynene har to typer synssanseceller, staver og tapper. Det er flest staver, totalt ca. 110 millioner, og de gir oss svart/hvitt syn, også ved svakt lys (mørkesyn). Stavene inneholder fotoreseptoren rhodopsin, et transmembranprotein på ca. 350 aminosyrer, som også inneholder det lysabsorberende stoffet retinal (fig. 20.6). Lyset som kommer inn i øyet vil først forandre stoffet retinal fra cis-form til trans-form, og dette vil påvirke rhodopsin. Resultatet blir en forandring av cellemembranen som starter en nerveimpuls til synsnervene.
Fargesynet skyldes tappene, som vi har "bare" ca. 6 mill. av. I tappene finner vi tre typer
fotoreseptorer, for blått, rødt og grønt lys. Dette er tre proteiner som alle har stor likhet med rhodopsin,
men de absorberer lys i hver sin bølgelengde. Hver celle (tapp) har bare den ene typen av pigment. De
tre reseptorene kodes av tre separate gener.
Arv
Genet for blå fotoreseptor (CBT) sitter på kromosom 7. Feil i dette genet gir blå fargeblindhet, som er meget sjelden.
Genene som koder for rød og grønn fotoreseptor sitter nær koblet på X-kromosomet (Xq28), og disse to genene har stor grad av likhet (96 %). For rød reseptor er det ett gen, men for grønn reseptor kan det være 1-3 kopier av genet. Genene har fått navnet CBD og CBP (CB = Color Blindness).
Rød/grønn fargeblindhet kan skyldes en rekke ulike feil i de røde/grønne reseptorgenene. Noen av
disse er enkle punktmutasjoner som gjør at reseptoren ikke virker som normalt. I andre tilfeller har det
skjedd en gal overkrysning innenfor disse genene. Det røde og det grønne genet ligger tett ved siden
av hverandre, og er ganske like. De kan derved risikere å bli paret feil ved meiosen, slik at det skjer en
overkrysning. Resultatet blir da at ett kromosom får et gen ekstra, det andre kromosomet mister et gen
(fig. 20.6).
Forekomst
Fenotypisk sett kan vi se på rød/grønn fargeblindhet som én egenskap, og også se de to genene
under ett, som ett genlocus. Vi kan kalle det "gen for fargesyn" F - evt. fargeblindhet f. Allelet f er
recessivt. En kvinne som har ett X-kromosom med normal F og ett med f, vil ha normalt fargesyn. Hvis
frekvensen av fargeblinde menn er 8 % (0,08), så er frekvensen av genet f også 0,08. Frekvensen av
fargeblinde kvinner skulle da bli 0,08 × 0,08 = 0,0064 (0,64 %). Men i virkeligheten er dette tallet
lavere. Dette kommer av at f ikke er ett enkelt gen. Selv om begge X-kromosomene hos en kvinne har
en feil, så kan feilen være i ulike gener (rød eller grønn). Da vil hun ha normalt fargesyn. Men hvor
mange kvinner er bærere av f? Frekvensen av f er 0,08, og av F blir det da 0,92. Bærere Ff er da: 2 ×
0,08 × 0,92 = 0,15. 15 % av kvinnene er altså bærere.
20.4.4 Fragilt X-syndrom
OMIM Fra NHGRI WIKI NCBI Haukeland
Dette er en arvelig form for psykisk utviklingshemming. Tilstanden skyldes en genfeil ytterst på X-kromosomet (Xq27.3) som gjør kromosomet skjørt (fragilt). Feilen ligger i genet FMR1 (Fragile Site Mental Retardation). Den går ut på at trinukleotidet CGG (i 5'-UTR-området av genet) blir repetert svært mange ganger. Graden av utviklingshemming er avhengig av antallet repetisjoner. 10-50 repetisjoner regnes som normalt, 50-200 regnes som "premutasjoner" - uten symptomer, mens > 200 repetisjoner gir ulik grad av utviklingshemming.
Tilstanden nedarves kjønnsbundet recessivt, men arvemønsteret er i virkeligheten noe mer komplisert.
Kvinner med ett normalt og ett fragilt X-kromosom kan vise noen av de samme symptomer, f.eks. tegn
til lærevansker. Denne X-bundne arven er forklaringen på at psykisk utviklingshemming er ca. 50 %
mer vanlig blant gutter enn jenter. Omkring 1 av 3000 gutter arver denne genfeilen.
Polygenisk arv vil si at én egenskap blir bestemt eller påvirket av flere gener. Disse egenskapene blir
ofte påvirket av miljøet også, og vi snakker da om multifaktoriell arv.
20.5.1 Blå/brune øyne
Ofte brukes øyenfargen brun/blå som skoleeksempel på dominant/recessiv mendelsk arv, der genet
for brune øyne (B) er dominant over genet for blå øyne (b). Men i virkeligheten er det nok flere enn ett
genpar som avgjør øyenfargen, vi har polygenisk arv. Genene for øyenfarge har fått navnet EYCL, og
det er faktisk ett gen som i hovedsak avgjør om vi har brunt pigment eller ikke i øyets iris. Dette er
EYCL3 OMIM), som ligger på kromosom 15, også kalt BEY2 (brown eye). Genet EYCL1 (OMIM) på
kromosom 19 kalles også GEY (grey eye).
20.5.2. Hjertekarsykdommer
Vi har tidligere (1C) omtalt den arvelige formen for hyperkolesterolemi, FH, som er knyttet til genet for
LDL-reseptoren. Man har også funnet en sammenheng mellom ulike varianter av apolipoproteiner og
risikoen for å få hjerte-karsykdommer. F.eks. har personer som er homozygot for apoE-varianten
apoE4 økt risiko for å utvikle hjerte-karsykdommer. Det er laget allelespesifikke prober og
PCR-primere for å undersøke ulike apoE typer.Det er også funnet sammenheng mellom polymorfismer
knyttet til apoB-genet og hjerte/karsykdommer.
Prediktive tester
Ved gentester kan man nå plassere en person i høyrisikogruppen for hjerte/karsykdommer, evt. i
lavrisiko ved å analysere f.eks. apoE-typen. Dette kalles prediktive tester, fordi de forutsier (predict)
noe om våre muligheter.
20.5.3 Psykiske, mentale lidelser
Man har lenge visst at flere psykiske lidelser går igjen med stor hyppighet i enkelte familier. Dette er
ikke noe bevis på at de er genetisk bestemt. Man arver jo også miljøet, som godt kan være årsak til
slike problemer. Man har brukt tvillingforskning (kap. 20.7) for evt. å påvise genetisk betingede forhold.
Nå kan man ved hjelp av DNA-teknikker prøve å knytte genetiske markører til personer med slike
lidelser.
Alzheimers sykdom
er en vanlig form for senil demens (alderdomssløvhet). Man regner med at ca. 20 % av
Alzheimer-tilfellene har et genetisk utgangspunkt. Spesielt er det funnet en sammenheng mellom visse
varianter av ApoE (ApoE4) og Alzheimer. Dette genlocus på kromosom 19 har derfor også fått
betegnelsen AD2 (AD for Alzheimers Disease). Det er identifisert flere genloci som har betydning for
"tidlig" (early onset) Alzheimer. Disse har fått betegnelsene AD1 (på kromosom 21) , AD3 (krom. 14)
og AD4 (krom. 1). Det er også funnet at et mitokondriegen kan ha betydning for utvikling av Alzheimer.
Schizofreni
er en samlebetegnelse for flere typer lidelser med psykisk element. Det har lenge vært antatt at disse
kan være genetisk betinget. De viser klar tilknytning til bestemte familier, men det har ikke vært mulig å
finne noen sikregener. Det er imidlertid lokalisert flere gener er som kan være assosiert med utvikling
av schizofreni. Noen av disse er døpt SCZD1, SCZD2 osv.
20.5.4 Diabetes
Sukkersyke, diabetes mellitus, skyldes manglende regulering av blodets glukoseinnhold (blodsukker).
Blodsukkernivået reguleres normalt av hormonet insulin. Genet for insulin (INS) sitter på kromosom 11
(11p15.5), og blir kun uttrykt i bukspyttkjertelen, i -cellene i de "Langerhanske øyer". Insulin, som er et
lite protein på 51 aminosyrer, binder seg til en egen insulinreseptor. Denne reseptoren vil da bli aktivert
og sette i gang de aktuelle metabolske prosesser. Genet for insulinreseptoren (INSR) sitter på
kromosom 19 (19p13.2).
Man skiller mellom to typer diabetes som kan ha ulik årsak.
•Type I, insulinavhengig, ungdomsdiabetes.
•Type II, ikke insulinavhengig, aldersdiabetes.
Type I diabetes
Cellene som utskiller insulin har, som andre celler, overflateproteiner av typen HLA (se kap. 33.4). Mutasjoner i HLA-genene (på kromosom 6) gjør disse proteinene ugjenkjennelige for kroppens immunsystem. Cellene kan derved bli ødelagt av kroppens eget immunforsvar (autoimmunitet, selvødeleggelse). Disse pasientene mangler derfor insulin, og må behandles med insulininjeksjoner.
Det er påvist en korrelasjon mellom ungdomsdiabetes og visse varianter av HLA klasse II (DR3 og
DR4) (se kap. 23.4). Slike HLA-typer kan påvises ved DNA-tester.
Type II diabetes
OMIM - type II Haukeland (type II) OMIM - type II
Heller ikke her har man funnet noe enkelt arvemønster eller gener som forklarer sykdommen, men en
rekke genetiske faktorer. Tilstanden viser et klart familiært mønster. Barn som har foreldre med denne
type diabetes har stor risiko for å få det selv. Kosthold (overernæring) og mangel på fysisk aktivitet har
stor betydning for utvikling av sykdommen.
20.5.5 Kreft
WIKI Brystkreft (NHGRI) RB (Fra NCBI)
Det er i de siste år blitt karakterisert en rekke gener som knyttes til ulike kreftformer. Typisk for disse er at det finnes en stor mengde ulike mutasjoner, og hver mutasjon kan gi en økt disposisjon eller risiko for kreft. Ofte kan flere mutasjoner sammen forsterke virkningen. Vi kan arve slike mutasjoner, og i tillegg kan det oppstå mutasjoner i oss selv (ervervede). Det typiske er at det er en genetisk faktor og en miljøfaktor som sammen påvirker en evt. utvikling av kreft som sykdom.
Det genetiske grunnlag for kreft blir omtalt nærmere i et par linjer 24, bl.a. med omtale av "kreftgenene" P53, RB1, BRCA1 og BRCA2. (OMIM)
Aneuploidi
Hvis man har et uvanlig antall av ett bestemt kromosom, kalles det aneuploidi (euploidi = ekte
antall).Eksempler på dette er trisomi (tre av ett sett) og monosomi (bare ett kromosom av ett sett).
Aneuploidi kan gjelde både kjønnskromosomene og de 22 autosomene.
20.6.1 Trisomi 21 - Downs syndrom
Dette er ikke noen arvelig sykdom, men skyldes feil ved kromosomfordelingen under meiosen. Personer med Downs syndrom har tre stk. av kromosom 21, og tilstanden kalles derfor også trisomi 21. Dette kan påvises ved kromosomstudier av fostervannsprøver innen 16. uke. Ca. én av 700 fødes med Downs syndrom (før kalt mongoloide).
Foruten trisomi 21 er det to andre trisomier som er relativt utbredt, nemlig 18 og 13.
Karyotypen er en beskrivelse av hvor mange og hvilke kromosomer som finnes. For trisomi 21 er
karyotypen (47, XX,+21) eller (47, XY,+21), for en normal mann er det (46, XX).
20.6.2 Klinefelters syndrom (47, XXY) Wiki
En XXY-person vil utvikle seg som mann, men med et ekstra X-kromosom (karyotype 47, XXY).
Diagnose stilles ofte i puberteten, bl.a. pga. små kjønnsorganer og andre manglende mannlige trekk.
De er sterile. Ca. 1 av 1000 gutter fødes med Klinefelters syndrom.
20.6.3 Turners syndrom (45, X) WIKI
Individer med bare ett X-kromosom blir hunkjønn. Diagnose kan som regel stilles ved fødselen. De
utvikler ikke normale kvinnelige kjønnskjennetegn i pubertetsalderen, de er små av vekst, og er
normalt også sterile. Det er mulig å behandle en del av symptomene med kjønnshormoner og
veksthormon. Ca. 1 av 5000 jenter fødes med Turners syndrom.
Det forekommer også en rekke andre sjeldne kjønnskromosomavvik, f.eks. gutter med ekstra Y (47,
XYY) og jenter med ekstra X (47, XXX). Begge disse vil i hovedsak utvikle seg som normal gutt/jente.
20.7.1 Tvillingundersøkelser
WIKI Tvillingundersøkelsen ved Folkehelsa
Vi ønsker å finne ut om en tilstand, f.eks. epilepsi, kreft, astma eller kroppsvekt er bestemt av arv eller
miljø. En mulig metode er da å undersøke tvillingpar, både eneggede og toeggede. Toeggede tvillinger
stammer fra to forskjellige zygoter, altså to eggceller som er befruktet av hver sin sædcelle. De kalles
dizygotiske. Genetisk sett er disse tvillingene like ulike som to tilfeldige søsken. Eneggede tvillinger
stammer fra én zygote, som har gitt opphav til to individer. Disse er genetisk sett identisk, og kalles
monozygotiske. Tvillingstudier krever tilgang til informasjon om et stort antall tvillingpar.
20.7.3 Konkordans
Vi kan sammenlikne eneggede tvillingpar med toeggede, og se om likheten er større blant de eneggede. For å angi graden av likhet brukes begrepet konkordans (enighet). I en undersøkelse av epilepsi er konkordansen målt til 59 % blant eneggede og 19 % blant toeggende tvillinger. Dette betyr at når den ene tvillingen har epilspsi, så har den andre også epilepsi i 59 % av tilfellene blant eneggede, men bare i 19 % av tilfellene blant toeggede. Er større konkordans blant eneggede et uttrykk for at genene spiller en rolle? Miljøet kan også bety noe, men vi må anta at dette ikke spiller større rolle blant toeggede enn eneggede tvillingpar. Dette er kanskje ikke 100 % sikkert, eneggede tvillinger kan også ha mer likt miljø enn toeggede. De er av samme kjønn, ser like ut, kan lettere bli behandlet likt. Men slike studier kan gi en god indikasjon på om arv spiller en rolle.
En annen måter å gjøre tvillingstudier på er tvillingadopsjonsstudier. Man må da ha eneggede
tvillingpar der den ene vokser opp hos sine biologiske foreldre, den andre hos adpoptivforeldre. En
adoptert tvilling har samme miljø som sine adoptivforeldrene, men ikke samme gener. Den
ikke-adopterte tvillingen har både samme miljø og gener som sine biologiske foreldre. Hvis likheten
mellom barn og foreldre er større hos ikke-adopterte enn hos adopterte, tyder det på at arv spiller en
rolle. Hvis likheten mellom barn og foreldre er den samme hos begge, tyder det på at arv ikke spiller
noen rolle.
20.7.3 Adopsjonsstudier
Vi kan også studere adopterte personer generelt. La oss tenke oss at det forekommer schizofreni i den
adoptertes biologiske familie, men ikke i den adoptertes nye familie. Vi kan da se om risikoen for
schizofreni er mindre blant de som blir adoptert bort enn blant de som ikke blir adoptert bort. Dette
forutsetter at det finnes tilstrekkelig mange familier der dette kan følges over en tid, og at diagnosen er
objektiv. Begge disse forhold kan være problematisk å oppnå.
20.8 FARMAKOGENETIKK (WIKI) Pharmacogenetics Wikibase
Fra Haukeland Legetidsskriftet GeniAlt
PharmGKB (database) Fra HGP-info
Som andre stoffer blir også legemidler metabolisert i kroppen. De kan bli omdannet til inaktive stoffer, de kan bli omdannet til mer aktive stoffer, og de kan bli omdannet til skadelige, toksiske stoffer, og de kan bli omdannet til stoffer som lettere skilles ut av kroppen. Dette gjelder tusentalls legemidler; hjertemedisiner, smertestillende, antidepressive, antiepileptika, psykofarmaka osv. Denne evnen til å metabolisere legemidler er genetisk betinget, og den er ulik fra person til person. Genetiske analyser kan kartlegge de genene som er involvert i å omdanne et legemiddel, og derved kan man kanskje "skreddersy" medisiner til vedkommende.
Farmakogenetikk er en vitenskap som studerer hvordan genetiske faktorer kan gi ulik i respons på
legemidler. Farmakogenomikk er omtrent det samme, men her betrakter man helheten av genene,
hele genomet til en person.
P450 WIKI om CYP / P450
Metabolismen av en meget stor del av våre legemidler blir besørget av en stor familie av enzymer, nemligcytokrom P450. Disse enzymene finnes i alle organismer, fra bakterier til mennesker. P450-enzymer kan f.eks. oksidere polysykliske aromatiske forbindelser og steroider. Dette kan i mange tilfeller gjøre dem mer vannløselige, og lettere å skille ut. Det kan også hende at P450-enzymer omdanner ufarlige stoffer til skadelige, i noen tilfeller til karsinogene. Også mange miljøgifter, som de kreftfremkallende PAH (polysykliske aromatiske hydrokarboner) blir omdannet av P450-enzymer.
P450-genene blir uttrykt i leveren, og det finnes mer enn 50 slike gener i vårt genom. Noen få av P450-enzymene har ansvaret for omdanningen av de mest vanlige legemidlene. Genene for disse heter Cyp1a2, Cyp2c9, Cyp2c19, Cyp2d6, Cyp3a3 og Cyp3a4. Disse genene er meget polymorfe, og varierer både mellom individer og mellom ulike etniske grupper. Cyp1, Cyp2 osv. er genfamilier, mens a, b, osv. er underfamilier.
Enzymet fra genet Cyp2d6 metaboliserer opptil 25 % av legemidlene i markedet, betablokkere,
antidepressive midler m.m. Dette enzymet er inaktivt hos 6 % av den kaukasiske befolkning. Disse
individene kan derved ikke omdanne disse medikamentene. De vil være ekstremt følsomme for dem,
og risikere uønskede effekter. Uønskede effekter av legemidler er et stort helseproblem, og medfører
en rekke dødsfall årlig.
SNP
De fleste polymorfismene i P450-genene er av typen SNP. Ett av de store prosjektene under HGP er å kartlegge alle viktige SNP-er i det humane genom. Vi finner kanskje en SNP for hver 300 base, og P450-genene er som nevnt spesielt polymorfe. I et par linjer18.8 så vi hvordan SNP-genotyping kan utføres i stor skala med DNA-brikker. Innen farmakogenetikk kan man velge ut de aktuelle SNP-er i P450-genene, og kartlegge disse hos en pasient. Hvis man kjenner pasientens genotyper for ulike P450-enzymer, kan man kanskje finne en individuelt tilpasset medisinering.
De store legemiddelgigantene har gått sammen med nasjonale helseinstitusjoner om å bygge opp en database for SNP-er i det humane genom, dbSNP (se 19.4). Innen farmakogenetikk er det en egen database, PharmGKB, Pharmacogenetics Knowledge Base). (http://www.pharmgkb.org/ ). Her ligger informasjon om alle gener og alle legemilder som kan ha interesse fra et farmakogenetisk syn. Her ligger nå (jan. 2006) ca. 600 slike gener omtalt.
Denne utviklingen gir enorme muligheter for helsegevinster, og den reiser (som vanlig) mange nye spørsmål av etisk karakter. En skreddesydd medisinering vil kreve en utstrakt genetisk kartlegging av individer og grupper. Det kan også bli et spørsmål om hvem som har nok penger til denne type behandling. De skreddersydde legemidlene vil kanskje også kreve klinisk utprøving på en genetisk homogen gruppe individer.
Som ellers er det også her slik at genene alene ikke avgjør alt. Også miljøet påvirker omsetningen av
legemidler, f.eks. kosthold, røyking, bruk av andre medikamenter m.m.
Fra Doktoronline.no Fra Veterinærinstituttet
Sykdommer
Siden 1995 har det vært stor oppmerksomhet omkring skrapesyke (scrapie) hos sau, kugalskap hos storfe og Creutzfeldt-Jacobs sykdom hos mennesker. Alle disse sykdommene er blitt knyttet til såkalte prioner, og man har fryktet at sykdommen kan overføres fra syke dyr til mennesker.
Skrapesyke (WIKI) Fra Forskning.no Fra Matportalen
hos sau er karakterisert ved sterk kløe som medfører at de kan skrape av sin egen ull. Fram til 1995
var det kjent 15 tilfeller av sykdommen i Norge, hvorav 5 i 1995.
gjør at dyrene får balanseproblemer, og opptrer nervøst og aggresivt. I England økte forekomsten av
sykdommen fra sju i 1986 til 37000 i 1993.
Creutzfeldt-Jacobs sykdom (WIKI)
hos mennesker rammer hjernen, og kan gi meget alvorlige utslag. Det kan ramme balanse, syn,
taleevne, hukommelse m.m. i sterkt tiltakende grad. Det finnes ingen behandling. Det finnes også tre
andre sjeldne sykdommer hos mennesker som er knyttet til prioner.
Prioner er små proteiner på ca. 30 kdal (PrP). Navnet kommer av proteinliknende infeksiøse partikler. De finnes hos alle pattedyr. Prioner fra sau og storfe skiller seg fra hverandre i 7 aminosyrer, mens mennesket skiller seg fra storfe i over 30 aminosyrer. Man kjenner ikke den normale funksjonen til prionene.
Et normalt prion (PrP) består av fire a-helikser (fig. 20.7), og det brytes raskt ned av proteaser i cellen.
Hos dyr med skrapesyke finner man prioner med en annen struktur (ScPrP), nemlig to a-helikser og to
-bånd. Dette vil ikke bli nedbrutt av protease, og vil således akkumulere i cellen. I hjerneceller vil dette
etter hvert føre til skade, og til de omtalte sykdommer. Hvis man innfører det syke ScPrP i celler med
normalt PrP, vil PrP bli forandret til ScPrP! Hvordan dette skjer er ikke klart, men resultatet blir en
kjedereaksjon. Små mengder ScPrP vil omdanne litt PrP til ScPrP. Dette vil igjen omdanne enda mer
til ScPrP. Resultatet blir en stor opphopning av ScPrP.
Arv
I 1985 ble genet for prionprotein identifisert og isolert (fra hamster). Man kjente da sekvensen av 15 av
de terminale aminosyrene. Ut fra dette ble det laget DNA-prober, og genet kunne oppspores. Man fant
da at det syke PrP-genet skiller seg fra det normale bare i én base, og sykt PrP fra normalt derved
bare i én aminosyre.
Hvordan prionsykdom oppstår
Prionsykdommene kan oppstå på tre måter:
Sporadisk. Dette kan skyldes mutasjoner i priongenet som gir sykt prion.
Arvelig. Et individ med mutasjon i PrP-genet vil kunne gi dette videre ved vanlig arv. Siden genproduktet er skadelig, vil dette være dominant arv.
Smitte. Dette er den dominerende årsak til spredning av kugalskap, som vi har sett. Man har brukt
døde dyr til å produsere dyrefor (kjøtt- og beinmel). Blant disse døde dyra har det vært noen syke dyr.
Dette kan gjelde både sau (skrapesyke) og storfe (kugalskap). Derved har sykt ScPrP blitt overført til
friske dyr. Dette kan, som vi har sett, forandre normalt PrP til sykt. Det er spesielt når også hjernen til
de døde dyra blir brukt til fôrproduksjon at dette kan skje. Det er i hjernen og annet nervevev at det
syke ScPrP hoper seg opp.
Smitte mellom arter
Man mener at prionsykdommer hos storfe kan være resultatet av smitte fra sau med skrapesyke. Prionene hos sau og storfe er nokså like, med bare 7 aminosyrer forskjell. Sykt ScPrP fra sau kan forandre normalt PrP hos ku. Man mener at jo større forskjell det er mellom prionene fra to arter, jo mindre sjanse er det for at de kan påvirke, dvs. smitte hverandre. Forskjellen fra ku til mennesket er over 30 aminosyrer. Man har ikke funnet at prioner fra ku kan forandre humane prioner. Derved har man ikke sikre holdepunkter for at syke dyr kan overføre denne type sykdom til mennesker. Det er imidlertid fremdeles usikkerhet rundt dette spørsmålet.
21. GENTESTER OG GENTERAPI Til bokens kapitteloversikt
Genteknologiens inntog innen medisin gir mange nye muligheter for diagnose og behandling. Dette
reiser også mange viktige og vanskelige spørsmål som vi må ta stilling til. Noen av disse spørsmålene
er berørt i dette kapittelet.
21.1 GENTESTER
Det er nå flere hundre sykdommer som kan diagnostiseres på DNA-nivå ved en gentest. I kap. 20 ble noen arvelige sykdommer gjennomgått, og i den forbindelse ble også muligheten for gentester omtalt. Bruken av genteknologi innen medisin i Norge blir regulert av den såkalte bioteknologiloven som ble vedtatt 5. august 1994. Loven heter egentlig: Lov om medisinsk bruk av bioteknologi.
Man kan skille mellom flere former for gentester, alt etter tidspunkt for testen og hva som er formålet med testen. Loven skiller spesielt mellom gentester som tar sikte på å stille diagnose for pasienter som allerede er syke, og på den annen side presymptomatiske og prediktive tester og bærerdiagnostikk.
De som ønsker aktuell informasjon om gentesting i Norge anbefales internettsidene til
bioteknologinemnda og deres tidsskrift Gen-i-Alt.
Norske lover
|
Statens helstilsyn om bioteknologiloven
Relevante tema
21.1.1 Gentest etter fødselen
En gentest etter fødsel kan utføres på nyfødte, eller senere i livet, også på voksne mennesker. Hvis
det er snakk om en masseundersøkelse av befolkningen, blir det kalt screening. Genetisk screening er
ikke aktuelt for noen sykdommer i Norge pr. i dag. Men det er et hundretalls sykdommer som er
godkjent for genetisk testing.
Presymptomatiske tester
En presymptomatisk test undersøker om man har en sykdom før den bryter ut. Dette kan gjøres med f.eks. Føllings sykdom (PKU, kap. 20.3.1), med cystisk fibrose (CF, kap.20.3.2), med Huntingtons sykdom (HS, +. 20.2.1) og med familiær hyperkolesterolemi (FH, kap 20.2.2).
I Norge blir alle nyfødte testet for Føllings sykdom. Denne sykdommen kan motvirkes med egen diett, og det er viktig å stille diagnosen tidlig. Denne testen er imidlertid ikke av DNA, men av aminosyren fenylalanin i blodet.
Huntingtons sykdom (HS, kap 20.2.1) slår ut først i 40-50-års alder, og sykdommen kan ikke behandles. Hvis en av dine foreldre har sykdommen, har du selv 50 % risiko for å utvikle den i 40-50 års alderen. En presymptomatisk gentest vil gi deg visshet om dette. Noen ønsker å vite, andre ønsker det ikke. En slik kunnskap vil selvsagt ha stor innvirkning på hele livssituasjonen til den person det gjelder, og evt. på den nære familie. Det kan også påvirke ønsket om å få barn eller ikke. Er du selv rammet, vil det være 50% risiko for at barna dine arver sykdommen. Hvis man velger å ta en slik gentest, vil man få genetisk veiledning av kyndig helsepersonell.
Genetisk veiledning, Fra Haukeland Fra legetidsskriftet
Kreft (se kap. 20.5.5) er kanskje den form for sykdom der tilbudet og mulighetene for gentesting er
kommet lengst, også her i Norge. Haukeland sykehus oppfordrer gjennom sine nettsider personer som
har mistanke om arvelig kreft i familien til å ta kontakt med tanke på mulig gentesting.
Oppsøkende genetisk virksomhet
GeniAlt Fra sosialkomiteen (1994)
Familiær hyperkolesterolemi (FH, kap. 20.2.2) er en dominant arvelig form for hyperkolesterolemi, som
innebærer økt risiko for hjertekarsykdom. Pasienter som får stillet diagnosen tidlig kan motvirke
utviklingen gjennom behandling og livsstil. Hvis en person har fått påvist FH-genet, så vet vi at mange
av hans slektninger også har dette genet. Pasienten selv kan oppsøke disse og informere dem. Men
skal legen på egen hånd kunne oppsøke disse og informere dem, slik at de kan få tilbud om en
gentest? Norsk lov har tidligere ikke tillatt dette, men den ble endret i 2000, slik at oppsøkende genetisk
virksomhet ble tillatt i visse situasjoner.
Bærerdiagnostikk
Når det gjelder cystisk fibrose, CF, er 1 av 25 personer heterozygote bærere. De som vet at sykdommen forekommer i sin slekt, har en høyere risiko for å være bærere. Ved testing kan et kommende foreldrepar f.eks. få vite at begge er bærere (CF cf). De har da 25 % risiko for å få et barn med sykdommen (cf cf). En slik kunnskap kan påvirke ønsket om å få barn eller ikke. Foreløpig er gentest av CF forbeholdt familier der man vet at sykdommen forekommer. Hvis to bærere skal ha barn, vil de videre kunne få testet fosteret (se neste punkt om fosterdiagnostikk).
Det finnes en lang rekke recessivt arvelige, alvorlige stoffskiftesykdommer. For disse kan det også bli
aktuelt å tilby bærerdiagnostikk i familier som vet at de har et slikt gen.
Prediktive tester
Det er også mulig å bruke DNA-tester for å finne ut om en person har høy risiko for å få kreft, hjerteinfarkt, utvikle Alzheimers sykdom m.m. Det er påvist en rekke gener og mutasjoner som gir økt risiko for å utvikle slike sykdommer. Slike tester kalles prediktive, fordi de undersøker risikoen for å utvikle en tilstand i fremtiden.
Men er det slik at vi virkelig ønsker å vite om vi f.eks. er sterkt arvelig disponert for å utvikle kreft eller hjerteinfarkt? En slik kunnskap kan gjøre at sykdommen kan motvirkes gjennom livsstil og riktig behandling. På den annen side kan det for mange av oss skape angst og bekymring. For noen kan det kanskje gi en falsk følelse av trygghet å vite at man ikke er spesielt genetisk disponert for et eller annet.
Mer alvorlig kan det bli hvis opplysninger om våre arvelige disposisjoner kommer i hendene på
forsikringsselskaper, arbeidsgivere osv. Kanskje du får doblet livsforsikringspremien, og mister
sjansene for ny jobb pga. dine gener. I den norske bioteknologiloven er det et uttrykkelig forbud mot å
besitte, motta, bruke,eller be om slike opplysninger om andre. Dette gjelder bl.a. arbeidsgivere og forsikringsselskaper.
21.1.2 Gentest før fødselen
Fosterdiagnostikk
Fra legetidsskriftet Bion.no om fosterdiagnostikk
eller prenatal diagnostikk vil si å stille en diagnose hos fosteret. Man kan da ta ut prøver fra fostervannet i f.eks. 16. uke, evt. noe før. Men det er også mulig å ta morkakeprøver (chorion biopsi) i 8.-9. uke. Blant de sykdommer som diagnostiseres prenatalt ved DNA-analyser i Norge er Huntingtons sykdom. Det kan også være aktuelt å tilby testing av fosteret når begge foreldre er bærere av genet for CF (Cystisk Fibrose). Man kan videre påvise Downs syndrom, og det er mulig å kjønnsbestemme barnet ut fra slike fosterprøver. I prinsippet kan vi teste et foster for alle mulige sykdomsgener og andre gener.
Spørsmålet om fosterdiagnostikk er nær knyttet til spørsmålet om svangerskapsavbrudd, dvs. abort. Når det gjelder Downs syndrom, så har dette lenge vært en aktuell problemstilling for mange familier. Nå kan det også være aktuelt for familier med Huntingtons sykdom og andre alvorlige arvelige lidelser. Slike tester åpner for muligheten til å velge bort et foster som vil utvikle disse lidelsene etter fødsel. Dette kan stille den enkelte mor og far i et etisk dilemma.
Noen hevder at økt bruk av genetisk fosterdiagnostikk vil øke bruken av såkalt selektiv abort, og er
derfor negativt innstilt til dette. Andre vil mene at fosterdiagnostikk av alvorlige arvelige sykdommer er
en naturlig del av helsevesenets arbeid med å bekjempe sykdommer og lidelser for den enkelte, og de
er derved positivt innstilt. Uansett så vil bruken av gentester på foster være underlagt klare reguleringer
og begrensinger, slik at det bare kan utføres i helt bestemte tilfeller. Det er f.eks. forbudt å teste og
opplyse om fosterets kjønn, slik at foreldre kan "velge" kjønn til barnet, dvs. velge bort et kjønn. Unntatt
fra dette er tilfeller der det kan forekomme alvorlig kjønnsbundet sykdom.
Preimplantasjonsdiagnostikk (WIKI)
(PGD - preimplantation genetic diagnosis) vil si å genteste et befruktet egg før det implanteres i livmoren ved prøverørsbefruktning (in vitro fertilisering, IVF). I Norge har prøverørsbefruktning vært aktuelt for å avhjelpe barnløshet. Men det kan også bli aktuelt å bruke dette kombinert med PGD i tilfeller der det forekommer en alvorlige arvelig sykdom i familien. Man kan forsikre seg om at det befruktede egg ikke bærer gener som gjør at det vil utvikle sykdommen, før det settes inn i livmoren. Dette gjøres i Sverige, bl.a. for familier med henholdsvis cystisk fibrose, blødersyke og med Duchennes muskeldystrofi.
I Norge har PGD (fra 2003) bare vært tillatt ved "alvorlig arvelig kjønnsbundet sykdom uten behandlingsmuligheter". I 2004 ble spørsmålet aktualisert gjennom "Mehmetsaken". Mehmet var en gutt på 6 år, med blodsykdommern talassemi. Han kunne muligens bli bra hvis han fikk transplantert friske stamceller, men disse måtte ha hans egen vevstype. Dette kunne løses ved at Mehmet fikk en frisk bror eller søster som hadde samme vevstype. For å være sikker på dette, måtte barnet bli til ved IVF, og genene måtte sjekkes på forhånd ved PGD. Dette var ikke tillatt etter den norske loven. Men presse og opinion førte til at det ble gitt dispensasjon. I september 2005 mistet imidlertid Mehmets mor dette barnet før det var født.
Mehmetsaken fra forskning.no Fra GeniAlt
I 2006 ser det ut til at denne loven kan bli lempet, slik at det åpnes for "begrenset bruk av PGD". Samtidig ser det også ut til at forskning på befruktede egg også vil bli tillatt på "visse vilkår". Slik forskning er en nødvendighet for å kunne utføre IVF og PGD forsvarlig.
Innspill fra bioteknologinemnda om PGD og loven
Bioteknologiloven endres - kjør debatt! Fra forskning.no
Motstandere av PGD-testing og fosterdiagnostikk mener at dette vil gi os et "sorteringsssamfunn", altså
et samfunn der man kan sortere bort fostere med uønskede gener. Det negativt ladde ordet
"designbaby" har blitt brukt om barn som blir født etter en slik test. I debattramme 21.3 oppfordres du til
å vurdere disse spørsmålene selv.
Fra PULS / NRK Fra forskning.no
21.1.3 Kjønnstesting
Ved OL i 1968 ble det innført genetisk kjønnstesting av kvinner. Nå kan en slik test gjøres ved å påvise
ett bestemt gen på Y-kromosomet, som er avgjørende for den mannlige kjønnsutvikling, nemlig SRY -
sex determining region Y. Personer som er XY, vil bære SRY-genet, og derved normalt bli hankjønn.
Men det finnes personer som er XY, men som likevel blir kvinner. Dette kan skyldes at det foreligger en
mutasjon i SRY-genet. De vil derved ikke utviklede de mannlige kjønnstrekk, men bli kvinner. Ved
gentesting vil disse kvinnene bli klassifisert som menn, fordi man kan påvise SRY-genet. Det har blitt
reist mange innvendinger mot slik kjønnstesting. Dette skyldes usikkerhet i selve testen, og det rent
menneskelige rundt testingen. Ved ski-VM i Trondheim i 1997 ble dette stanset, og i Norge er det nå
lovforbud mot slik kjønnstesting.
Om kjønnstesting av idrettskvinner Fra Wikipedia
21.1.4 Hjemmetester i 5. uke
Pregnancystore.com http://www.dna-worldwide.com/Ancestral-Origin-Y-SNP-STR-DNA-test http://babygendermentor.com/default.php
En annen: Is it a BOY or a GIRL? - Find out after 6 weeks of conception
Det skal nå være mulig å utføre en kjønnstest av et foster allerede i 5. svangerskapsuke ved å bruke en vanlig blodprøve fra moren (fig. 21.1). En slik test baserer seg på at morens blod inneholder små mengder av cellefritt DNA fra fosteret. Dette kan brukes til å finne barnets kjønn. Dette DNA kan også brukes til gjøre andre DNA-tester, f.eks. av sykdomsgener. Slike kjønnstester er allerede kommersielt tilgjengelig i USA. Du kan kjøpe et kit på postordre, og utføre den hjemme på kjøkkenbenken. Testen kan gjøres så tidlig som i 5. uke. Grensen for selvbestemt abort i Norge er 12. uke. Derved kan man omgå alle begrensninger som lovverket setter med tanke på å velge barnets kjønn. Denne teknologien kan tenkes å bli utviklet videre til å gjelde flere egenskaper enn bare kjønn. Dette illustrerer godt at den teknologiske utviklingen ligger foran den etiske debatten og foran lovgiverne.
21.2 GENTERAPI / WIKI
Fosrkning.no: Hva er genterapi? Om genterapi legeTidsskriftet
Fra HGP Information Report on human gene therapy / UK Bion.no: Genterapi og vaksiner
21.2.1 Innledning
Visstnok ble det alt i 1981 gjort forsøk på genterapi av ß-thalassemi. Det ble tatt ut benmargceller, som fikk normale hemoglobingener, og disse cellene ble satt inn i pasienten igjen. Forsøket mislyktes, og pasientene (to kvinner) døde.
I 1990 startet de første tilfeller av offentlig godkjent genoverføring til mennesker i USA. Steven Rosenberg fikk godkjenning av RAC (Recombinant DNA Advisory Committee) til å gjennomføre genoverføring til lymfocytter hos fem pasienter med en dødelig form for hudkreft. Dette var ingen egentlig genterapi, men en utprøving av metodene.
Samme år, 1990, ble dette arbeidet videreført, og det ble utført virkelig genterapi. Dette gjaldt pasienter som led av alvorlig immunsvikt (SCID - Severe Combined Immuno-Deficiency WIKI pga. en mutasjon i ADA-genet (adenosin deaminase). Normalt vil dette medføre døden i 2-års alderen. Man tok ut T-lymfocytter fra pasientene. I disse cellene introduserte man normalt ADA-gen ved hjelp av en retrovirus vektor. Cellene ble så returnert til pasientene. Dette pågikk månedlig i over et år, og pasientene fikk en positiv utvikling.
Det er nå gjennomført vellykket genterapi av en rekke humane sykdommer på forsøksstadiet, dvs. på celler i kultur. Det er også godkjent protokoller for klinisk bruk på mennesker. Dette gjelder først og fremst kreft, men også hemofili B, Føllings sykdom (PKU), ß-thalassemi, 1-antitrypsinmangel, FH (LDL-reseptor), Cystisk Fibrose, Duchennes muskeldystrofi mfl. Genterapi mot Alzheimer er også aktuelt. I Norge er det gjennomført noen få tilfeller av genterapi som ledd i kreftbehandling. Også mot HIV og andre virusinfeksjoner forskes det på muligheten for genterapi, dvs. DNA/RNA-behandling.
I 2003 ble det meldt at 11 barn som ble behandlet med genterapi mot SCID i Paris, utviklet leukemi. Dette førte til at en del behandlingsprosedyrer med genterapi ble stanset. Dette viser at bruk av genterapi ikke er uproblematisk.
Bruk av genterapi i Norge er regulert av bioteknologilovens §6.
Oversikt
Definisjonen av begrepet genterapi varierer, og har endret seg noe over tid. I bioteknologiloven
defineres genterapi som "overføring av genetisk materiale til humane celler for medisinske formål eller
for å påvirke biologiske funksjoner." Denne formuleringen er meget åpen, og inkluderer derved flere
ulike typer av genterapi. Vi må skille mellom ulike situasjoner, ulike metoder og ulike strategier for genterapi:
Situasjoner. Vi kan ha genterapi på:
kjønnsceller (kimceller) og
kroppsceller (somatiske celler).
Metoder. Vi kan:
Forandre celler inne i kroppen (in vivo)
Forandre celler i kultur (ex vivo)
Vi kan føre DNA inn i celler ved hjelp av:
Virusbasert vektor
Liposomer
Reseptorer
Prosjektil
Mikroinjeksjon
Strategier. Vi kan:
Innføre en kopi av et friskt gen
Erstatte det syke gen
Innføre selvmordsgen
Hemme det syke gen
Lage DNA-vaksiner
21.2.2 Kjønnsceller/kroppsceller
Genterapi på kjønnsceller (kimceller)
Hvis man forandrer det genetiske innholdet i en kjønnscellelinje, så vil denne forandringen gå i arv (fig. 21.3A) til neste generasjon og framtidige generasjoner. Vi påvirker ikke bare ett individ, men hele slekten og arten. Dette kan gjøres, og er blitt gjort, med planter, med forsøksdyr og med husdyr. Når det gjelder dyr, så kan man injisere det ønskede DNA i en befruktet eggcelle og endre dens gener. Cellen kan deretter bli ført tilbake i dyrets livmor. Man kan evt. utføre "terapi" på eggceller, før befruktning. Hvis det genet som føres inn på denne måten kommer fra en annen art enn mottakeren, får vi transgene individer.
Når det gjelder mennesker er slik kjønnscelleterapi ikke aktuelt i dag, og det er forbudt etter
bioteknologiloven. Men dette spørsmålet vil helt sikkert dukke opp, og bli gjenstand for debatt. Vi kan
tenke oss at dette kan bli gjort for å eliminere alvorlige sykdomsgener fra kommende generasjoner. Da
vil spørsmålet om rasehygiene og menneskeverd bli reist med tyngde. Er det ønskelig å utrydde en
arvelige sykdom? Og hvordan kan vi være sikre på at denne muligheten bare blir brukt til å bekjempe
alvorlige sykdommer, og ikke til å "forbedre" mennesker?
Genterapi på kroppsceller
Når vi snakker om genterapi, er det først og fremst behandling av en bestemt pasient vi tenker på. Det
er da en eller annen type av kroppsceller (somatiske celler) som blir forandret, og det berører bare den
person som får terapi (fig. 21.3B). Den genetiske forandringen vil ikke gå i arv. Slik genterapi blir
allerede praktisert på flere sykdommer, og det kan gi håp for mange alvorlig syke mennesker. Det er få
etiske innvendinger mot dette. Men det er ennå stor usikkerhet knyttet til metodene og teknikkene, og
derved sikkerheten til pasientene.
21.2.3 In vivo/ex vivo
Man kan endre cellene til en pasient der de er, i kroppen, eller man kan ta ut celler og forandre dem
utenfor kroppen, og deretter føre dem tilbake (fig. 21.4)
Forandre celler i kultur (ex vivo)
Det vanligste er å ta ut celler fra pasienten, og dyrke disse i en cellekultur. Transformasjonen av cellene skjer her, og man kan selektere celler som er blitt forandret. Deretter kan disse cellene føres tilbake til pasienten.
Dette er gjort med en rekke ulike typer celler; f.eks. benmargceller (kreft), leverceller (Føllings sykdom),
myoblaster - dvs. stamceller for skjelett-muskulatur (Duchennes Muskel Dystrofi).
Forandre celler i kroppen (in vivo)
Det er mulig å føre det aktuelle DNA inn i pasientens celler i kroppen. Dette kan være aktuelt hvis det
ikke er mulig å dyrke de aktuelle cellene i kultur.
Gendoping
Vi kan tenke oss at man bruker de samme teknikkene som i genterapi for å øke yteevnen for
idrettsutøvere. Ett mulig mål for dette kan f.eks. være økt produksjon av EPO, for å få økt
oksygentransport (se kap. 8.10), eller kanskje veksthormon for rask muskelvekst. Denne geneterapien
kan skje lokalt, i det aktuelle organ eller muskel.
21.2.4 Metoder for genoverføring (fig. 21.5)
Se også kap. 17.3.2 om transfeksjon.
Virusvektorer
Den klassiske måten å innføre DNA i celle er å bruke en egnet vektor, og selektere transformerte celler ut fra en markør i vektoren. Som vektor for humane celler er det flere muligheter, men det mest vanlige har vært å bruke virusbaserte vektorer, spesielt retrovirusvektorer. Disse er ganske effektive i å transformere celler. Det gen som innføres med vektoren kan gjerne være cDNA. Man bruker en retrovirus der dens egne gener, gag, polog env er fjernet, og erstattet med vårt gen. Genet kan da bli integrert i vertcellens kromosom (om retrovirus, se kap. 24.2.2, fig. 24.1 og 24.2). Retrovirus infiserer bare celler under mitosen. En slik vektor kan derved bare brukes på celler i aktiv deling, og ikke f.eks muskelceller eller nerveceller. Disse vektorene vil også integrere sitt DNA på tilfeldige steder i vertcellens kromosom, noe som kan være uheldig.
Også adenovirus kan bli brukt til å innføre DNA ved genterapi. Disse krever ikke aktivt delende celler.
Det innførte DNA vil ikke bli integrert i kromosomet, vi har transient transfeksjon (se kap. 17.3).
Virkningen blir derfor kortvarig.
Andre måter
En retrovirusvektor vil kunne integrere det aktuelle gen i cellens kromosom. De rekombinante virusvektorer som brukes skal være slik at de ikke har noen mulighet for å replikere seg selv, og formere seg videre. Men likevel blir det av sikkerhetsgrunner arbeidet mye for å utvikle andre metoder for å innføre DNA. Blant disse er direktemikroinjeksjon og bombardement med DNA-dekkede metallkuler.
Man har også prøvet å pakke DNA inn i liposomer, dvs. små kuleformede micellelignende partikler. Disse er bygget opp på tilsvarende måte som en cellemembran, og kan lett fusjonere med en celle, slik at DNA kommer inn.
Nok en mulighet er å benytte såkalt reseptorformidlet genoverføring. Her blir DNA koblet sammen med et annet større molekyl, f.eks. proteinet transferrin. Visse celler har egne reseptorer som binder transferrin og fører det inn i cellen. På denne måten kan også DNA bli ført inn.
Man har også tatt i bruk antistoffer som bærer med seg DNA eller RNA in i en celle. Antistoffene reagerer som kjent med en reseptor på cellens overflate. Med denne metoden kan man klare å føre RNA inn i de spesielle cellene man ønsker, siden antistoffer kan "skreddersys" til bestemte celle, f.eks. kreftceller.
Det innførte DNA kan integreres i cellens kromosom, eller det kan eksistere som et selvstendig
DNA-molekyl, et såkalt episom.
21.2.5 Ulike strategier for genterapi
Vi skal se på fire strategier for genterapi (fig. 21.6)
1 Innføre kopi av et friskt gen
Hvis det dreier seg om en recessiv sykdom, så er pasienten homozygot for sykdomsgenet. Han
mangler det funksjonelle genet. Eksempel på dette kan være CF -genet eller hemoglobingenet. Man
kan da innføre en eller flere kopier av et normalt gen i pasienten, og det manglende genprodukt blir
laget. Det er dette som ble gjort med ADA-genet i eksemplet fra 1990.
2 Erstatte det syke gen
Hvis det er en dominant sykdom, så vil det syke genet lage et skadelig produkt. Det vil da ikke hjelpe å sette inn flere normale gener, vi må reparere det syke genet. Dette kan gjøres ved å innføre en vektor med friskt gen i en celle, slik at det friske genet erstatter det syke. Dette kan skje gjennom en form for rekombinasjon. Denne metoden har hittil vært lite aktuell.
Dette er den mest direkte form for genterapi: Vi reparerer det syke genet.
3 Innføre et selvmordsgen
Når det gjelder kreftceller, så vil disse dele seg uhemmet pga. manglende genetisk kontroll. Vanlig behandling har gått ut på å drepe disse cellene ved hjelp av stråling eller cellegift. Man kan også innføre et selvmordsgeni kreftcellene, som gjør at de dør. Et slikt gen koder for et protein som medfører cellens død.
Også andre former for indirekte genterapi er aktuelt. Man har innført gener som bedrer pasientens
immunforsvar. Dette har gjort pasienten i stand til å klare seg til tross for en genetisk defekt.
4 Hemme det syke gen
I mange tilfeller vil det syke genet produsere et produkt som direkte eller indirekte er skadelig. Dette kan gjelde for dominante sykdommer og det kan gjelde for mange kreftgener, onkogener. I stedet for å korrigere selve genet, kan man hindre genet i å bli uttrykt. Disse metodene ligger kanskje litt på siden av det som vanligvis oppfattes som genterapi. Vi forandrer nemlig ikke cellens genetiske innhold, men bare uttrykket av de eksisterende gener.
Denne strategien kan utføres på alle de tre nivåene: DNA-, RNA- eller proteinnivå. (se fig. 21.7):
Å hemme et gen på DNA-nivå
Det er laget korte oligonukleotider på 20 baser som kan binde seg til en vanlig DNA dobbelttråd, slik at det blir en trippelheliks (se fig. 21.8). Den nye oligotråden blir liggende i den store gropa på dobbelspiralen. Det blir dannet hydrogenbindinger mellom basene i dobbelspiralen og oligonukleotidet. Hydrogenbindingene inne i DNA-spiralen er blitt kalt Watson-Crick H-bindinger, mens de som binder den tredje tråden har fått navnetHoogsteen H-bindinger. Spesielt vil vi få Hoogsteen H-binding mellom A i dobbelspiralen og T i oligonukleotidet, samt G i dobbelspiralen og G i oligonukleotidet. Det er mulig å konstruere slike oligonukleotider som binder seg til spesifikke DNA-sekvenser og danner trippelheliks. En slik trippelheliks vil f.eks. kunne hindre transkripsjonsfaktorer i å binde seg, og derved hindre transkripsjon av et gen.
Slik trippelheliks terapi er foreløpig på utprøvingsstadiet, og det er mange problemer som må
overkommes. Det er bl.a. ikke lett å innføre slike oligonukleotider i en celle. Det er også store
begrensninger på hvilke DNA-sekvenser som kan bindes på denne måten, nemlig slike som bare
inneholder A og G.
PNA står for Peptide Nucleic Acid. Dette kan beskrives som en DNA-tråd, der sukker-fosfat-ryggraden er byttet ut med en peptidkjede (se fig. 21.9). Basene A, T, C og G er de samme, og en PNA-tråd kan på mange måter opptre som en DNA-tråd. To PNA-tråder kan danne en dobbelttråd, som får en liknende struktur som dobbelttrådet DNA. Vi kan også få en dobbelttråd av PNA-DNA eller PNA-RNA. Og endelig kan vi også få en trippelheliks av DNA og PNA. En slik trippelheliks vil bestå av to PNA-tråder og én DNA-tråd.
Slike PNA-DNA trippelhelikser kan antakelig bli utnyttet terapeutisk på tilsvarende måte som
DNA-trippelheliks. Man kan lage PNA-oligomerer som er meget spesifikke i sin DNA-binding. Denne
bindingen kan antakelig påvirke transkripsjonen av DNA-tråden både ved initieringen og elongeringen.
PNA-teknologien er også foreløpig i sin spede begynnelse.
Å hemme et gen på RNA-nivå
Antisense mRNA WIKI
Den mRNA-tråden som blir laget ved vanlig transkripsjon, kalles sense tråd. En RNA-tråd som er komplementær til denne kalles antisense tråd. Antisense mRNA vil derved hybridisere til mRNA. Hvis denne bindingen er rimelig sterk, så vil dette mRNA ikke kunne brukes ved translasjon. Derved blir heller ikke genproduktet laget.
Det er flere måter å lage slike antisense-RNA-tråder på. Hvis det aktuelle gen (DNA) er klonet i en
moderne vektor, kan man velge hvilken vei genet skal leses, enten forlengs (sense) eller baklengs
(antisense), fordi vektoren har ulike promotere på de to kantene av genet (se fig. 16.8). Ved å velge
transkripsjon baklengs, får man laget antisense mRNA. Men det er kanskje mer aktuelt å lage
syntetiske antisense oligonukleotider, med den ønskede sekvens. Disse kan være av RNA-type, men
også antisense PNA er en mulighet.
Antisense DNA
RNA har kort levetid, slik at antisense RNA stadig må tilføres en celle for å virke. Alternativt kan man da innføre et antisense gen i disse cellene. Dette er det samme gen som cellen har fra før, men det blir lest motsatt vei, og lager antisense mRNA. Derved vil cellen selv lage både mRNA og antisense mRNA.
Ribozymer er små RNA-molekyler som kan binde seg til andre RNA-molekyler og klippe over disse. Man har klart å lage en rekke slike små syntetiske RNA-molekyler som kan binde seg til en bestemt RNA-sekvens i en celle, og kutte over dette RNA (bryte en fosfoesterbinding). Navnet ribozym kommer av ribo + enzym, dvs. RNA som virker som enzym.
Ribozymene kan lages slik at de binder seg spesifikt til ett bestemt mRNA i en celle, og kutter over
dette. Derved vil dette mRNA bli inaktivert, og cellen vil ikke lage det proteinprodukt som dette mRNA
kodet for. På denne måten kan vi hindre ett bestemt genprodukt i å bli laget. Vi kan tenke oss at
ribozymer blir tilført en pasient for å hindre at ett bestemt gen blir uttrykt. Ribozymer kan bli gitt som et
preparat i tablettform, eller det kan bli injisert lokalt i f.eks. kreftceller. Foreløpig er dette kun på et tidlig forøksstadium.
RNAi
Vi har allerede omtalt siRNA, snRNA og RNAi , og hvordan slikt RNA kan skru av gener i cellen (kap. 8.8.5). Dette kan også utnyttes til en form for genterapi. Siden RNAi ikke fjerner et sykt gen, men bare demper det, kalles det ofte gene knockdown (ikke knockout). Det kalles også gene silencing.
Det er nå laget RNAi til en rekke humane gener, og kan brukes til å slå disse av eller ned.
Man har nå klart å bruke RNAi mot HIV-virus, altså hindre viruset i å bli uttrykt - i mus. I 2005 ble det
satt i gang kliniske RNAi-forsøk med HIV-pasienter.
Å inhibere et gen på proteinnivå
Aptamere
Vi har lært at et mange proteiner kan binde seg til bestemte DNA-sekvenser. Man kan gå motsatt vei,
og konstruere små oligonukleotider som binder seg til bestemte proteiner. Disse proteinene kan da bli
hemmet i sin aktivitet. For å hemme ett bestemt protein, kan man lage tusenvis av forskjellige
oligonukleotider, og finne ett som binder dette proteinet. En slik oligomer kalles en adaptamer (adapt =
tilpasse) eller bare aptamer.
21.2.6. DNA-vaksiner
En DNA-vaksine tar ikke sikte på å påvirke pasientens gener eller genuttrykk. Vaksinen skal, som
vaksiner ellers, få kroppen til å lage antistoffer mot en bestemt uønsket mikrobe e.l. Tradisjonelt har
vaksinen bestått av mikroben selv i en ufarlig form eller deler av den. En DNA-vaksine kan være et gen
fra mikroben. Dette må føres inn i målceller hos pasienten og bli uttrykt der. Da lager kroppen
antistoffer mot dette genproduktet fra mikroben. Dette antistoffet vil da (forhåpentligvis) være virksomt
også mot mikroben selv, når denne evt. kommer inn i kroppen.
22. GEN- OG BIOTEKNOLOGI Til bokens kapitteloversikt
Dette kapittelet tar opp bruk av genteknologi innen industri og landbruk. Bruk av genteknologi innen
klinisk medisin ble tatt opp i kap. 18 (analysemetoder) og 21 (gentester og genterapi).
Bioteknologi er ikke noe nytt. Produksjon av surmelk og øl er gamle bioteknologiske industriprosesser
som baserer seg på henholdsvis bakterier og gjærsopp. Bioteknologinemnda definerer begrepene slik:
All teknologi som bruker mikroorganismer, plante- og dyreceller eller deler av disse til å fremstille eller
modifisere produkter.
Genteknologi
Teknikker som tillater at arvestoffet isoleres, karakteriseres, tas opp i levende celler, mangfoldiggjøres
og uttrykkes. Med genteknologi kan man overføre gener på tvers av biologiske artsgrenser. Begrepet
benyttes ofte synonymt med "moderne bioteknologi".
I 1974 foreslo Nobelprisvinneren Paul Berg ved Stanford University at genforskere skulle ta en tenkepause (moratorium). Man hadde akkurat tatt i bruk rekombinant DNA-teknikk, og hadde klart å overføre DNA fra et virus til E. coli. Berg og andre mente at man ikke visste nok om konsekvensene, og at dette burde utredes nærmere først.
I 1975 ble det holdt en konferanse i Asimolar i California, der ledende forskere innen molekylær genetikk deltok. Her ble det vedtatt en rekke anbefalinger som skulle sikre forsvarlig bruk av de nye DNA-teknikkene (Asimolar recommendations). I 1976 ble disse retningslinjene gjort gjeldende for offentlig finansiert forskning i USA av National Institute of Health (NIH), og det videre arbeid med dette skulle administreres av Recombinant DNA Advisory Committee (RAC).
Dette illustrerer at genteknologien kan gi både muligheter og problemer. Noen av disse blir berørt i det følgende. Bioteknologinemnda i Norge utgir tidsskriftet Gen-i-Alt, som tar opp slike aktuelle spørsmål. Dette anbefales for interesserte.
Vi har omtalt hvordan vi kan overføre fremmede gener til E. coli og få disse genene uttrykt. Cellene har
fått nye egenskaper. Vi kan bruke disse cellene til å masseprodusere et proteinprodukt eller et annet
produkt. Vi kaller dette rekombinant DNA-teknologi. Slik genoverføring og genekspresjon av fremmede
gener kan vi få til både i E. Coli og i eukaryote celler, også mammalske (se kap. 17).
22.1.1 Insulin og andre proteiner
Fra Stanford om rekombinant insulin Novo Nordisk Felleskatologen (humulin)
Bion.no: Bioteknologisk industri Rekombinante proteiner, fra RPI
Det best kjente eksempel på et rekombinant protein til medisinsk bruk er nok insulin. Genteknologisk framstilt insulin kom på markedet i 1982. Man brukte cDNA fra pankreasceller (bukspyttkjertel), som ble klonet i bakterier. Insulin er et lite protein på bare 51 aminosyrer som produseres i bukspyttkjertelen. Tidligere måtte diabetikere bruke insulin fra gris, noe som var dyrt og vanskelig å framstille. Griseinsulin skiller seg fra humant insulin i noen få aminosyrer. Ved hjelp av genteknologi kan man nå framstille humant insulin, og det kan skje i større mengder og til en lavere pris enn før. Norge importerer slikt insulin fra Danmark (firmaet Novo Nordisk), der man er kommet svært langt innen denne type bioteknologisk industri.
Noen andre eksempler på rekombinante proteinprodukter til medisinsk bruk fra genmodifiserte
bakterier er:
Blodfaktor VIII (mot Hemofili A)
Veksthormon
Erythropoietin EPO (mot anemi)
Monoklonale antistoffer
22.1.2 DNA-vaksiner (WIKI)
En vaksine har tradisjonelt bestått av en drept eller modifisert utgave av den smittsomme agent, f.eks. et virus. Dette setter i gang kroppens immunforsvar, dvs. produksjon av antistoffer. Som vaksine kan det være nok å bruke bare en bestanddel av viruset, f.eks. et kappeprotein. Dette proteinet er kodet av et virusgen. Vi kan da "låne" dette genet fra viruset, klone det inn i en baktericelle på vanlig måte, og bakterien produserer kappeproteinet. Dette vil fungere som en vaksine mot viruset. Det er laget mange slike rekombinante vaksiner, både mot virus, bakterier og parasitter, her er noen få eksempler.
•Virussykdommer: Hepatitt A og B, Cytomegalovirus, Herpes simplex, Rabies, HIV, laksevirus.
•Bakteriesykdommer: Kolera (Vibrio), dysenteri (Shigella), tuberkulose, gonorre (Gonorrhea).
•Parasitter: Malaria (Plasmodium), sovesyke (Trypanosoma).
22.1.3 Enzymer
Vaskepulver
Industriell produksjon fra genspleisede organismer gjelder slett ikke bare medisinske preparater. Et
godt eksempel på dette er enzymene som finnes i vaskepulver. Dette kan være lipaser som fjerner
fettflekker, proteaser som bryter ned og fjerner proteinflekker m.m. Disse enzymene blir stadig
forbedret ved hjelp av genteknologi. Det kan nevnes at man har forsket fram enzymer som er aktive
ved relativt lave temperaturer. Dette betyr at det er mulig å vaske effektivt med vann som er 20-30 C
lavere enn ellers. Dette vil kunne gi en enorm energisparing hvis man tenker globalt.
Papirbleking
I Norge ble det i 1996 godkjent prøveproduksjon av enzymet xylanase fra genmodifiserte bakterier. Dette kan brukes til bleking av papir. Det var firmaet Norferm i Stavanger som sto bak søknaden.
Enzymet xylanase (WIKI) produseres normalt av en sopp som finnes i magen på drøvtyggere. Genet
som koder for xylanase ble flyttet fra denne soppen til E. coli. Derved fikk man E. coli til å produsere
xylanase (se fig. 22.1). Dette enzymet bryter ned stoffet xylan, som finnes i plantenes cellevegg. Xylan
misfarger tremasse og derved det papiret som produseres. For å bleke papiret brukes normalt bl.a. det
giftige stoffet klor. Produsentene av xylanase mener at papirindustrien kan redusere bruken av klor og
andre giftige blekemidler ved å ta i bruk xylanase.
Sikkerhet
Et lukket anlegg der man dyrker bakterier blir kalt et innesluttet bruk. Det er strenge krav for
godkjenning av produksjon ved hjelp av genmodifiserte organismer i innesluttet bruk. Det skal bl.a.
dokumenteres at faren for at disse organismene slipper ut i naturen er minimale, og de skal dessuten
ikke kunne klare seg ute i naturen. Alt avfall skal destrueres slik at organismene eller genetisk
materiale fra dem ikke kan slippe ut. Innvendinger mot det omtalte anlegget gikk først og fremst ut på
at bakteriene som har fått xylanasegenet også har mottatt et antibiotikaresistensgen (mot tetracyklin).
Anlegget ble likevel godkjent fordi man mente at sikkerheten rundt dette anlegget var meget godt
ivaretatt.
22.1.4 Kjemiske produkter
Vi kan også tilføre bakterier gener som gjør at de lager kjemiske stoffer som vi kan isolere. Dette kan være mye mer komplisert enn å få dem til å lage ett rekombinant protein. For å lage et kjemisk stoff trenger bakterier normalt en rekke nye enzymer, altså en rekke nye gener.
Vi kan f.eks. få bakterien til å lage store mengder av en bestemt aminosyre. De ulike aminosyrene har stor anvendelse, som smaksforsterkere (Asp, Ala), innen kosmetikk (Ser), til medisinsk bruk (Val, Ile, Leu, Asn, Arg), som antioksidanter (Trp, Cys) m.m.
Man har også klart å produsere antibiotika i bakterier (det kan høres selvmotsigende ut). Biosyntesen
av antibiotika (naturlig i muggsopp) krever en lang rekke gener, men man har klart å overføre disse og
uttrykke dem i bakterier. I tillegg er det da mulig å endre genene noe (mutagenese) slik at man får laget
nye varianter av de antibiotiske stoffene.
22.1.5 Bioremediering
Bakterier er med på å bryte ned avfallsstoffer i naturen. I renseanlegg utnytter vi dem til dette. Vi kan
endre bakteriene slik at denne evnen til nedbryting blir enda bedre og mer nyttig. Vi kan få bakteriene til
å omdanne unyttige avfallsstoffer til nyttige produkter. Vi kan derved også utnytte biomassen i avfall
bedre. JordbakterienPseudomonas som også normalt har stor nedbrytende evne, kan utnyttes til dette.
22.1.6 Nei i Norge?
I 1997 ble det også behandlet en søknad fra Norferm om tillatelse til å dyrke genmodifiserte E. coli-bakterier som produserer store mengder av aminosyren tryptofan. Bioteknologinemnda stilte seg positiv til dette. Stortinget var imidlertid mer skeptisk, og gjorde et vedtak 18. juni.1997 som ba Regjeringen om å forby "produksjon, import og omsetnining av alle genmanipulerte produkter som inneholder gener som koder for antibiotikaresistens og å arbeide for internasjonale forbud på dette området". Om produksjonen av tryptofan virkelig falt inn under denne formuleringen overlater jeg til leseren å vurdere.
I Danmark er denne industrien, som kombinerer genteknologi og bioteknologi, allerede meget stor. Insulin som brukes i Norge blir importert fra Danmark, og det er produsert med de samme teknikker som ikke blir tillatt i Norge. Mange vil kalle dette dobbeltmoral. I Danmark blir til og med det destruerte avfallet fra produksjonen brukt som gjødsel i landbruket.
Dette lille besøket hos Storting og Regjering i Norge kan illustrere situasjonen for industriell genteknologi i Norge. Firmaet Norferm ble for øvrig nedlagt 1. mars 2006.
Også folkeopinionen har vært negativ til moderne bioteknologi. Gjennom hele 1990-tallet økte befolkningens skepsis. I 1999 var 36 prosent av nordmennene pessimister mens 31 prosent var optimister. Nå kan dette være i ferd med å snu. I 2002 var det 48 prosent som var optimister på vegne av bioteknologi. Se også kap. 19.5.1 om FUGE m.m.
(ny “positiv” trend i undersøkelse fra 2006 se side 4)
Den nye optimismen har faktisk medført en viss vekst i bioteknologibransjen i Norge. I 2004 fantes det
ca. 110 firmaer, og nesten halvparten av disse ble grunnlagt etter 1999. Figur 22.3 viser antall og type
selskaper innen denne bransjen i 2004.
Norske bioteknologiselskap (Ovesikt fra Bion.no)
Affitech AS Alpharma ASA A-viral Axis-Shield ASA
BioMar Bionor AS Biosense Laboratories A/S Biosentrum
Biotec ASA Borregaard Chiron Colifast
Diatec AS Dynal Biotech ASA Genovision AS Genpoint A/S
Intervet Norbio Medi-cult Mison AS Natural
Norchip Norferm Normed Nutri Pharma
Optoflow AS Photocure ASA PCI Biotech Plasmacute AS
Polyphenols Laboratories AS Telelab AS
WIKI: Genetically modified food) WIKI: Transgenic plants
Norge: Bion.no: hefte om GMO Bion.no : Hefte om genmodifisert mat
EU EU-kommisjonen; info om søknader etc. Om Food Safety
USA: FDA
Skeptikekere: Actiobioscience SV-lenker om genteknologi etc.
22.2.1 Genmodifisering
I forrige punkt omtalte vi bakterier som får innsatt humant DNA, og som kan uttrykke dette. Vi kan også
sette inn nye gener i plante- eller dyreceller.
GMO
genmodifiserte organismer, er en felles betegnelse som brukes om organismer som har fått endret sitt genetiske innhold. Noen foretrekker å bruke ordet genmanipulert i stedet for genmodifisert. Å manipulere er et negativt ladet ord, mens modifisere høres mer nøytralt ut. Valg av språkbruk gjenspeiler kanskje en holdning? Når man har gitt en organisme ekstra genmateriale, sier vi også at vi har en transgen organisme. En mus som bærer et gen fra rotte er transgen. En maisplante med et bakteriegen som gjør at den tåler sprøytemidler er transgen, ogE. coli med et soppgen for xylanase eller et humant gen for insulin er transgen.
Planter kan lett formere seg ukjønnet, slik at en plantedel eller noen planteceller kan gi opphav til en
helt ny plante. For å genmodifisere en plante behøver man derved ikke å forandre kjønnsceller. Man
kan dyrke celler i kultur og foreta den genetiske endringen der. Deretter kan de genetisk endrede
cellene gi opphav til nye genmodifiserte planter.
22.2.2 Genmat
Vi er inne i en eksplosiv utvikling når det gjelder utvikling av genmodifiserte planter (GMP). Dette gjelder særlig grønnsaker og andre matplanter. I den offentlige debatt brukes begrepet genmat om mat som kommer fra slike planter. Dette ordet er enkelt og greit, men kan kanskje gi litt gale assosiasjoner. Alle planter og dyr som vi spiser inneholder jo gener, og mye av den bearbeidede "genmaten" inneholder ikke gener. Vi skal ta med noen eksempler på genmodifiserte planter, og deretter se litt på noen spørsmål og problemer knyttet til dette.
I USA står genmodifiserte planter for en stor del av landbruksproduksjonen, f.eks. mer enn 50 % av soyabønner og bomull og 25 % av mais (i 2002). Det er også gitt tillatelser til utsetting og kommersiell produksjon av rekke andre genmodifiserte landbruksplanter, f.eks. tomater, poteter, squash, oljeraps, papaya, tobakk, hvete og ris. Foruten USA er det foreløpig bare Argentina og Canada som har en betydelig andel av GMP i sitt landbruk.
I Norge er skepsisen til genmat ganske stor, både i den alminnelige opinion og blant mange politikere.
Denne skepsisen gjelder ikke bare genmat, men bioteknologi generelt. I en undersøkelse i 1996 trodde
bare 34 % at bioteknologien vil forbedre våre liv i framtida. I EU var det 47 %. Den negative holdningen
i Norge kan være uttrykk for en sunn skepsis mot alt som kan ødelegge naturen, men det kan også
være resultat av uvitenhet. 50 % av alle nordmenn tror f.eks. at vi kan få endret våre egne gener ved å
spise mat fra genmodifiserte organismer.
Når det gjelder hvilken genmodifisering som gjøres av matplanter, kan vi skille mellom to hovedtyper:
•Endring av matens kvalitet (f.eks. sen modning av tomat).
•Endring av plantens vekstmulighet (f.eks. at den tåler sprøytemidler).
Når det gjelder hva slags mat det gjelder, kan vi skille mellom tre typer:
•Maten er genmodifiserte planter (tomat).
•Maten inneholder genmodifiserte planter (tørkede tomater i en pizza).
•Maten er framstilt av genmodifiserte planter (soyaolje).
22.2.3 Noen eksempler
Tabell 22.1 viser noen genmodifiserte planter som er godkjent i USA eller EU. Vi skal gjennomgå noe
av de mest aktuelle eksemplene.
Tomaten Flavr Savr (WIKI)
Den første genmodifiserte planten til matbruk var tomaten Flavr Savr i 1993. Disse tomatene holder seg faste og fine i lengre tid etter modning. Dette skyldes at genet for polygalakturonase (PG) er blitt hemmet. PG-genet koder for et enzym som bryter ned pektin i celleveggene, noe som bidrar til at tomatene modnes og mister sin fasthet. Tomatplanten Flavr Savr har fått satt inn et ekstra kopi av PG-genet, men i motsatt retning. Det blir da laget antisense mRNA. Antisense mRNA vil binde seg til det normale sense mRNA, som derved blir inaktivert. Resultatet er 99 % reduksjon i produksjonen av PG-enzymet. Dette gjør at tomatene holder seg faste mye lengre etter høsting, og de kan derved modnes på planten.
Det var selskapet Calgene i USA som søkte om godkjenning av tomaten Flavr Savr, og dette var den aller første søknaden om å ta i bruk en genmodifisert matplante. Søknaden ble behandlet av FDA, Federal Drug Administration. FDA hadde etablert retningslinjer for slik vurdering i 1992. Flavr Savr ble gjenstand for en meget grundig konsekvens- og sikkerhetsanalyse, som resulterte i en godkjenning. Tomaten var tilgjengelig på et testmarked i USA fra 1994, og det var planen at den skulle bli tilgjengelig for de aller fleste forbrukere. Men senere ble Flavr Savr-tomatene trukket tilbake fra markedet. De holdt seg ikke så bra likevel, og dessuten hadde tomatplantene andre svakheter.
Det er laget flere typer genmodifiserte tomater. En type har fått innsatt genet for enzymet kitinase, noe
som holder soppangrep unna, noe som også gir bedret holdbarhet. Andre genetiske inngrep gjør at
tomatene i mye større grad kan modnes etter høsting, og derved høstes meget tidlig. En fjerde variant
er tomater som tåler kulde bedre, og som derved kan holdes lagret lengre.
Insektresistens
Planter utsettes for angrep fra insekter, sopp osv. Av denne grunn bruker landbruket store mengder giftige sprøytemidler, biocider. Disse giftstoffene sprer seg overalt i naturen, og kan også skade andre naturlige organismer. Man har klart å gi kulturplanter gener som gjør at de selv lager giftstoff mot skadeinsekter. Dette gjelder f.eks. tomat-, tobakk- og bomullsplanter. Disse plantene behøver man derfor ikke sprøyte.
På den annen side kan man frykte at planter med slike egenskaper kan spre seg, eller spre genene sine til viltvoksende slektninger, slik at vi får insektresistente planter ute i naturen.
Det meste utbredte eksempel på slike genmodifiserte planter er såkalt "bt-corn", mais som er motstandsdyktig mot skadeinsekter. De har fått satt inn et gen (Cry1A) fra bakterien Bacillus thuringiensis (Bt) (W) som koder for insektgiften bt-toksin. USA står for 40 % av verdens maisproduksjon, og ca. 25 % av maisen fra USA er "bt-mais" (W) (i 2002). Amerikanske myndigheter rapporterer at avlingene har økt, og bruken av insektmidler har gått noe ned etter introduksjonen av genmodifisert mais.
I USA er det flere potetsorter som er gjort resistente mot coloradobiller.
Herbicidtoleranse I USA er nå 55 % av soyabønnene som dyrkes såkalt "Roundup-Ready Soybeans". De har fått innsatt et gen som gjør at de tåler ugrasmiddelet glyfosat (finnes i sprøytemiddelet Roundup). Glyfosat hemmer et enzym i plantene som er nødvendig for å lage noen av de livsnødvendige aminosyrene. Glyfosat dreper derved de aller fleste planter. Det er ufarlig for mennesker, og det brytes raskt ned i naturen.
Fra 1996 til 2000 økte andelen av slik soya i amerikansk landbruk fra under 5 % til 54 %. USA er den største soyaprodusent i verden, og står for nesten halvparten av verdensproduksjonen.
Hvilken virkning vil glyfosattolerante soyaplanter ha på bruken av sprøytemidler? Normalt sprøyter man gjerne åkeren med kraftige giftmidler før utplanting av matplantene. Hvis soyaplantene selv tåler sprøytemiddelet, kan man derimot vente med å sprøyte til ugraset evt. dukker opp. Derved kan kanskje bruken av giften reduseres. På den annen side kan det tenkes at disse plantene vil føre til økt bruk av ugrasmidler (herbicider), fordi man kan sprøyte åkrene når man vil, selv etter planting. Tall fra USA tyder på at bruken av ugrasmidler totalt i soyaåkre har gått litt ned fra 1995 til 1999. Bruken av glyfosat har gått opp, men andre ugrasmidler har gått ned. Produksjonen har gått opp.
Om Roundup-ready sya i Europa og Norge - Gen-i-Alt 1/2007 - fra Bioiteknologinemnda
Matkvalitet
Blant de viktigste næringsstoffene som plantene gir oss er proteiner. Vi tar opp i oss de aminosyrene som planteproteinene er bygget opp av. Noen aminosyrer er viktigere enn andre i kostholdet, og noen er det ofte for lite av. Ved å forandre på kodonene i enkelte gener, kan man få planter til å lage proteiner som er rike på bestemte verdifulle aminosyrer, f.eks. tryptofan eller lysin.
Andre eksempler på planter med endret næringsinnhold er ris med økt innhold av A-vitamin eller jern
og planter som selv lager og inneholder vaksiner.
•Nitrogenfikserende planter WIKI: Nitrogenfixation
Planter klarer ikke selv å gjøre om luftas nitrogen til organisk bundet nitrogen. Store mengder N-holdig
kunstgjødsel blir derfor tilsatt jorda. Enkelte bakterier kan derimot binde luftas N2 og gjøre det om til
organisk N, dette kalles nitrogenfiksering. Hvis genene (det kan være mange gener) for denne
nitrogenfikseringen kan settes inn i planter, kan man kanskje få planter som henter sitt nitrogen fra
lufta, og som ikke trenger så mye kunstgjødsel.
22.2.4 Noen spørsmål
Utsetting, økologi
Det er stor usikkerhet når det gjelder risikoen ved utsetting av genmodifiserte planter. Skeptikerne er redd for at de utsatte plantene vil spre seg på en måte som forstyrrer den økologiske balanse. Man frykter at de kan krysse seg med viltvoksende slektninger, og deved spre de nye genene på denne måten. Andre hevder at faren for dette er liten. Det hevdes også at menneskene til alle tider har endret gener på nytteplanter gjennom foredling, og satt ut nye planter i fremmede miljøer.
Det er enighet om å stille strenge krav ved utsetting av genmodifiserte organismer. I Norge skal dette reguleres av genteknologiloven som ble vedtatt i 1993. Det skal bl.a. legges fram en grundig konsekvensutredning før utsetting blir tillatt. Utsetting skal alltid være godkjent av myndighetene.
I de opprinnelige retningslinjer fra RAC i USA fra 1976 var det forbud mot all utsetning av
genmodifiserte organismer. Men i dag er USA det land som har gått lengst i å tillate dette. Det er nå
flere hundre feltforsøk med utsetting, og de fleste landbruksplanter er etter hvert aktuelle for
genmodifisering. Amerikanske myndigheter mener at erfaringene er gode.
Antibiotikaresistens
I EU har det vært strid om godkjenningen av glyfosattolerant mais, fordi denne planten også bar et amp-r gen. Plantene ble i første omgang ikke godkjent for utsetting. Ampicillin er et mye benyttet antibiotikum. Mest brukt innen kloningsarbeid er imidlertid resistensgenet mot kanamycin, og dette er lite brukt innen medisin.
Antibiotikaresistens skyldes et gen i den vektoren som brukes ved genoverføringen til planten. Dette
genet er en markør for å kunne selektere de genmodifiserte plantecellene fra andre celler. Genene
(DNA) i maten brytes ned i tarmen, og plantegenene kan da i hvert fall ikke tas opp i våre celler via blod
e.l. Men kanskje noe DNA i tarmen blir ufullstendig brutt ned, slik at et helt gen kan overleve og komme
i kontakt med tarmens bakterieflora? Kan bakterier i tarmen ta opp i seg dette genet og bli resistente?
Dette ble grundig utredet da tomaten Flavr Savr ble godkjent av FDA i 1993. Det viste seg at et slikt
opptak kan skje med omkring én av noen 100000 bakterier. Minst like mange tarmbakterier blir
imidlertid resistente spontant, ved mutasjoner. Men til tross for at risikoen er liten, er man svært opptatt
av å begrense bruken av slike antibiotikaresistensgener. Man ønsker da å utvikle vektorer med andre
seleksjonsmarkører. Dette er også i ferd med å skje. EU har vedtatt et direktiv som krever at utsatte
GMP fra 2004 ikke skal inneholde gener for antibiotikaresistens.
Trenger vi dette?
Genmat er et faktum i USA. Det sikkerhetsmessige blir vurdert og ivaretatt av de offentlige kontrollinstansene (FDA). Men deretter er det markedet som avgjør om dette blir produsert og solgt. Norge er et land der markedskreftene ikke er fullt så uhemmet som i USA. Den norske genteknologiloven sier at det skal legges vekt på om utsettingen av slike planter har samfunnsmessig nytteverdi og om det er egnet til å fremme en bærekraftig utvikling. Dette kommer i tillegg til den sikkerhetsmessige vurderingen.
Et lekfolkspanel som Bioteknologinemnda organiserte i 1996 uttalte at det ikke er noe behov for
genmat i Norge.
Den fattige verden
Genmodifiserte planter kan ganske sikkert gi både større avlinger og bedre kvalitet på enkelte matvarer
enn før. Det er mange som har tro på at dette kan bidra til å avhjelpe mangelen på mat i fattige land.
Men retten til å bruke disse plantene kan bli styrt av de selskapene som har utviklet dem. Fattige
bønder og fattige land som vil bruke slike planter kan derved bli enda mer avhengig av mektige
internasjonale selskaper som sitter med rettighetene.
Nei i Norge
I Norge var det planer om utsetting av genmodifiserte poteter i 1990 (ScanPlant), men dette ble i første omgang stanset etter henstilling fra myndighetene. I 1992 ble det igangsatt et forsøk med utsetting av potetplanter.Bioteknologinemnda avgir uttalelser om saker som sorterer under genteknologiloven. I de siste årene er det sagt nei til flere søknader om markedsføring av genmodifiserte matplanter, f.eks:
Mais som var glyfosatresistent og insektresistent
Oljeraps som var glyfosatresistent.
Potet med endret innhold av stivelse (100 % amylopektin).
Når det gjelder potetplanten, ble avslaget begrunnet med at den hadde mottatt et markørgen for antibiotikaresistens. De andre to plantene hadde imidlertid ikke det.
Åkrer med oljeraps blir gjerne sprøytet med det meget giftige herbicidet propaklor før spiring av oljerapsen. Begrunnelsen for å bruke glyfosatresistente planter er at man da ikke behøver å gjøre dette. Nemnda var imidlertid usikker på om disse genmodifiserte plantene vil føre til redusert bruk av sprøytemidler.
Begrunnelsen for avslaget er ellers frykten for at oljerapsens gener for glyfosatresistens kan bli spredd til dens viltvoksende slektninger (åkerkål) slik at disse også blir resistente.
Interesserte henvises ellers til hjemmesidene til Bioteknologinemnda. Her kan man finne det norske
lovverket, uttalelser fra nemnda, samt linker til annen informasjon.
22.2.5 Merking
SV-lenker om genteknologi etc.
Det foregår også en debatt om merking av produkter fra genmodifiserte organismer, GMO. Hvis sukkeret som du kjøper er laget fra genmodifiserte sukkerroer, skal dette opplyses på pakningen? Hvis margarinen er laget av soyaolje som delvis kommer fra genmodifiserte soyaplanter, skal dette opplyses? Hva skal det i så fall opplyses om?
I EU er det vedtatt retningslinjer (i 2001) om merking. Man må merke mat som består av eller
inneholdergenmodifiserte organismer (GMO). Grensen er satt ved 1 % slikt innhold. Man behøver
derimot ikke merke mat som er framstilt fra GMO, f.eks. soyaolje eller sukker, hvis produktet ikke er
påviselig ulikt det som framstilles fra ikke-GMO. I Norge er forskriftene slik at også slik mat (framstilt fra
GMO, selv om det ikke er noen forskjell) skal merkes. Her kan det imidlertid skje endringer i
regelverket, også i EU.
Soyaolje
Et av de første produktene som kan være aktuelt for salg i Norge er soyaolje fra genmodifiserte soyabønneplanter. I USA er det nå vanlig med genmodifiserte soyaplanter som er glyfosattolerante. USA står for ca. 50 % av verdens produksjon av soyaolje. I en skipslast med soyabønner fra USA vil normalt en viss % stamme fra genmodifiserte planter. Norge har delvis løst dette problemet ved å importere soyabønner fra f.eks. Canada. Hvis vi må importere soya fra USA, er det vanskelig å unngå genmodifiserte bønner. Men også Canada og andre store soyaproduserende land tar etter hvert i bruk "roundup ready" soya.
Det er ikke noen påvisbar forskjell på soyaolje fra genmodifiserte planter og andre planter. Hvorfor skal
den da merkes? Som forbrukere ønsker vi informasjon som berører matens kvalitet. Ønsker vi også
informasjon om dens produksjonsmåte, opprinnelse etc, selv om det ikke berører innhold og kvalitet?
For å gjøre dette litt mer komplisert, kan det nevnes at soyaolje inngår som en bestanddel i svært
mange matvarer, f.eks: brød, kjeks, majones, dressinger, potetgull, supper, godteri, iskrem, margarin
m.m.
22.2.6 Kontroll
Hvis Norge ønsker et forbud mot "genmat" eller strenge krav om merking, må det være mulig å kontrollere om maten stammer fra genmodifiserte planter (GMP) Derfor er dette arbeidet nå blitt intensivert.
Det DNA som er satt inn i en GMP inneholder både en kodende sekvens (genet), en plantepromoter og en planteterminator. Samme promoter kan brukes for flere ulike gener, i ulike planter. Og samme gen kan være satt inn i flere ulike plantesorter. Hvis vi f.eks. påviser bt-genet i en sammensatt produkt, så vet vi ikke om dette kommer fra en maisplante eller fra rapsplante. Dette er et problem hvis vi ønsker å påvise en bestemt GMP.
For å spore opp innsatt gen (evt. promoter/terminator) må vi kjenne sekvensen av dette, f.eks. genet for glyfosatresistens i soya eller bt-toksin i mais. Da kan vi lage spesifikke PCR-primere og prober for genet, og utføre PCR på den matvaren vi skal undersøke, f.eks. sanntids-PCR (realtime PCR). Et PCR-produkt vil da bekrefte at maten inneholder genet, dvs. at den er genmodifisert.
Men det er ikke nok å påvise at genet finnes, man må også finne ut hvor stor del av produktet som kommer fra GMP, 0,1 % eller 10 %? I Norge ønsker man f.eks. å ha krav om merking av mat som inneholder mer enn1 % råvarer som stammer fra GMP. Dette er i samsvar med EU sin grense.
Man ønsker derved å bestemme hvor stor andel av en matvare som stammer fra GMP. Dette er ingen enkel oppgave. Det krever en kvantitativ PCR, en teknikk der man kan bestemme mengden av det innsatte DNA i prøven i forhold til totalt DNA fra samme plante. Her brukes de moderne PCR-teknikker, sanntids-PCR med kontinuerlig kvantitativ deteksjon av PCR-produkt med fluorescerende DNA-bindende stoffer (kap. 18.6). Her står man overfor store metodiske utfordringer. Veterinærinstituttet i Norge har utviklet gode metoder for å påvise innhold av "bt11-mais" i matvarer. I 2004-2005 gjennomførte mattilsynet en kontroll av 104 produkter, og fant ulovlig mengde genmodifisert materiale i ett av dem.
Noen matvarer er rensede produkter, framstilt fra GMP, f.eks. soyaolje. Dette inneholder helt minimale mengder av DNA fra den planten som oljen kommer fra. Det vil da være tilnærmet umulig å påvise om disse plantene var GMP eller ikke. For matvarer som inneholder selve planten, f.eks. corn flakes, er ikke dette et problem.
Mange forbrukere krever strenge regler for kontroll og merking av matvarer og råvarer for å kunne
velge GMO-fri mat. Slik kontroll av GMO-innhold er et krevende arbeid, også økonomisk. Et krav til
matprodusentene om slik kontroll kan medføre at bare de store multinasjonale selskapene har råd til å
oppfylle det. Små bedrifter og produsenter i fattige land kan få problemer med å oppfylle slike krav.
Dette kan bli en utilsiktet virkning av strenge internasjonale GMO-regler.
I 1982 ble det satt inn gen for veksthormon fra rotte i et befruktet museegg. Resultatet ble en transgen
mus, som vokste til en størrelse langt over det normale.
Matproduksjon
Landbruket kunne kanskje fristes til å lage transgene griser og sauer som vokser raskt og blir kjempestore? Deter gjort forsøk med å sette inn veksthormongener i husdyr. Men hos mange av disse dyrene har det oppstått andre problemer og belastninger. Dette kan ha med dyrenes helse og velferd å gjøre. Det er således dyrevernmessige innvendinger mot å lage denne type transgene dyr. Kjøttkvaliteten kan også lett bli dårligere. I Norge satte forskere i 1984 genet for humant veksthormon inn i laks. På denne måten har man klart å få en laks til å bli 20 kilo på to år. Men også her vil det gå ut over både dyrets helse og matens kvalitet. Men denne type transgene dyr er fremdeles noe som det forskes på og som vurderes.
Medisiner fra husdyr
Genet for human blodfaktor VIII er satt inn i sau, og dette er gjort slik at faktor VIII skilles ut som en del av sauens melk. Sauen gir da melk som inneholder faktor VIII, og vi kan rense produktet ut fra melka. Sauen er blitt en fabrikk som produserer medisiner, en bioreaktor.
Et annet eksempel er en genmodifisert ku som produserer laktoferrin i sin melk. Dette stoffet finnes normalt bare i morsmelk. Melk fra denne kua kan derved gi en meget god morsmelkerstatning.
Medisinsk forskning
Både innen biologisk forskning generelt og innen medisinsk forskning spesielt, er dyreforsøk vanlig. Man bruker f.eks. mus for å teste virkningen av nye medisiner. Innen kreftforskning brukes mus og andre pattedyr for lære mer om årsakene til kreft. Ved å genmodifisere slike forsøksdyr kan man få ny kunnskap om den genetiske forhold rundt kreft og andre sykdommer.
En av platformene til FUGE i Norge er transgene mus. Ved NTS (Norsk Transgen Senter) lager de bl.a. "knockout"-mus, der ett eller flere av musegenene er inaktivert, altså slått ut (se kap. 17.4.4). Man kan da studere virkningen av dette genet. I Norge er dette blitt gjort med ulike DNA reparasjonsgener, for å studerer betydningen og virkningen av disse.
Artskrysninger, kimærer
Du har kanskje lest om sauegeita, dyret som har sauekropp og geitehode. Dette dyret ble skapt av en dansk forsker i 1984, og er altså virkelighet. Dette har ikke noe med genteknologi å gjøre. Dette dyret ble skapt ved å sette sammen celler fra et saueembryo og et geiteembryo (celler fra meget tidlig i fosterutviklingen). Dette blandingsfosteret ble satt inn i livmoren til en sau, og "lammet" som ble født ble litt sau og litt geit.
Kloning Å klone en mus (animasjon)
Oppmerksomheten rundt kloning av dyr kom for alvor etter at forskere ved Roslin-instituttet i Skottland i 1997 klonet sauen Dolly. Det nye med Dolly var at det var brukt celler fra jur til å skape de nye Dolly-klonene. Tidligere har man klonet pattedyr fra embryonale celler. Man har f.eks også klonet ku, sau, geit, gris, rotte, kanin (fra embryonale celler) og Dolly fra jurceller.
Umiddelbart etter at Dolly ble kjent, vedtok Stortinget forbud mot kloning av høyere organismer. Når det
gjelder mennesker, er nok alle enig om at kloning er helt uaktuelt og må forbys. Men når det gjelder
pattedyr ellers, er det delte meninger. De fleste politikere er for et forbud også her, men det finnes
tilhengere som mener at kloning av pattedyr kan være aktuelt til forskning og medisinsk bruk.
Organdonorer
Xenotransplantasjon: WIKI Legetidsskriftet Ny lov - høringsbrev
Gris er et av de pattedyr som står mennesket nærest, slektskapsmessig. Derfor kan det være aktuelt å transplantere indre organer fra gris til mennesker (xenotransplantasjon). Det er et stort udekket behov for organer til transplantasjoner ved våre sykehus. Grisen kan bli organdonor. Men da må grisen gjøres immunologisk akseptabel, slik at ikke pasienten avviser organet. En slik gris er allerede framstilt, og man ønsker da å lage flere av akkurat denne grisen, dvs. klone den. Disse grisene vil i så fall være et resultat av både genteknologi og kloningsteknikk.
Polly, Molly
En kombinasjonen av genmodifisering og kloning er allerede utført med både sau og kalv. Sauene Polly ogMolly er genmodifisert til å lage melk med blodfaktor IX, og de har utviklet seg fra embryoceller, altså er de kloner (men ikke etter Dolly-metoden).
Terapeutisk kloning
vil si å klone menneskeceller i kultur for medisinske formål. Man dyrker da stamceller, dvs. celler som har evnen til å utvikle seg til spesialiserte celler og organer. På denne måten kan man "lage" nye organer eller vev til en pasient. Stamcellene må helst komme fra pasienten selv eller en nær slektning, slik at de er genetisk mest mulig lik pasienten. Stamcellene kan framskaffes på flere måter, spesielt aktuelt er befruktede eggceller/blastocyster og (aborterte) fostere. Dette er derved et omstridt tema.
Kloningsteknikker og bruk av disse er ikke i seg selv eksempel på genteknologi. Men de kan evt. kombineres med genmodifisering og genteknikker.
Forskning.no om stamcelleforskning
Legeforeningen mot terapeutisk kloning
Lov om patenter Forskning.no SV-lenker om genteknologi etc.
I 1997 ble det søkt om ca. 6000 patenter i Norge, og av disse var ca. 500 innen området bioteknologi. Av disse 500 var bare 20 norske søkere.
En patent gir enerett til kommersiell utnyttelse av en oppfinnelse i det landet der patenten er registrert. Denne oppfinnelsen kan være et produkt, eller det kan være en framgangsmåte for produksjon, eller en ny anvendelse av et produkt. Oppfinnelsen må skille seg vesentlig fra det som er kjent tidligere (ha "oppfinnelseshøyde"). Det er viktig å presisere at beskrivelsen av en patent vil bli gjort offentlig tilgjengelig. Når en metode blir patentert, vil den altså ikke være hemmelig for andre. Men bare oppfinneren (patenthaveren) har rett til kommersiell utnyttelse av den. Hvis en privatperson eller et firma har brukt store ressurser på å forske fram en ny genteknologisk metode eller prosess, er det kanskje ikke så rart at de selv vil høste profitten av dette? Men hva kan man patentere, og hva ikke?
Patent på liv?
I Norge kan man ikke ta patent på levende planter eller dyr eller metoder for framstilling av planter eller dyr. Det kan man i USA og til en viss grad i EU. Vi kan tenke oss naturlig forekommende bakterier som produserer et bestemt protein. Skal noen kunne få enerett til å utnytte dette? Vi kan tenke oss en stamme av ølgjær som erutviklet i et laboratorium. Skal hvem som helst kunne utnytte denne stammen fritt til sin ølproduksjon?
Patent på biologisk materiale?
I Norge har Stortinget bedt om at det ikke skal være mulig å ta patent på naturlig forekommende biologisk materiale. Kan et firma ta patent på en DNA-sekvens som de har funnet, og derved ha enerett på å utnytte den?En DNA-sekvens kan utnyttes kommersielt på mange måter, bl.a. til proteinsyntese og til å utvikle DNA-tester av ulike slag. Ut fra Stortingets ønske ville en naturlig DNA-sekvens ikke kunne patenteres i Norge. Men hva med en naturlig sekvens som i tillegg er forandret litt i laboratoriet ved mutagenese? Skal forskerne som gjorde dette ha enerett til å utnytte denne sekvensen? Faktum er at også i Norge kan det tas patent på gener, både naturlige og modifiserte. I 2006 var det gitt patent på ca. 60 naturlige og 140 modifiserte gener, derav halvparten menneskelige.
Fattig/rik
Bak utviklingen av genmodifiserte organismer og produktene fra disse står ofte store økonomiske interesser. Bedrifter innen genteknologi satser mye på forskning og utvikling. De som har utviklet noe nytt, vil selv ha fortjenesten av dette, og vil sikre seg patent på produktet eller på metoden. De som har økonomi og kunnskap vil på denne måten kunne sikre seg kontroll over viktige nyvinninger innen landbruk og industri. De som ikke har disse ressursene vil kunne bli tapere. Fattige land og distrikter vil tilhøre denne siste gruppen. Mange er redde for at de rike land og store selskaper får enda mer økonomisk og politisk kontroll over de fattige deler av verden.
I USA
er adgangen til å ta patent på genteknologiske nyvinninger relativt stor. Den som har klonet et gen fra naturen kan ta patent på det. Man kan ta patent på en DNA-sekvens fra et menneske eller en hvilken som helst annen organisme. Det samme gjelder organismer som har mottatt et bestemt gen. Også naturlige mikroorganismer kan patenteres. Det har særlig vært sterke reaksjoner på at det går an å ta patent på DNA-sekvenser fra mennesker. Hva med de mennesker som dette DNA er hentet fra?
I USA har et firma fått patentert enerett til utnyttelse av en genmodifisert bomullsplante. Og de fikk samtidig enerett til all fremtidig genmodifisert bomull. I Europa har Hoffmann-LaRoche fått patent på selve PCR-metoden, og de fikk samtidig også patent på alle varmestabile polymeraser, både kjente og de som måtte finnes i fremtiden! Disse sakene har imidlertid vakt reaksjoner, og er antakelig ikke endelig avgjort.
Norge
har ønsket å være langt mer restriktive enn eksemplene foran viser, jf. Stortingets ønske som er
referert foran. Men hva skjer hvis en oppfinnelse kan patenteres i USA og EU, men ikke i Norge? Det
kan bety at fri kommersiell utnyttelse av oppfinnelsen blir lovlig i Norge, men det oppstår store
problemer hvis produktet skal selges til andre land. Norge er her forpliktet av internasjonale
handelsavtaler. Det kan bli vanskelig i praksis å ha strengere patentregler i Norge enn i f.eks. EU, selv
om vi måtte ønske det. Men også i EU er det strid om disse spørsmålene. EU har et patentdirektiv som
gir utstrakt adgang til patentering av genmodifiserte organismer. Nederland forsøkte fra 1998 å stoppe
eller endre dette direktivet, men i oktober 2001 avsa EU-domstolen en dom som stadfester
patentdirektivet i sin opprinnelige form. Det skal gjelde både for EU og EØS. Som følge av dette ble
den norske patentloven endret i 2004. Det er som nevnt mulig å patentere gener, og også dyr, f.eks en
genmodifisert mus.
23. IMMUNAPPARATETS GENETIKK Til bokens kapitteloversikt
Vi skal omtale tre store genfamilier som styrer viktige deler av vårt immunapparat. Disse tre
genfamiliene koder for:
•Antistoffer (immunglobuliner)
•T-celle reseptorer
•HLA-molekyler
Vi finner en stor mengde gensegmenter med stor grad av homologi som koder for disse tre gruppene
av proteiner. Samtidig gir disse genene mulighet for en nesten ubegrenset variasjon av
proteinprodukter hos en og samme person.
For sammenhengens skyld tar vi først med noen punkter om immunapparatets virkemåte.
Antigener er stoffer som kan komme inn i kroppen vår, som er fremmede for organismen, og som vårt immunforsvar reagerer mot. Et antigen er ofte et protein eller karbohydratmolekyl, og kan tilhøre et virus, en bakteriecelle, eller andre fremmede celler. Det er bare en mindre del av den molekylære strukturen som immunforsvaret reagerer mot, og denne delen kalles antigenets epitop.
B-lymfocyttene, som tilhører de hvite blodlegemene, leukocyttene, har antistoffmolekyler bundet i sin cellemembran. Hver B-celle har sin egen variant av antistoff. I alt har vi flere millioner forskjellige typer B-celler, med hvert sitt spesielle antistoff. Når en slik celle treffer et antigen som passer til dens antistoff, blir den stimulert. Den formerer seg da til et stort antall (proliferasjon), og utvikler seg til plasmaceller. Det at en bestemt B-celle velges ut, og formerer seg, kalles klonal seleksjon (se fig. 23.1).
En plasmacelle produserer store mengder av sitt spesielle antistoffmolekyl, som er rettet mot det aktuelle antigen. Plasmacellen skiller ut antistoffene som den produserer. Disse antistoffene kan binde seg til antigenet, og bidra til at dette blir inaktivert. Antistoffer kan få antigener til å klumpe seg sammen. Dette kan observeres, og det kalles agglutinasjon. Antigenet, eller cellen som bærer antigenet, kan da bli ødelagt.
En T-lymfocytt har antistoffliknende proteiner festet i sin membran. Av disse finnes også et stort antall varianter. Disse molekylene kalles T-celle-reseptorer (TCR). En T-celle som møter et antigen som passer til sin reseptor, blir også stimulert til å formere seg, slik at det blir et stort antall av T-celler med nettopp den aktuelle T-celle reseptor (klonal seleksjon).
Når immunforsvaret aktiveres, foregår det et samspill mellom B-celler og T-celler, der alle de tre omtalte grupper av proteiner er involvert: Antistoffer (immunglobuliner), T-celle reseptorer, og HLA-molekyler.
Oversikt
Her følger en oversikt som viser noe av dette samspillet (se fig. 23.2). Denne framstillingen er sterkt forenklet og utelater mange detaljer
1. Makrofag. Et antigen blir oppslukt av en spesiell type hvite blodlegemer, en makrofag.
2. HLA. Makrofagen fordøyer antigenet, men rester av det blir plassert i cellemembranen, bundet til et HLA-molekyl. HLA-molekylene er spesifikke for hvert enkelt individ. Alle makrofager har (liksom alle kjerneholdige celler) HLA klasse I, noen av dem har i tillegg HLA klasse II-molekyler.
3. TH-celler. En T-celle med en passende T-celle reseptor (TCR) reagerer med antigenet som sitter bundet til HLA i makrofagens membran, og blir da stimulert. HLA-molekylet må også være av en type som T-cellen gjenkjenner, dvs. fra samme individ. Denne avgrensende funksjonen til HLA-molekylene kalles HLA-restriksjon. Cellen (makrofagen) kalles en antigenpresenterende celle.
4. T-celle-klon. T-cellen som blir stimulert, deler seg raskt, og vi får et stort antall T-celler som bærer T-celle reseptor mot det spesielle antigen (klonal seleksjon). Hvis HLA-molekylet var klasse II, vil T-cellen utvikle seg til en T-hjelpe-celle, TH (punkt 7).
5. B-cellene vil parallelt med dette starte sin reaksjon. De har som sagt hvert sitt spesielle antistoffmolekyl bundet i membranen. En B-celle med det riktige antistoff binder antigenet som har kommet inn i kroppen
6. B-cellene presenterer antigen. I noen tilfeller kan B-celler utvikle seg til plasmaceller bare etter møtet med sitt antigen. Men ofte må B-cellen stimuleres av en TH-celle som har møtt samme antigen. Da må B-cellen først plassere noe av antigenet i sin membran, bundet til et HLA klasse II-molekyl.
7. TH-celle/B-celle. TH-celler som bærer T-celle reseptor mot dette antigen, har allerede formert seg (se punkt 4). Slike TH-celler vil kunne binde seg til B-celler med epitop fra samme antigen.
8. Plasmaceller. TH-celler som er bundet til B-celler pga. felles antigen stimulerer B-cellene til å utvikle seg videre til plasmaceller.
9. Antistoff. Plasmacellene skiller ut store mengder antistoff. Dette kan på forskjellige måter uskadeliggjøre antigenet og celler som bærer det.
En bestemt B-celle kan altså bli stimulert til å utvikle seg og formere seg til antistoffproduserende plasmaceller. Dette forutsetter ofte at et antigen er oppdaget både av B-celler (i oppløst form) og av TH-celler (i membranbundet form).
10. TK-celler. Under punkt 3 og 4 ble T-celler stimulert av antigen til å utvikle seg til TH-celler. T-celler kan også utvikle seg til cytotoksiske T-celler (killer cells, TK-celler). Dette kan skje når antigenet er bundet til HLA klasse I på makrofagen, i stedet for HLA klasse II.
TK-cellene kan drepe celler som bærer det aktuelle antigen bundet til HLA klasse I-molekyler. Derfor kalles de også killer T-cells.
23.2 ANTISTOFFER, IMMUNGLOBULINER WIKI, antibody
Et antistoffmolekyl er det samme som et immunglobulinmolekyl, et Ig-molekyl (se fig. 23.3).
Tung og lett kjede
Et Ig-molekyl består av to typer polypeptidkjeder, en tung (H for heavy) og en lett kjede (L). H-kjeden er på ca. 440 aminosyrer, L-kjeden på ca. 220. Ig-molekylet består av to lette og to tunge kjeder, bundet sammen med S-S broer.
Både lett og tung kjede har ett område som er konstant fra ett molekyl til et annet (CL og CH), og ett område som er variabelt (VL og VH). Den variable delen av begge kjeder er N-terminal, mens den konstante delen er C-terminal. Den konstante delen av tung kjede deles inn i 3 områder (domener), CH1, CH2 og CH3(evt. CH4), den lette kjeden har ett domene, CL. Alle disse 4 områdene (CL, CH1, CH2, CH3) har også store likheter seg imellom. Størrelsen er på ca. 110 aminosyrer. Den C-terminale enden av konstant kjede kan være bundet i cellens membran. Området mellom CH1 og CH2, der kjedene henger sammen kalles hengselregionen (hinge).
3 hypervariable områder
De variable delene av Ig-molekylene, VH og VL, har store områder som ikke varierer så mye fra molekyl til molekyl. Dette kalles molekylets ramme, eller framework. Variasjonen mellom ulike molekyler finner vi innen 3 avgrensede områder. Disse kalles CDR (complementarity determining region) (se fig. 23.4).
Antigenbinding
Når proteinet folder seg som et immunglobulin, vil disse CDR-områdene utgjøre 3 løkker (loops) som
stikker ut øverst på den variable delen av både H og L-kjedene (fig. 23.4). Siden begge de variable
delene (VL og VH) har slike områder, får vi 6 hypervariable løkker på en "arm" av ett Ig-molekyl. Dette er
området som binder antigen. Variasjonen i alle disse løkkene gir grunnlag for at ulike antistoffmolekyler
kan binde ulike antigener.
L-klasser
Det er 2 hovedklasser (undertyper) av L-kjeder: og .
H-klasser
Det er 5 klasser (isotyper) av H-kjeder, , , , og . Disse skiller seg fra hverandre i C-delen av H-kjeden.
Dette gir 5 hovedklasser av Ig-molekyler: IgA, IgD, IgE, IgG og IgM.
23.3.1 Tung kjede (H)
Genene som koder for tung (H) kjede sitter på kromosom 14 (14q32). Dette er et stort genkompleks
som består av flere hundre gensegmenter (fig. 23.5).
Variabel del, VH
Den variable delen av H-kjeden er kodet av tre typer eksoner eller segmenter, som kalles V, D og J(Variable, Diversity, Joining). Vi finner ca. 50 V-segmenter, hvert av dem på 3-400 bp, og med noen 1000 bp mellomrom. Deretter følger ca. 30 D-segmenter og 5 J-segmenter. De 50 V-segmentene er ikke helt identiske, det samme gjelder D- og J-segmentene. I tillegg har vi et segment i forkant av V-segmentene, som gir et ikke-translatert område og et lederpeptid, som senere kuttes bort. Det som skjer er at ett av V-segmentene kobles sammen med ett av D-segmentene og ett av J-segmentene. Dette kalles DNA rearrangering.
V-segmentet koder for de 95 første aminosyrene (1-95), D-segmentet for nr. 96-101 og J-segmentet for
nr. 102-117 (det varierer noe). Dette gjelder VH-kjeden, se også fig. 23.4.
Konstant del, CH
Etter V, D og J-segmentene følger 9 segmenter som alle koder for den konstante delen av H-kjeden,
CH. Disse kalles C, C, C3, C1, C2b, C2a, C, C og C. Bare ett av disse blir brukt, og dette avgjør hvilken
klasse immunglobulin vi får: IgM, IgD, IgG, IgE eller IgA. Hvert C-segment er bygget opp av flere
eksoner. Ett slikt ekson tilsvarer ett CH-område (CH1, CH2 og CH3).
DNA rearrangering V-D-J
Alle B-cellene utvikler seg fra felles stamceller i beinmargen. Kromosomene i en stamcelle vil bære alle V, D, J og C-segmentene. Når en stamcelle utvikler seg til en moden B-celle, skjer det rearrangering av disse segmentene. Dette kan minne om spleisingen av eksoner/introner, men rearrangeringen skjer altså på DNA-nivå. For tung kjede (H) skjer dette i to trinn. Først knyttes ett D og ett J-segment sammen til DJ. Det mellomliggende DNA blir kuttet bort. Deretter knyttes ett V-segment til DJ-segmentet, og vi får VDJ (se fig. 23.5).
Ett kromosom har ca. 50 V, 30 D og 5 J-segmenter. Dett gir mulighet for 50×30×5 = 7500 ulike VDJ-gener, og derved 7500 ulike Ig-molekyler. Siden vi har 2 ulike kromosomer, blir antallet 15000.
Etter V-D-J rearrangeringen vil fremdeles alle de 8 C-segmentene være med. Men bare det C-segmentet som sitter nærmest VDJ vil bli transkribert, og dette er C. Vi får da laget IgM. Imidlertid kan det i B-cellens utvikling også skje en rearrangering av C-segmentene. C og C kan f.eks. bli kuttet bort, slik at Chavner nærmest VDJ. Ved transkripsjon får vi da laget IgG. Denne bortkuttingen av C-segmenter er irreversibel, og det kalles klasseskifte (class switch).
I tillegg er det et gensegment i 3'-enden av C-segmentet, med to alternative poly(A)-signaler, som
avgjør om antistoffet blir membranbundet som B-celle reseptor eller skilt ut i fri tilstand som antistoff (se
kap 8.8.6, 8.25).
23.4.2 Lett kjede (L)
Vi finner gener for lett kjede på to kromosomer, nemlig 2 og 22. Genene på kromosom 2 (2p12) gir en
L-kjede som kalles L(), de på kromosom 22 (2q11) gir en kjede som kalles L().
L()-kjede
Genene for L()-kjeden er vist i fig. 23.5. Den variable delen kodes her av V og J-segmenter (ikke D). Vi finner ca. 40 V-segmenter, og hvert av disse er på ca. 400 bp med mellomrom (spacer) på 7 kb. Ganske langt nedstrøms for V-segmentene finner vi 5 J-segmenter. Til slutt finner vi ett segment for C. I alt dekker dette genkomplekset flere tusen kb. To kromosomer med disse V og J-segmentene gir oss mulighet for 2×40×5 = 400 ulike L()-kjeder.
Figur 23.7 viser hvordan sammenkoblingen av V og J-segmenter skjer. I området mellom segmentene
finnes omvendt repeterte sekvenser som kan gi grunnlag for baseparing. Deretter vil et eget enzym
foreta en rekombinasjon slik at den mellomliggende sekvensen blir borte.
L()-kjede
Genene for lett -kjede ligger på kromosom nr. 22, og er bygget opp på tilsvarende måte, men med færre utgaver av V- og J-segmenter (30 og 5). Dette gir 2×30×5 = 300 ulike varianter.
En ferdig utviklet B-celle vil bare uttrykke ett av genene for lett kjede, enten eller . Antall varianter av lett
kjede blir da 400 + 300 = 700.
23.4.3 Variasjonsmuligheter
Vi har sett at antistoffenes sete for antigenbinding er de variable delene av H og L-kjedene, spesielt de
hypervariable løkkene (CDR). Variasjonen her kan oppstå på flere måter:
Ulik VDJ-kobling
For H-kjeden har vi sett at det er mulig med ca. 15000 ulike kjeder ved å koble ulike V, D og
J-segmenter sammen. For L-kjeden var tallet 700. Ved fritt å kombinere én av disse H-kjedene med én
av L-kjedene, kan vi da få 15000×700 = 10500000 ulike Ig-molekyler, dvs. ca. 107.
Ulik DNA rearrangering
Rearrangeringen av VDJ gir altså ca. 10 mill. ulike muligheter. Men rearrangeringen av to bestemte D og J-segmenter (eller V-DJ) kan også skje litt ulikt fra gang til gang. Dette er antydet i figur 23.7. Dette gjelder både for tung og lett kjede. Derved blir antall varianter enda større, kanskje 10× flere både for tung og lett kjede. Dette gir oss 109 ulike varianter av antistoffmolekyler.
Områdene der denne rearrangeringen skjer, er nettopp det som utgjør i de hypervariable områdene (CDR), der antistoffet binder antigen.
Somatisk hypermutasjon
Under modningen av en B-celle vil det foregå mutasjoner. Mutasjonshyppigheten under denne prosessen er uvanlig høy, muligens pga. egne enzymer i disse cellene. Disse mutasjonene gir enda større variasjonsmulighet blant antistoffene. Vi kan få opptil 1012 ulike varianter av den variable delen av antistoffmolekyler.
Mutasjonene gjør at antistoffene blir endret litt, slik at noen kanskje vil passe enda bedre til sitt antigen.
Vi får celler som lager skreddersydde antistoffer, som passer helt til bestemte antigener. Denne
prosessen kalles affinitetsmodning.
Allelisk eksklusjon
B-cellene er diploide, og har derved 2 sett med gener for tung kjede og 2×2 sett for de lett kjedene. De
to kromosomparene vil etter rekombinasjon ikke ha to like sett. Vi sier at vi har to haplotyper. Cellen vil
kunne produsere to sett med Ig-molekyler. Imidlertid er det slik at en B-celle bare bruker det ene settet
av gener, det andre blir undertrykket, ekskludert. Hvis tung kjede blir laget fra allelene på ett
kromosom, blir allelene på det andre kromosomet i denne cellen ikke brukt. Det er dessuten (som
nevnt) slik at når lett kjede blir laget, vil cellen bruke enten eller -genene.
23.4 HLA-TYPER
23.4.1 HLA-molekylene
Alle celler har molekylære strukturer på sin ytre overflate, såkalte antigener, som gjør at de kan gjenkjennes. En gruppe av slike antigener er HLA-molekylene (Human Leukocyte Antigen) eller MHC som er en mer generell betegnelse (Major Histocompatibility Complex). Disse molekylene sitter i membranen på våre celler. Immunapparatet til et individ er vant til sine egne HLA-molekyler, og ødelegger ikke celler med disse. Celler med fremmede HLA-molekyler blir derimot angrepet av vårt immunforsvar. Det finnes likevel eksempler på at immunforsvaret reagerer mot egne HLA-molekyler. Dette er eksempel på et fenomen som kalles autoimmunitet.
I 23.1 så vi at HLA klasse I og II molekyler er avgjørende for at T- og B-cellene sammen skal sette i
gang et effektivt immunforsvar.
HLA-klasse I
HLA klasse I-molekylene består av en -kjede (340 aminosyrer) og en ß-kjede (100 aminosyrer) (se fig. 23.8). -kjeden er festet i cellemembranen. Den delen som stikker ut kan deles i tre domener, 1, 2 og 3. ß-kjeden og 3 har stor likhet med C-domenene i Ig-molekylene.
Det finnes tre hovedgrupper av HLA klasse I-molekyler; HLA-A, B og C. Disse skiller seg fra hverandre i deler av -kjeden. Hvert individ lager både HLA-A, HLA-B og HLA-C-molekyler. Disse blir kodet av tre ulike gensett i hvert sitt locus, som alle ligger på kromosom 6. Innen hvert av disse tre loci har vi mange ulike varianter, HLA-genene har altså stor grad av polymorfisme. Vi har f.eks. ca. 40 varianter av HLA-A (se tabell 23.1).
Vi finner HLA klasse I-molekyler på de fleste kjerneholdige celler. Antall kan være over 100 000 pr.
celle.
HLA-klasse II
HLA klasse II-molekylene består av en -kjede og en ß-kjede som er omtrent like lange (230 aminosyrer) (se fig. 23.8). Begge kjeder er festet i cellemembranen. De delene som stikker ut kan deles i to domener for hver kjede (1 og 2, ß1 og ß2). Også her (for 2 og ß2) finner vi stor likhet med C-domenene hos Ig-molekylene.
Det finnes tre hovedgrupper av HLA klasse II-molekyler; HLA-DP, DQ og DR, og hvert individ vil lage
både HLA-DP, HLA-DQ og HLA-DR-molekyler.
23.4.2 HLA-genene
Genene som koder for HLA-molekylene sitter på kromosom 6, og utgjør et kjempemessig genkompleks (fig. 23.9).
Innen alle disse loci har vi mange ulike varianter. Det finnes f.eks. svært mange varianter av HLA-DR
(se tabell 23.1).
Ekson = domene
HLA klasse I-molekylene har en og en ß-kjede, -kjeden har domenene 1, 2 og 3. Det er da slik at ett ekson i HLA-genet tilsvarer ett domene i HLA-molekylet (se fig. 23.9). Den delen av HLA-molekylet som går gjennom membranen kodes av ett ekson, mens den delen av HLA-molekylet som stikker ut på innsiden av membranen, inn i cytoplasma, kodes av egne eksoner.
Som nevnt er det 3 hovedgrupper av HLA klasse I-gener og tre grupper av HLA klasse II-gener, i hver
sine loci. Alle disse loci er sterkt polymorfe, dvs. at det finnes mange varianter (alleler) av disse genene
i en befolkning. Se tabell 23.1. Det vil derfor være store forskjeller fra individ til individ når det gjelder
disse genene, og derved hva slags HLA-molekyler som lages.
Haplotype
Hvert individ har to stk. av kromosom 6, altså to sett av hele HLA-genkomplekset. Siden disse genene sitter svært nær hverandre, vil sjansen for rekombinasjon være liten, og de nedarves derfor som et sett med gener.Ett slikt sett av gener som sitter på ett kromosom, kalles en haplotype (se fig. 23.11). Ett slikt sett kan f.eks. være HLA: A2, B7, Cw3, DR4, DQw2, DPw4. Vi arver den ene haplotypen fra vår far, den andre fra mor.
For hver av disse 6 HLA-gruppene har vi da to varianter, f.eks. HLA-A2 og HLA-A28. Man har da genotypen HLA-A2/HLA-A28 og fenotypen blir HLA-A2,28. Tilsvarende har vi for de andre HLA-klassene. En person kan derved f.eks. ha fenotype HLA-A2,28; B7,12; Cw3,w4; DR2,4; DQw1,w2; DPw2,w4. Dette gir et sett av 2×6 HLA-molekyler, som denne personen kan bære på sine celler. Det er ikke er mange andre som har nettopp samme kombinasjonen av HLA-molekyler.
Siden HLA-genene er så tett koblet, har bestemte haplotyper fulgt hverandre gjennom svært mange generasjoner. Det har ført til at bestemte koblinger av HLA-typer er vanlig i bestemte folkegrupper. I Norge er det f.eks. en viss kobling mellom A1 og B8, mellom A2 og B12 mfl.
HLA og sykdommer
Det er påvist en sammenheng mellom bestemte HLA-typer og disposisjon for visse sykdommer. Dette kan ha sammenheng med HLA-molekylenes viktige rolle i immunreguleringen. Vi har tidligere omtalt sukkersyke, diabetes mellitus. Type I diabetes ("ungdoms-") viser korrelasjon til HLA-typene DR3 og DR4. Multippel sklerose viser en sammenheng med HLA-type DR2, Bechterews sykdom til HLA-B27 osv.
Ved transplantasjoner vil fremmed vev avvises av vårt immunforsvar pga. fremmede HLA-molekyler. Hvis giveren derimot har en HLA-type lik mottakeren, så går det bra. Sjansen for å finne en slik person er liten, bortsett fra nær slekt.
Ved transplantasjoner, og i mange andre sammenhenger, er man interessert i en persons HLA-type.
Det er nå utviklet DNA-prober for mange ulike varianter av HLA-gener, slik at det er mulig å foreta
HLA-typing på DNA-nivå.
23.5 T-CELLE RESEPTORER
I membranen på T-cellene sitter glykoproteiner som er nokså lik antistoff (Ig)-molekylene i oppbygning.
De kalles T-celle reseptorer (TCR). Disse molekylene finnes utelukkende som membranproteiner.
Deres funksjon er omtalt under gjennomgangen av immunapparatet i 23.1.
Kjeder
En T-celle reseptor består av to kjeder, en og en ß. Begge disse kjedene har en variabel (V) og en
konstant (C) del, som har store likheter med V- og C-domenene hos Ig-molekylene (se fig. 23.12).
Genene
for T-celle reseptor -kjeden befinner seg på kromosom 14, mens ß-kjeden kodes av to regioner på
kromosom 7. Disse er organisert på liknende måte som Ig-genene, slik at -kjedens gener har V, J og
C-segmenter, og -kjedens gener V, J, D og C-segmenter. Ved rearrangering av disse segmentene kan
det oppstå et stort antall ulike varianter av rekombinerte T-celle reseptorgener. Hver T-celle har sin
spesielle variant, og lager sin spesielle reseptor. Mangfoldet av TCR-typer oppstår på liknende måte
som for B-cellenens antistoffmolekyler, bortsett fra at vi ikke finner somatisk hypermutasjon i TCR-genene.
23.6 SUPERGENFAMILIE
Vi har nå omtalt tre grupper av proteiner: immunglobulinene (Ig), T-celle reseptorene (TCR) og HLA-molekylene (fig. 23.12). Vi har også beskrevet genene som koder for disse, og hvordan genene utgjør store genkomplekser. Vi har sett at samme DNA-motiv blir repetert innen ett slikt kompleks (på ett kromosom), og dessuten på andre kromosomer.
C-motiv
Gensegmentet som koder for den konstante delen av Ig-molekylet er ett slikt motiv. På proteinnivå har vi kalt det domene. Dette motivet finner vi på kromosom 14 (CH av Ig), kromosom 2 (CL()), kromosom 22 (CL()), kromosom 6 (HLA), kromosom 14 (TCR, -kjede), kromosom 7 (TCR, ß-kjede), og mange andre i tillegg.
V-motiv
Også motiver som har likhet med V-segmentene hos Ig finnes i alle disse kromosomene. Dessuten har
V-motivet en del felles trekk med C-motivet, bl.a. størrelsen.
Familie
Genfamilier er tidligere omtalt i kap. 13.1.3 og 13.5.4. C-segmentene og V-segmentene som finnes spredt i våre kromosomer har mange felles trekk, og har antakelig utviklet seg fra ett ur-immun-gen som fantes for lenge siden. Alle disse genene utgjør i dag en familie. Familien har flere hovedgrener (V og C), og vi kaller det derfor en supergenfamilie. Det opprinnelige ur-immungenet kan etter hvert ha blitt kopiert og flyttet til flere kromosomer. Deretter har det, pga. mutasjoner, utviklet seg noe ulikt i de ulike kromosom-loci. Etter hvert har vi fått en stor mengde gener eller gensegmenter som har stor grad av homologi seg imellom.
I tillegg til Ig-, TCR- og HLA-proteinene, finnes det også en god del andre proteiner, med helt andre funksjoner, som er kodet av gener i denne supergenfamilien.
24. KREFT OG GENETIKK Til bokens kapitteloversikt
24.1 HVA ER KREFT ?
Kreft (cancer) er karakterisert ved ukontrollert cellevekst, og eventuell spredning av disse cellene til andre deler av kroppen (metastase). Denne spredningen skjer hovedsakelig via lymfe- og blodsystemet. Kreftceller kan danne en svulst, en tumor, og cellene kalles ofte tumorceller. Cellene i en kreftsvulst kan altså spre seg, og den kalles da ofte ondartet (malign). En svulst som ikke sprer seg kan være godartet (benign).
Man har ulike navn på en kreftsvulst etter hva slags vev som er involvert:
Carcinom er kreft som utgår fra epitelceller. Dette inkluderer hud, mage, lunger, brystkjertler m.m. Over 90 % av menneskelig kreft er carcinomer. Sarkom er kreft i ben-, muskel- eller støttevev. Lymfom og leukemier er kreft i vev som produserer blodceller (røde/hvite). Dette inkluderer milt, lymfekjertler og den røde beinmarg.
24.1.1 Arv
Kreft har et genetisk grunnlag. Det er i løpet av de siste årene påvist en rekke gener som er assosiert med kreft. Ulike mutasjoner i disse genene kan gi en person økt risiko for å utvikle sykdommen.
Det er to typer av gener som knyttes til utviklingen av kreft, onkogener og tumor supressor-gener.
Forenklet kan man si at onkogenene har en vekstfremmende virkning, mens tumor supressor-genene
har en veksthemmende virkning. Når disse genene uttrykkes normalt, reguleres cellens utvikling slik
den skal. Men når disse genene uttrykkes unormalt, kan det føre til utvikling av kreft.
24.1.2 Miljø
Utviklingen av kreft kan fremmes av ytre faktorer som påvirker eller forandrer våre gener. Det er derfor
naturlig at de samme forhold som skaper mutasjoner også kan fremme kreft. Følgende tre ytre faktorer
kan fremme kreft:
•Stråling, dvs. UV-lys (også i sollys), røntgenstråler, radioaktiv stråling.
•Mutagener, stoffer som fremmer mutasjoner, vil også kunne fremme utviklingen av kreft, de er karsinogene.
•Virus. Slike virus kalles tumorvirus.
Disse tre punktene forklarer at kreft også kan oppfattes som en miljøsykdom. Vi utsettes for en enorm
mengde nye kjemiske stoffer som vi ikke alltid kjenner den karsinogene virkningen av. Dette har gjort at
kreft har blitt mer og mer vanlig, særlig i de høyt industrialiserte land. Ikke minst røyking har bidratt til
økt antall krefttilfeller, spesielt lungekreft.
24.1.3 Test av karsinogene stofferDet er utviklet en lang rekke enkle tester som kan påvise om et kjemisk stoff har mutasjonsfremmende (mutagen), dvs. kreftfremmende (karsinogen) virkning. Her skal bare nevnes to slike tester.
I Ames test brukes en spesiell stamme av Salmonella-bakterier som er his- . Den mangler altså evnen til å lage aminosyren histidin. I tillegg har den et inaktivert DNA-reparasjonssystem. Disse cellene vil ikke vokse på en skål med et medium uten histidin. Men ved mutasjon vil genet his- kunne tilbakemutere til his+. I så fall vil cellen vokse på disse skålene. Vi kan tilsette et karsinogen til en slik skål med his-celler. Det vil da oppstå mange mutanter, derav noen his+. Dette kan registreres som kolonier på skålen. Jo flere kolonier vi får, jo sterkere karsinogen var det.
Til Devoret's test brukes E. coli som er lysogen med bakteriofag . Disse cellene vil vokse som vanlige
celler. De sås ut sammen med vanlige E. coli celler (indikatorbakterier). Det er da mulig at
bakteriofagen i de lysogene cellene blir frigjort fra cellens kromosom ved induksjon. De frigjorte
bakteriofagene vil da infisere indikatorbakteriene, og vi får plakk. Skader i DNA vil øke sjansen for slik
induksjon , og gi flere plakk. Derved kan man påvise stoffer som skader DNA ved at de gir økt
induksjonsfrekvens (flere plakk). Dette er mutagene eller karsinogene stoffer.
Alt i 1911 ble det første gang påvist at et virus kan ha kreftfremmende virkning. Dette var Rous Sarcoma Virus, RSV, et fuglevirus. Men først etter 1950-årene har kunnskapen om slike tumorvirus blitt utviklet videre. I 1978 ble DNA-fragmenter fra et tumorvirus (SV40) klonet, slik at dets struktur kunne analyseres nærmere.
Tumorvirus er bare unntaksvis årsak til kreft hos mennesker. Men studiet av slike virus har hjulpet oss til å forstå det genetiske grunnlaget for kreft. Tumorvirus kan inneholde DNA eller RNA.
24.2.1 DNA tumorvirus
Én gruppe av tumorvirus er Papova-virus. Denne gruppen omfatter følgende tre virus: SV 40, funnet i Rhesus aper (5243 bp), Polyoma (5292 bp) og Papilloma. Papova står for Papilloma-polyoma-vacuolating (SV40). Humant Papilloma-Virus (HPV) er en hovedårsak til livmorhalskreft (cervixcancer), som rammer mange kvinner.
Adenovirus er en annen gruppe av DNA-virus der vi finner mange typer og mange ulike verter, deriblant mennesker. Adenovirus er mye større enn papovavirus, ca. 36000 bp.
DNA tumorvirus kan gjennomføre lytisk livsløp, eller bli integrert i vertens DNA som provirus. Dette skjer ikke på en bestemt plass slik som hos bakteriofag , men på varierende steder. Hvis SV40 blir integrert i vertcellens DNA, kan en liten del av disse cellene bli forvandlet til kreftceller. Denne forvandlingen av en vanlig celle til en kreftcelle kalles transformasjon, og cellen sies å være transformert.
Det er vist at for SV40 er det bare noen av dens gener som er aktive i transformasjon (tidlige gener).
Man har også påvist proteiner som kodes av disse genene, de kalles T-proteiner. Man vet ennå ikke
sikkert hvordan disse T-proteinene gjør at cellen blir en kreftcelle.
24.2.2 RNA tumorvirus
RNA tumorvirus tilhører gruppen retrovirus, dvs. RNA-virus som i cellen overfører sitt RNA til DNA. Retro betyr omvendt. Det er enzymet revers transkriptase som sørger for den omvendte transkripsjon av RNA til dobbeltrådet DNA, via enkeltrådet DNA. Et retrovirus må derved inneholde dette enzymet, siden vertcellen ikke gjør det. Revers transkriptase er isolert fra retrovirus, og benyttes i laboratoriet til å lage cDNA. HIV-viruset som forårsaker AIDS er et retrovirus.
Retrovirus inneholder alltid tre gener; gag, pol og env. Genet gag gir et protein som finnes i
virus-partikkelen, pol gir revers transkriptase, og env gir skallprotein (envelope). Se fig. 24.1. Disse
genene omgis av såkalte LTR-områder (long terminal repeats). Dette betyr at det finnes gjentatte
DNA-sekvenser i begge endene. LTR inneholder viktige promoter- og forsterkerområder (enhancere),
som gjør at genene ved siden av blir aktivt transkribert.
v-onc
Et retrovirus kan inneholde et kreftgen (onkogen) i tillegg til disse tre virusgenene. Et slikt gen kan
forårsake kreft i den cellen som mottar viruset, og det kalles et virus-onkogen, v-onc.
c-onc
Det har vist seg at de virale onkogener (v-onc) er muterte varianter av gener som finnes i normale celler (c-onceller protoonkogener).
Man kan tenke seg at RNA tumorvirus har oppstått slik (se fig. 24.2): Et retrovirus har blitt integrert ved siden av et cellulært gen (c-onc). Genet c-onc kan da bli transkribert til RNA sammen med de tre virusgenenegag-pol-env, og deretter pakket sammen. Onkogenet (c-onc) kan evt. senere, i viruset, bli endret (mutert), slik at det ikke er helt like sin cellulære opprinnelse. Viruset er blitt et tumorvirus. Genet c-onc er et vanlig gen med introner og eksoner, mens v-onc bare inneholder eksonene.
Noen eksempler på RNA tumor virus og deres onkogener er:
RSV, Rous Sarcoma Virus, eller ASV (A = avian, fugl) er et virus som finnes hos fugl. Sarcoma er kreft i bein/muskler (se over). RSV/ASV inneholder onkogenet src (for sarcoma).
SSV, Simian Sarcoma Virus, er virus som finnes i en spesiell type aper. SSV inneholder onkogenet v-sis (forsimian sarcoma).
HSV (Harvey Rat Sarcoma Virus) inneholder onkogenet H-ras (for rat sarcoma).
24.3 ONKOGENER
Et onkogen kan defineres som et cellulært gen, som når det uttrykkes unormalt kan gi opphav til
kreftceller. En mutasjon i et slik gen vil gi "gain of function", altså en økt aktivitet. Slike mutasjoner vil
derfor være dominante, det muterte genet er skadelig i seg selv. Det er kjent mer enn 100 onkogener,
samt over 30 tumor supressorgener.
Web-siden http://www.cancerindex.org/geneweb/ inneholder en beskrivelse av 606 kreftrelaterte gener
(mai 2006).
Proto-onkogen
Onkogener er som sagt til stede i normale celler, og kalles da cellulære onkogener, c-onc, eller protoonkogener. De vil da kode for proteiner som har en vesentlig regulerende funksjon i cellen. Slike proteiner kan ha stor innvirkning på cellens utvikling og delingsevne.
Man kan dele onkogenene inn i grupper etter funksjonen til de proteiner som de koder for:
•Vekstfaktorer
•Vekstfaktorreseptorer
•Proteiner i den intracellulære signaloverføring
•Transkripsjonsfaktorer
•Cycliner/cdk-er
Disse er omtalt som signaloverføring i kapittel 8.9 (signaloveføring) og 8.10.2 (cellesykluskontroll). Se også fig. 24.3 og tabell 24.1.
Mange onkogener har fått navn etter det virus der de først ble oppdaget: v-sis, v-ras osv. Men disse virale onkogenene er ikke identisk med de tilsvarende cellulære proto-onkogener. Disse fikk likevel samme navn: c-sis,c-ras osv. Men etter hvert som man har funnet funksjonen til onkogenene, har mange av dem fått nye navn. Disse følger vanlige regler for navnsetting av humane gener, dvs. store bokstaver og bokstaver som henviser til protein eller sykdom el.l. Genet c-sis blir da kalt PDGF-B, Platelet-Derived-Growth-Factor-Beta-kjede. Betegnelsen SIS-onkogen brukes også.
Vi skal omtale noen av de mest sentrale onkogene, og tar med en eller to fra hver av de omtalte gruppene.
24.3.1 Vekstfaktorer
Eksempel på vekstfaktorer er EGF og PDGF. EGF står for Epidermal Growth Factor, epidermal
vekstfaktor. Dette er et protein som blir skilt ut fra skadde epidermceller. EGF stimulerer cellene til å
dele seg, slik at skaden (såret) kan leges. PDGF står for Platelet Derived Growth Factor,
blodplatederivert vekstfaktor. Dette proteinet skilles normalt ut av blodplater ved blødning, og hjelper et
sår til å gro ved å stimulere cellene rundt til vekst.
v-sis, PDGF-B
Proto-onkogenet c-sis koder for en subenhet av proteinet PDGF. Dette cellulære genet har nå fått
navnet PDGF-B eller SIS-onkogen, og hos mennesket finner vi det på kromosom 22. Genet v-sis finnes
hos tumorviruset SSV, derav navnet (Simian Sarcoma). Det virale genet koder for et protein som har
liknende struktur og funksjon som PDGF. Det er imidlertid ikke helt likt, og proteinet har fått
betegnelsen p28v-sis. Her står 28 for 28 kdal, dvs. molekylvekt 28000.
24.3.2 Vekstfaktor reseptorer
v-erbB, EGFR
Man har funnet at genet for EGF-reseptoren, EGFR, sitter på kromosom 7. Det er kjent en større
mutasjon i dette genet som gjør at reseptoren permanent er aktivert, selv uten EGF til stede. Resultatet
blir overstimulering av cellen. Vi finner et viralt onkogen som likner på EGFR i et virus som kan
forårsake kreft hos kylling, og dette genet har fått navnet v-erbB.
v-erbA, THRB
De såkalte tyroidhormon-reseptorene er omtalt i 7.6. Reseptoren er selv en transkripsjonsfaktor, og blir
direkte aktivert av de hormoner som trenger inn i cellen. Genet THRB (Thyroid Receptor, Beta) koder
for en slik reseptor. Mutasjoner i dette genet kan gi en reseptor som stimulerer transkripsjonen også
uten hormon. I virus har man funnet et tilsvarende gen, som har fått navnet v-erbA.
24.3.3 Signaloverføring
Overføringen av et signal fra en aktivert membranbundet reseptor kan gå gjennom mange trinn.
Proteiner som er involvert i dette kan f.eks. være G-proteiner og membranbundne eller cytoplasmatiske
protein kinaser (PK).
G-proteiner ras
Vi har en familie på tre onkogener, HRAS, KRAS og NRAS. Alle disse koder for et membranbundet
protein som har fått navnet p21 (21 kdal), eller p21ras. Dette proteinet er en komponent av et
G-protein, som virker inn på signaloverføringen i cellen gjennom cAMP. Vi finner et tilsvarende viralt
onkogen v-ras. RAS-genene er involvert i flere kreftformer hos mennesket. En punktmutasjon i et
RAS-gen kan være nok til at G-proteinet endrer egenskaper, og blir permanent aktivt.
Protein kinaser src
Onkogenet src var det første onkogen som man klarte å isolere proteinproduktet fra. Det var produktet fra v-src, isolert fra celler transformert med RSV-virus, og det skjedde i 1977. Proteinet var på 60 kdal (atommasse 60000), og var fosforylert. Det fikk derfor navnet p60src.
Senere har man klart å påvise det samme proteinet i normale celler. Dette normale proteinet blir kodet av cellens eget proto-onkogen, c-src (eller SRC) på kromosom 20. Det skiller seg fra det virale proteinet i noen få aminosyrer. Proteinet fra c-src produseres i meget små mengder, mens proteinet fra v-src produseres i store mengder. Dette skyldes at det virale genet er under kontroll av en sterk promoter i LTR.
Proteinet fra genet SRC har protein kinase- aktivitet. Det katalyserer fosforylering av andre proteiner,
deriblant mange viktige enzymer. Dette er en del av signaloverføringen, som tidligere beskrevet (kap7.6).
24.3.4 Transkripsjonsfaktorer
Det siste leddet i signaloverføringen fra vekstfaktorene er selve transkripsjonsfaktoren, dvs. et nukleært
DNA-bindende protein. Som vi har omtalt før, så finnes det svært mange typer av slike transkripsjonsfaktorer.
v-myc, MYC
Genet c-myc (MYC) finnes på kromosom 8. I visse typer kreft ser man at den delen av kromosom 8 der MYCsitter er translokert til kromosom 14, dvs. flyttet til kromosom 14. Dette gjelder spesielt i B-lymfocytter. Det er også vist at genet MYC er amplifisert i en del kreftceller, dvs. at det er produsert flere kopier av det pr. celle.
Tumorviruset MC29 utøver sin virkning ved å aktivere MYC. Dette skjer ved at virusets DNA blir integrert ved siden av MYC, slik at genet blir aktivert av promoteren i virusets LTR.
Andre onkogener som koder for transkripsjonsfaktorer er JUN og FOS.
Aktivering av onkogener
Vi har sett at proto-onkogener er normale cellulære gener, som kan forvandles til kreftfremkallende
onkogener. Vi har nevnt noen måter dette kan skje på. La oss oppsummere noen av disse, med
eksempel på hver:
•Punktmutasjon. ras
•Større mutasjon erbB
•Translokasjon myc
•Amplifiksjon. erbB, myc
•Tumor virus src
24.4 TUMOR SUPRESSOR GENER MAX animasjon
Tumor supressor-gener har motsatt funksjon av onkogener. De er blitt kalt antionkogener. Produktene
fra tumor supressor gener hemmer unormal vekst og aktivitet i cellen. Normal aktivitet i disse genene
er derfor nødvendig for at cellen ikke skal løpe løpsk. En mutasjon i et tumor supressorgen gjør at
denne viktige hemmingen bortfaller, og kreft kan utvikle seg. Mutasjoner i et tumor supressorgen gir
"loss of function". Hvis man har ett normalt allel og ett mutert, vil det normale allelet sørge for normal
funksjon. Et mutert tumor supressorgen er altså recessivt.
24.4.1 RB1 retinoblastom
Retinoblastom er en form for netthinnekreft. Ett av 20000 barn fødes med en arvelig form av denne krefttypen, som er dødelig uten behandling. Den vil vise seg allerede i 5-års alder. I 1986 klarte man å identifisere det genet som er involvert ved denne sykdommen. Genet lå på kromosom 13, og ble kalt RB1.
RB1 koder for et protein på 110 kdal, pRb. Dette proteinet har en hemmende virkning på cellsyklus,
altså på vekst og deling (fig. 8.38). Mutasjoner i RB1-genet kan gi et pRb som ikke fungerer normalt,
det er alltid inaktivt, og hemmingen av cellesyklus er borte. E2F vil være permanent aktiv, og vi kan si at
cellsyklus blir overstimulert. Det er uklart hvorfor dette slår ut spesielt i netthinnen.
24.4.2 TP53 P53
Proteinet p53 eller tp53 (tumorprotein-53 kdal) har en bremsende effekt på cellesyklus. Dette er beskrevet i kapittel 8.10.2 og fig. 8.39. Dette proteinet ble beskrevet i 1979, og genet som koder for dette er blitt lokalisert til kromosom 17 (17p12). Genet blir kalt TP53 eller bare P53. Man har funnet mutasjoner i dette genet hos svært mange kreftpasienter, og for en rekke ulike kreftformer. Noen TP53-mutasjoner kan være slik at én mutasjon alene kan gi en betydelig risiko for å utvikle kreft. Andre mutasjoner er ikke så alvorlige, og vil bare føre til kreft sammen med andre mutasjoner, f.eks i visse onkogener.
Uten et funksjonelt p53 vil en celle med DNA-skade kunne dele seg videre. En slike celle vil da lett
kunne gi opphav til kreft.
24.4.3 BRCA1 og BRCA2
BRCA står for Breast Cancer. Disse to brystkreftgenene ble identifisert i 1994 og 1995. Man regner med at ca. 5 % av brystkrefttilfellene er arvelig betinget, og at 40-50 % av disse skyldes mutasjoner i genet BRCA1 og 30-40 % mutasjoner i BRCA2. Begge disse genene gir proteinprodukter som er involvert i DNA reparasjon.
BRCA1 ligger på kromosom 17 (17q21), er totalt 80 kb stort, har 24 eksoner, og gir et protein på 1863
aminosyrer. BRCA2 ligger på kromosom 13 (13q12), er 80 kb stort, med 27 eksoner, og gir et protein
på 3418 aminosyrer. Det er identifisert en rekke mutasjoner i dette genet.
24.4.4 Samspill, flere mutasjoner
Vi har sett at utviklingen av kreft blir påvirket av to motstridende tendenser. Onkogenene koder for
vekstfremmende proteiner. Tumor supressor genene koder for veksthemmende proteiner. Ved normale
forhold er disse i balanse. Mutasjoner i begge disse typer gener kan medføre unormal aktivitet, dvs.
kreft. Se fig. 24.4.
Recessiv/dominant
Hvis vi har ett normalt tumor supressorgen og ett mutert gen, vil vi fremdeles kunne ha normal funksjon i cellen. Det normale genet vil gi produksjon av de nødvendige hemmende proteiner. Bare i homozygot tilstand vil en slik mutasjon være truende. De fleste mutasjoner i tumor supressor gener er derved recessive.
For onkogener vil det ofte være motsatt. Hvis vi har ett normalt og ett mutert onkogen, vil det muterte genet alene kunne fremskynde prosesser i cellen som leder til kreft. Det muterte allelet er da dominant.
Som oftest er ikke en mutasjon i bare ett av disse genene nok til å starte en kreftutvikling. Men summen av flere mutasjoner i flere gener vil til slutt kunne føre til kreft. Av disse mutasjonene kan noen være medfødt (arvelige) og noen ervervet i løpet av livet (somatiske mutasjoner). En person med medfødte mutasjoner vil derved raskere kunne nå det kritiske nivå der kreft utvikler seg.
Ut fra dette er det klart at utvikling av kreft er noe som kan ha en arvelig faktor og en miljøfaktor.
Selvsagt er også tilfeldighetenes spill viktig.
Metabolisme av karsinogener
PAH står for polysykliske aromatiske hydrokarboner. Dette er stoffer som finnes i industrirøyk og i
tobakksrøyk. De kan binde og skade DNA, og derved være karsinogene. PAH blir metabolisert i
kroppen av enzymer som kodes av gener som kalles CYP (gir cytokrom P450 monooksygenase).
Mutasjoner i CYP-genene kan gjøre at metaboliseringen av disse karsinogene stoffene blir endret.
Slike mutasjoner kan derfor gi økt risiko for kreft, særlig lungekreft. Se også kapittel 20.8 om farmakogenetikk
24.4.5 Mutasjonsanalyse
Man har nå identifisert en lang rekke gener som assosieres med kreft. Vi har nevnt spesielt BRCA-genene og P53-genet, men det er mange flere. Genetisk analyse av tumoren hos kreftpasienter blir derfor mer og mer vanlig. Ved å kartlegge hvilken mutasjon en bestemt pasient har, vil diagnose og behandling kunne bli mest mulig riktig. For å kartlegge en "ukjent" mutasjon brukes bl.a. de analysene som er omtalt i kapittel 18.5, heterodupleksanalyse, SSCP, DGGE, PTT, og etter hvert også DNA-brikke-teknologi (18.7). Når mutasjonen i en familie er kjent, kan man bruke en ferdig utviklet test for denne spesielle mutasjonen. Dette kan være Southern blotting og RFLP (18.1), PCR med ASO-prober ( 18.2 ), sekvensering ( 14.8 ), realtime PCR ( 18.6 ) eller SNP-genotyping på DNA-brikker ( 18.7 ).
Genetisk analyse av familiemedlemmer av kreftpasienter kan også avdekke personer som har høy risiko for å utvikle kreft. Man kan i slike tilfeller sette inn mottiltak eller behandling på et tidlig stadium. Norske sykehus tilbyr nå gentester av enkelte former for kreft der man har funnet et genetisk grunnlag. Haukeland Universitetssykehus i Bergen skriver på sine nettsider bl.a: "Dersom du har mistanke om arvelig kreft i familien, ta gjerne kontakt for vurdering.".